Динамика популяции Corynebacterium glutamicum в почве, ризосфере и ризоплане тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.07, кандидат биологических наук Жебрак, Инна Степановна

• Жебрак, Инна Степановна
• кандидат биологических наук
• 2006

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Жебрак, Инна Степановна

ВВЕДЕНИЕ.

ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

1.1. Характеристика рода СогупеЬаМегшт.

1.2. Выживаемость внесенных в почву микробных популяций.

1.2.1. Интродукция микробных популяций.

1.2.2. Динамики численности внесенных в почву бактериальных популяций.

1.2.3. Механизмы регуляции численности микробных популяций в природных местообитаниях.

1.3. Современные методы в почвенной микробиологии.

ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ.

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ.

2.1. Объекты исследований.

2.2. Методы исследований.

2.2.1. Выявление и количественный учет популяции СогупеЬа&егшт glutamicum 22 Ьй в различных местообитаниях.

2.2.2. Методы анализа почвенной микробной системы.

Г Л А В А 3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ИХ ОБСУЖДЕНИЕ.

3.1. Динамика численности популяции СогупеЬаШг'шт

§Шат1сит 22 ЬИ в различных почвах.

3.1.1. Динамика плотности популяции СогупеЬаМегшт gllltamicum 22 Ю в почве разных биогеоценозов.

3.1.2. Динамика плотности популяции СогупеЬас(егшт glutamicum 22 Ю в почве при интродукции на разных стадиях микробной сукцессии и разном уровне внесения.

3.1.3. Динамика численности популяции СогупеЬас(егшт glutamicum 22 Ю в почве в зависимости от сукцессии и внесенного питательного субстрата.

3.1.4. Динамика численности популяции СогупеЬаМегшт ghltamicum 22 Ю в стерильной и нестерильной почве.

3.2. Влияние Corynebacterium glutamicum 22 LD на рост растений.

3.2.1. Интродукция Corynebacterium glutamicum 22 LD в полевых опытах.

3.2.2. Выживаемость популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в ризосфере и ризоплане и влияние ее на растения.

3.3. Выживаемость, активность и функциональная характеристика популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в условиях голодания.

3.3.1. Динамика численности популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в воде при разной температуре.

3.3.2. Выживаемость популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в стерильной и нестерильной воде.

3.3.3. Определение состояния популяции Corynebacterium glutamicum

22 LD в природных местообитаниях.

3.3.4. Функциональная характеристика объекта методом мультисубстратного тестирования.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Динамика популяции Corynebacterium glutamicum в почве, ризосфере и ризоплане»

Актуальность темы. Необходимость восстановления природных экосистем, сохранение в них биологического разнообразия на уровне, гарантирующем стабильность окружающей среды, ставит перед наукой новые задачи, связанные с защитой природы от загрязнения. Среди них - изучение динамики популяций конкретных видов и штаммов микроорганизмов непосредственно в природных местообитаниях с определением экологической приспособленности, механизмов регуляции численности бактерий, а также прогноз вероятных последствий биологического загрязнения вызванного попаданием микробных популяций, отходов биотехнологических производств в окружающую среду.

Микробиологическое производство аминокислот, имеет большое значение для сбалансированного питания животных и человека. Одним из продуцентов лизина при его микробиологическом синтезе является Corynebacterium glutamicum. С помощью этой популяции в мире в настоящее время производится ежегодно более 800 ООО и 330 ООО тонн глутаминовой кислоты и лизина соответственно. В Беларуси Corynebacterium glutamicum используется для производства аминокислот на заводе медпрепаратов в г. Скиделе (выпуск лейцина, изолейцина, валипа, планируется выпуск лизина). Отходы производства аминокислот могут быть источником загрязнения окружающей среды, что делает необходимым изучение выживаемости Corynebacterium glutamicum в природных местообитаниях как для оценки экологического риска, так и для определения возможности утилизации отходов производства.

Цель работы: изучение выживаемости промышленного продуцента аминокислот популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в системе «почва-корни растений».

Задачи исследования:

1. Характеристика динамики численности популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в почве, ризосфере и ризоплане растений.

2. Определение экологической стратегии популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD в почве и физиологического состояния бактериальных клеток в природных местообитаниях.

3. Анализ последствий интродукции популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD по динамике почвенного микробного сообщества.

4. Оценка возможного влияния Corynebacterium glutamicum 22 LD на начальные этапы развития культурных растений.

Научная новизна. Впервые с помощью популяциоиного подхода на примере популяции Corynebacterium glutamicum 22 LD установлена судьба промышленного продуцента аминокислот в почве и в прикорневой зоне растений с оценкой вероятных последствий интродукции в природных местообитаниях. Доказано, что исследуемая популяция не приспособлена к длительному выживанию в природных местообитаниях, а скорость элиминации зависит от уровня внесения, свойств местообитания, наличия легкодоступных ресурсов. Анализ динамики почвенных природных сообществ по функциональным и структурным показателям, включая мультисубстратное тестирование, показал, что эффект чужеродной популяции достоверно проявляется только на первых этапах микробной сукцессии, а примерно через месяц параметры почвенных микробных сообществ в вариантах с интродукцией и контролем практически не различаются. Установлено достоверное стимулирующее воздействие Corynebacterium glutamicum 22 LD на развитие проростков кресс-салата (Lepidium sativum L.), редиса посевного (Raphanus sativus L. var . radicul а) и люпина желтого (Lupinus luteus L.), что не исключает принципиальную возможность использования отработанной микробной биомассы в качестве бактериального удобрения.

Практическая значимость. На основании проведенных исследований может быть охарактеризована степень экологического риска аварийного поступления Corynebacterium glutamicum 22 LD в окружающую среду на действующих микробиологических предприятиях. Промышленный продуцент лизина быстро погибает в почве и воде, поэтому безопасен для окружающей среды, представляя риск первого уровня. Показана принципиальная возможность использования отходов производства аминокислот, содержащих Corynebacterium glutamicum 22 LD, в качестве бактериального удобрения, стимулирующего развитие растений. Для реального осуществления данного проекта необходимы дальнейшие исследования и подсчет эффективности утилизации таких отходов биотехнологии.

Автор диссертации выражает свою глубокую признательность и благодарность научному руководителю д.б.н. П.А. Кожевину, доценту кафедры ботаники Гродненского государственного университета к.б.п. P.A. Скоробогатовой, профессору кафедры экологии д.в.н. Е.П. Кремлеву, доценту кафедры агрохимии Гродненского аграрного университета к.б.н. Д.М. Андреевой за постоянную помощь, внимание и полезные консультации при выполнении этой работы.

Заключение диссертации по теме «Микробиология», Жебрак, Инна Степановна

выводы

1. На основе популяцноппого подхода установлена судьба промышленного продуцента аминокислот популяции СогупеЬаМегшт glutamicum 22 ЬО в почве, ризосфере и ризоплане растений. Доказано, что исследуемая популяция не приспособлена к выживанию в данных природных местообитаниях, не способна к переходу на более эффективный режим метаболизма в олиготрофных условиях и быстро погибает. Скорость гибели популяции СогупеЬас1ег1ит glutamicum 22 ЬО в модельных экспериментах в условиях голодания составляет 0,024-0,052 ч'1. Это характеризует объект как популяцию с большими затратами ресурсов на поддержание метаболизма и свидетельствует о неприспособленности СогупеЬаМегшт glutamicum 22 ЬО к условиям голодания, которые часто имеет место в природных местообитаниях.

2. Общая закономерность динамики СогупеЬаМегшт glutamicum 22 ЬО -элиминация интродуцируемого объекта в системе почва-растение за короткий промежуток времени (не более 30 суток), что позволяет считать данную популяцию примером аллохтопного микроорганизма с относительно низким экологическим риском. Скорость гибели популяции зависит от свойств почв, наличия легкодоступных ресурсов, уровня исходной популяциоппой плотности, состояния естественного природного микробного сообщества.

3. Доказано, что уже через несколько суток после внесения популяции изменяются структурные и функциональные характеристики почвенного микробного сообщества. В частности, регистрировалось достоверное увеличение общего количества бактерий, активности каталазы, индекса гидролиза ФДА по сравнению с контролем. Методом мультисубстратиого тестирования выявлены функциональные изменения в структуре почвенного микробного сообщества при внесении в него СогупеЬаМегшт glutamicum 22 ЬО, что проявляется в снижении показателя потребления ацетата и повышении потребления серипа по сравнению с контролем. По всем указанным характеристикам почвенное микробное сообщество возвращается к исходному состоянию примерно через месяц после интродукции.

4. Установлен достоверный стимулирующий эффект интродукции СогупеЬас(егшт glutamicum 22 ЬО па развитие растений на примере кресс-салата, редиса, люпина в модельных экспериментах, что не исключает принципиальную возможность использования отходов биомассы продуцентов аминокислот в качестве бактериального удобрения.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Жебрак, Инна Степановна, 2006 год

1. Алещенкова З.М., Самсонова A.C., Семочкина Н.Ф., Байкова C.B. Интродукция микроорганизмов-деструкторов в почву, загрязненную атмосферными выбросами производства синтетического волокна // Почвоведение. 1997. № 7. С. 840-844.

2. Андерсон Р.К., Багаутдинов Ф.Я., Бойко Т.Ф. Использование микробиологического метода для очистки нефтезагрязненных почв // Тез. докл. конф.: «Интродукция микроорганизмов в окружающую среду». Москва, 17-19 мая 1994. С. 10.

3. Апсите А. Ф., Межиня Г.Р., Осе В.П. Продуценты L-лизина из рода Brevibacterium. Атлас морфологических исследований. Рига: Зинатне, 1978. С. 21-22.

4. Бабич Т.Л., Зенова Г.М., Кожевин П.А. Сукцессионные изменения и перекрывание экониш в комплексе актиномицетов в черноземе // Микробиология. 1994. Т. 63, № 2. С. 294-297.

5. Бабич Т.Л. Зенова Г.М., Кожевин П.А., Судницин И.И., Звягинцев Д.Г. Микробиологическая диагностика состояния торфяных почв на основе сукцессионных изменений активного комплекса // Почвоведение. 1996. № 9. С. 1098-1102.

6. Бабьева И.П., Зенова Г.М. Биология почв. М.: Изд-во МГУ, 1989. 336 с.

7. Бекер М. У., Лиепиньш Г. К., Раипулис Е.П. Биотехнология. М.: Агропромиздат, 1990. 396 с.

8. Бекер М.Е., Виестур У.Э., Лиепинь Г.К., Лацарс А.К. Основы технологии микробиологического получения кормового концентрата L-лизина // Лизин -получение и применение в животноводстве. М.: Наука, 1973. 227 с.

9. Борзенков И.А., Ибатуллин P.P., Милехина Е.И. Использование микроорганизмов при ликвидации нефтяных загрязнений почвы // Тез. докл. конф. «Интродукция микроорганизмов в окружающую среду». Москва, 17-19 мая 1994. С.14-15.

10. Букин Н.В., Куцева JI.C., Баздырева Н.М. Лизин получение и применение в животноводстве. М.: Наука, 1973. 227 с.

11. Васильева Г.К., Суровцева Э.Г., Белоусов В.В. Разработка микробиологических способов для очистки почвы от загрязнения пропанидом и 3, 4- дихлоранилином //Микробиология. 1994. Т. 63, № 1. С. 129-144.

12. Васильева Н.Д., Хомякова К.Г., Иванов Н.С. Эффективность предпосевной обработки бобово-злаковой смеси бактериальными препаратами // Тез. докл. конф. «Микроорганизмы в сельском хозяйстве». Минск, 1992. С. 27.

13. Вельков В.В. Оценка риска при интродукции генетически модифицированных микроорганизмов в окружающую среду / Агрохимия. 2000. № 8. С.76-86.

14. Волкова Е.И., Полянская J1.M., Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г. Динамика численности и структура актиномицетных популяций в почве // Микробиология. 1986. Т.55, № 6. С. 1027-1029.

15. Головлев Е.Л. Биология сапрофитных микроорганизмов: Автореф. дис. докт. биол. наук: 03 00 07. Пущино, 1983. 37 с.

16. Головлев E.JL Проблема интродукции микроорганизмов-деструкторов // Тез. докл. VI конф. Российской Федерации «Новые направления биотехнологии». Пущино, 24-26 мая 1994. С. 9

17. Горбылева А.И., Воробьев В.Б., Иванова М.И., Калько Б.А. Петровский Е.И. Почвоведение: Лабораторный практикум. Минск: Дизайн ПРО, 2000. 192 с.

18. Горленко М.В. Мультисубстратиое тестирование почвенных микробиых сообществ. Дис. . канд. биол. наук: 03 00 07. Москва, 1995. 135 с.

19. Горленко М.В., Кожевин П.А. Дифференциация почвенных микробных сообществ с помощью мультисубстратного тестирования // Микробиология. 1994. Т. 63, №2. С. 289-293.

20. Горленко М.В., Рабинович Н.Л., Графова Н.Б., Кожевин П.А. Индикация загрязнения почв синтетическими моющими средствами по функциональнойреакции почвенного микробного комплекса // Вестник Моск. ун-та. Сер. 17, Почвоведение. 1996. № 1. С. 64-69.

21. Гритчина JI.IO., Ясинская Н.И. Влияние азотобактерина на урожайность картофеля и моркови //Микробиологический журнал. 1994. Т. 56, № 1. С. 98.

22. Дебабов В.Г. Интродукция генетически измененных микроорганизмов в окружающую среду // Микробиология. 1991. Т. 60, № 1. С. 5-9.

23. Добровольская Т.Г. Структура бактериальных сообществ почв. М.: ИКЦ «Академкнига», 2002. 281 с.

24. Добровольский Г.В. и др. Структуроио-функциональная роль почв и почвенной биоты в биосфере / Отв. ред. Г.В. Добровольский. М.: Наука, 2003. -364 с.

25. Добровольский Г.В., Никитин Е.Д. Сохранение почв как незаменимого компонента биосферы. М.: Наука, МАИК Наука / Интерпериодика, 2000. 185 с.

26. Емцев В.Т., Семицкая О.В., Брук М.Х. Микробные препараты и их роль в охране почв // Тезисы докладов II съезда общества почвоведов, Санкт-Петербург, 23-27 июня 1996. 255-256.

27. Ермишин А.П. Экологическая безопасность использования биотехнологий в Республике Беларусь / Природные ресурсы. 2002. № 3. С. 57-64.

28. Ефремов A.JL Микробиота и биогенность почв. Минск: Право и экономика, 2002. 170 с.

29. Ефремова JI.M., Кожевин П.А., Виноградова К.А., Звягинцев Д.Г. Изучение динамики популяции актиномицета в почве // Микробиология. 1978. Т. 47, № 5. С.871-876.

30. Жданова Н.И. Современные тенденции развития селекционных работ с продуцентами аминокислот // Сб.: Генетика промышленных микроорганизмов и биотехнология. М.: Наука, 1990. 275 с.

31. Жебрак И.С. Анализ возможности применения промышленного продуцента аминокислот в качестве бактериального удобрения // Материалы международной конференции «Микробиология и биотехнология 21-го столетия». Минск, 22-24 мая 2002. С. 218 -219.

32. Жебрак И.С. Влияние популяции Corynebacterium glutamicum на рост растений и выживаемость ее в ризосфере и ризоплане // Веснж Гродзенскага дзяржаунага ушверсггэта ¡мя Яню Купалы. Сер. 2. 2001. № 1. С. 116-123.

33. Жебрак И.С. Выживаемость Corynebacterium glutamicum в воде // Материалы 1-ой международной научно-практической конференции «Экология и молодежь». Гомель, 17-19 марта 1998. Том I. С. 91.

34. Жебрак И.С. Динамика популяции Corynebacterium glutamicum в почвах различных биоценозов // Материалы 1-ой международной научно-практической конференции «Экология и молодежь». Гомель, 17-19 марта 1998. Т. I. С. 90-91.

35. Жебрак И.С. Интродукция Corynebacterium glutamicum в почву // Материалы I Международной конференции «Актуальные проблемы экологии». Гродно, 6-8 октября 2004. С. 223-226.

36. Жебрак И.С. Результаты интродукции Corynebacterium glutamicum / Тезисы 5-й Пущинской конференции молодых ученых «Биология наука 21-го века». Пущино, 16-20 апреля 2001. С. 227.

37. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A. Влияние Corynebacterium glutamicum на рост редиса и кресс-салата // Сборник научных трудов «Сельское хозяйство -проблемы и перспективы». Гродно, 2004. Том 3, часть 2. С.76-79.

38. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A. Выживаемость продуцента лизина в стерильной и нестерильной почве // Материалы третьей международной научно-практической конференции "Наука производству". Гродно, июнь 1999. С.104-106.

39. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A., Кожевин П.А. Влияние питательных субстратов на динамику численности популяции Corynebacterium glutamicum в почве // Весшк Гродзенскага дзяржаунага ушверсггэта ¡мя Янк1 Купалы. Сер. 2. 1999. № 1.С. 73-76.

40. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A., Кожевин П.А. Динамика популяции Corynebacterium glutamicum в почве и корневой зоне растений // Вестн. моек, ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1998. № 1. С. 48-51.

41. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A., Кремлев Е.П., Кожевин П.А. Динамика численности популяции Corynebacterium glutamicum в воде / Материалы международной конференции «Микробиология и биотехнология на рубеже XXI столетия». Минск, 1-2 июня 2000. С. 163-164.

42. Жебрак И.С., Скоробогатова P.A., Кремлев Е.П., Кожевин П.А. Определение состояния популяции Corynebacterium glutamicum в почве / Тезисы международной конференции молодых ученых "Экологические проблемы XXI века». Минск, 1-2 ноября 2000. С. 121-123.

43. Заварзин Г.А. Лекции по природоведческой микробиологии. М.: Наука, 2003. 348 с.

44. Заварзин Г.А., Колотилова H.H. Введение в природоведческую микробиологию. Москва: Университет. Книжный двор, 2001. 253 с.

45. Звягинцев Д.Г. Взаимодействие микроорганизмов с твердыми поверхностями. М.: МГУ, 1973. 176 с.

46. Звягинцев Д.Г. Почва и микроорганизмы. М.: МГУ, 1987. 256 с.

47. Звягинцев Д.Г. Теоретические аспекты проблемы интродукции микроорганизмов в окружающую среду // Тез. докл. конф «Интродукция микроорганизмов в окружающую среду». Москва, 17-18 мая 1994. С. 37-38.

48. Звягинцев Д.Г., Добровольская Т.Г., Бабьева И.П., Чернов НЛО. Развитие представлений о структуре микробных сообществ почв // Почвоведение. 1999. № 1.С. 134-144.

49. Звягинцев Д.Г., Кожевин П.А. Изучение динамики популяций клубеньковых бактерий с помощью иммунофлюоресценции // Микробиология. 1974. Т. 43, № 5. С. 888-892.

50. Звягинцев Д.Г., Кочкина Г.А., Кожевин П.А. Новые подходы к изучению сукцессий микроорганизмов в почве // Почвенные организмы как компонент биогеоценоза. М.: Наука, 1984. С. 81-103.

51. Имшенецкий A.A., Парийская А.Н., Горелова О.П. Изучение выживаемости Rhizobium meliloti в почве методом генетической маркировки // Микробиология. 1976. Т. 35, № 6 С. 1107-1110.

52. Калинина К.В., Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г., Судницин И.И. Особенности микробных сукцессий в почве в зависимости от уровня влажности // Почвоведение. 1997. № 4. С.581-521.

53. Кашнер Д. Жизнь микроорганизмов в экстремальных условиях. М.: Мир, 1981. 520 с.

54. Квасников Е.И., Ногина Т.М., Нестеренко O.A., Панченков Л.П., Розынов Б.В., Коронелли Т.В. О систематическом положении продуцента лизина Brevibacterium flavum //Микробиология. 1984. Т. 53, № 1. С. 93-97.

55. Кириллова Н.П., Стасевич Г.А., Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г. Динамика популяций бактерий в системе почва растение // Микробиология. 1981. Т. 50, № 1. С. 128-134.

56. Кожевин П.А. Биотический компонент качества и проблемы устойчивости // Весн. Моск. ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 2001. № 4. С. 44-47.

57. Кожевин П.А. Динамика микробных популяций в почве // Тезис, конф. «Микроорганизмы в сельском хозяйстве». Москва. МГУ. 1986. С. 17.

58. Кожевин П.А. Динамика микробных популяций в почве // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1992. № 2. С. 39-56.

59. Кожевин П.А. Микробные популяции в природе. М.: МГУ, 1989. С.171.

60. Кожевин П.А. Популяционная экология почвенных микроорганизмов Дис. докт. биол. наук в форме науч. докл. 03 00 07. Москва, 2000. 55 с.

61. Кожевин П.А. Риск оценки риска при интродукции микрорганизмов в окружающую среду / Тез. докл. «Интродукция микробных популяций в окружающую среду». Москва. 1992. С. 49-50.

62. Кожевин П.А. Экология микроорганизмов: эксперименты в природе // Природа. 1985. № 7. С. 78-85.

63. Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г. Проблемы оценки численности почвенных микроорганизмов // Доклады АН СССР. 1980. Т. 205, № 2. С. 461-463.

64. Кожевин П.А., Кожевина JI.C., Болотина И.Н. Определение состояния бактерий в грунтах // ДАН СССР. 1987. Т. 297, № 5. С. 1247-1249.

65. Кожевин П.А., Корчмару С.С. На пути к теории применения микробных удобрений//Вестн. Моск. ун-та. Сер.17. Почвоведение. 1995. №2. С. 52-61.

66. Кожевин П.А., Кочкипа Г.А., Кириллова Н.П., Градова Н.Б., Зайцев С.А., Гаджиева В. А. Загрязнения почв дрожжами // Почвоведение. 1982. № U.C. 6771.

67. Кожевин П. А., Полянская Л.М., Звягинцев Д.Г. Динамика развития микроорганизмов в почве // Микробиология. 1979. Т. 48, № 3. С. 490-493.

68. Кожевин П.А., Полянская Л.М., Лукин С.А., Зайцев С.А., Гузев B.C., Левин C.B. Микробное загрязнение почв // Микроорганизмы и охрана почв. М.: МГУ, 1989. 204 с.

69. Кожевина Л.С., Кожевин П.А., Кофф Г.Л. Расписание появления колоний бактерий на питательной среде характеризует условия в природных местообитаниях // ДАН РФ. 1995. Т. 341, №4. С. 569-570.

70. Колешко О.И. Экология микроорганизмов почвы. Минск: Вышэйшая школа, 1981. 176 с.

71. Корнилова И.Г., Швипка Ю.Э. Активность гидрогеназы у Brevibacterium flavum II Микробиология. 1985. T. 54, № 4. С. 582-586.

72. Коронелли T.B. Экофизиологические основы и практический опыт интродукции углеводородокисляющих бактерий в природные экосистемы // Тез. докл. конф. «Интродукция микроорганизмов в окружающую среду». Москва, 17-19 мая 1994. С. 53.

73. Коронелли Т.В., Комарова Т.И., Ильинский В.В., Кузьмин Ю.И., Кирсанов Н.Б., Ясненко A.C. Интродукция бактерий Rhodococcus в тундровую почву, загрязненную нефтью // Прикладная биохимия и микробиология. 1997. Том 33, №2. С. 198-201.

74. Кочкина Г.А. Сукцессии почвенных микроорганизмов и место в них конкретных микробных популяций. 1981. Автореф. диссерт. па соискание уч.ст. канд. биол. паук . МГУ.,М.

75. Красильников H.A. Микробиологические основы бактериальных удобрений. М.: Изд-во Академии паук СССР, 1945. 80 с.

76. Красильников H.A. Микроорганизмы почвы и высшие растения. М.: Изд-во Академии наук СССР, 1958. 461 с.

77. Куличевская И.С., Гузев B.C., Паников Н.С. Популяционная динамика углеводородокисляющих дрожжей, интродуцированных в нефтезагрязпеиную почву // Микробиология. 1995. Т. 64, № 5. С. 668-673.

78. Лукин С.А., Прозоров A.A. Конъюгационный перенос плазмидной ДНК между бактериями в почве // Микробиология. 1992. Т. 61, № 4. С. 692-696.

79. Мандровская Н.М., Ничик М.М., Кругова Е.Д., Остапенко Д.Д., Старченков Е.П. Влияние клубеньковых бактерий гороха штамма 263 б па урожай растений в условиях полевых опытов. // Микробиол. журнал. 1994. Т. 56, № 1. С.81.

80. Марфенина O.E., Кожевин П.А. Оценка антропогенных изменений комплексов почвенных микроскопических грибов с помощью дискриминантного анализа. 1998. Т. 32, № 5. С. 56-61.

81. Межиня Г.П., Апсите А.Ф., Руклиша М.П., Осе В.П., Савенкова В.В., Виестур У.Э., Камипска Э.В., Тома М.К. Гипертрофический рост Brevibacterium sp. 22L //Микробиологические препараты. Рига: Зипатпе, 1976. С. 14-21.

82. Методы общей бактериологии / Под ред. Ф. Герхарда. М.: Мир, 1984. Т. 2. 472 с.

83. Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Д.Г. Звягинцева. Москва: МГУ, 1991.311 с.

84. Мирчинк Т. Г., Паников Н. С. Современные подходы к оценке биомассы и продуктивность грибов и бактерий в почве // Успехи микробиологии. 1985. № 20. С. 198-226.

85. Мирчинк Т.Г. Почвенная микология. Москва: Изд-во МГУ, 1988. 220 с.

86. Мирчинк Т.Г. Николай Александрович Красилышков. Москва: МАКС Пресс, 2001. 69 с.

87. Мишустин E.H., Перцовская М.И., Горбов В.И. Санитарная микробиология почвы. М.: Наука, 1979. 284 с.

88. Монахова Е.В. Биология коринеподобных бактерий пресноводного водоёма: Автореф. дис. . канд. биол. наук: 03.00.07. Пущино, 1984. 16 с.

89. Нестеренко O.A., Квасников Е.И., Ногина Т.М. Нокардиоподобпые и коринеподобные бактерии. Киев: Наукова думка, 1985. 333 с.

90. Нестеренко O.A., Ногипа Т.М., Квасников Е.И. Хемотаксономические признаки некоторых коринеподобных бактерий и группы «Rhodochrous» II Микробиология. 1978. Т. 63, № 6. С. 1055-1062.

91. Никитин Д.И., Аракелян Р.Н., Силева Т.М. Динамика роста олиготрофпых бактерий в почве // Изв. АН СССР. Сер. биол. 1981. № 1. С. 116-119.

92. Никитин Д.И., Никитина Э.С. Процессы самоочищения окружающей среды и паразиты бактерий (род Bdellovibriö). М.: Наука, 1978. 205 с.

93. Никитина З.И. Микробиологический мониторинг наземных экосистем. -Новосибирск: Наука. Сибирское отделение, 1991. 222 с.

94. Новогрудский Д.М. Почвенная микробиология. Алма-Ата: Изд-во Академии наук Казахской ССР, 1956. 402 с.

95. Овчинникова И.Н. Оценка риска загрязнения почв в управлении природопользованием и системе земельного кадастра. М.: Изд-во МГУ, 2003. 122 с.

96. Остапенко Д.Д. Влияние инокуляции активных штаммом клубеньковых бактерий на показатели эффективности симбиоза у различных морфотипов гороха // Микробиологический журнал. 1991. Т. 56, № 1. С. 89.

97. Паников Н.С., Добровольская Т.Г., Лысак JI.B. Экология коринеподобных бактерий // Успехи микробиологии. М.: Наука, 1989. № 23. С. 59-90.

98. Панчишкина М.Б., Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г. Динамика популяции псевдомонаса в почве // Вестн. Моск. ун-та. Сер. 17. Почвоведение. 1985. №2. С. 65-68.

99. Панчишкина М.Б., Кожевии П.А., Звягинцев Д.Г. Типы динамики бактериальных популяций в почвах. // Микробиология. 1988. Т.57, № 3. С. 476481.

100. Полянская Л.М., Кожевин П.А., Звягинцев Д.Г. Зависимость динамики численности клубеньковых бактерий в почве от стадии микробной сукцессии // Микробиология. 1981. Т. 50, № 1. С. 183-185.

101. Проворов H.A. Актуальные вопросы популяционной генетики бактерий // Успехи современной биологии. 2001. Т. 121, № 6. С. 537-549.

102. Саламаха О.В., Тихомирова Л.А., Рогатых Н.П., Зубарев Т.Н. Изменение размеров клеток Corynebacterium glutamicum при культивировании на среде с уксусом // Микробиология. 1986. Т. 55, № 3. С. 413-417.

103. Санданов Ч.М. Изучение таксономичекого положения и особенностей физиологии коринеподобных бактерий продуцентов нуклеотидов: Автореф. дис. канд. биол. наук: 03.00.07. Пущиио, 1983. 16 с.

104. Caneriri Л.М. Геабатанжа: Вучэб. дапам. / навук. рэд. B.I. Парфенау. Mil: Тэсей, 2000. 192 с.

105. Скоробогатова P.A., Полеоиок Г.Н., Жебрак И.С. Влияние физико-химических свойств почвы на выживаемость популяции Corynebacterium glutamicum II

106. Тезисы международной конференции "Экологические проблемы XXI века». Минск, 1-2 ноября 2000. С.141-142.

107. Суржко Л.Ф., Финкельштейн З.И., Баскунов Б.П., Янкевич М.И., Яковлев В.И., Головлева Л.А. Утилизация нефти в почве и воде микробными клетками // Микробиология. 1995. Т. 64, № 3. С. 393-398.

108. Суховицкая Л.А., Сафронова Г.В., Клышко Г.М., Короленок Н.В. Выживаемость Rhizobium в монокультуре и бинарных популяциях с ризосферными бактериями // Прикладная биохимия и микробиология. 2002. Т. 38, № 1. С.73-78.

109. Сямашка 1.У., Лабанок А.Г. Праблемы штрадукцьи генетычна мадыфжаваных мжрааргашзмау у навакольнае асяродзе // Весщ. Акадэмп Навук Беларусь Сер. б1ял. навук. 1995. № 3. С. 18-51.

110. Троицкая Т.М., Троицкий Н.А. Азотфиксация Azotobacter chzoococcum в ассоциации с ячменем // Микробиология. 1988. Т. 57, № 2. С. 288-291.

111. Трусле Э. Б., Зоммер З.К., Лиепиньш Г.К. Ассимиляция моносахаридов мутантом Brevibacterium sp. 22 L II Биосинтез и выделение микробных метаболитов. Рига: Зинатне, 1975. С. 57-60.

112. Чубук Ю.П., Жебрак И.С., Скоробогатова Р.А. Выживаемость Corynebacterium glutamicum в почве, ризосфере и ризоплане люпина // Материалы третьей международной научно-практической коференции "Наука производству". Гродно, июнь 1999. С. 120-122.

113. Шилышкова В.К., Серова Е.Я. Микроорганизмы-азотонакопители па службе растений.-М.: Наука, 1983. 150 с.

114. Akkermans A.D.L. Application of bacteria in soils: problems and pitfalls // FEMS Microbiol. 1994. № 15. P. 185-194.

115. Alabouvette C., Lemanceau P., Steinberg C. Recent advances in the biological control of Fusarium wilts // Pestic. Sci. 1993. № 37. P. 365-373.

116. Anderson J. R., Westmoreland D. Direct counts of soil organisms using a fluorescent brightener and a europium chelate // Soil Biol. Biochem. 1971. № 3. P. 85-87.

117. Babiuk L.A., Paul E.A. The use of fluorescein isothiocyanate in the determination of the bacterial biomass of grassland soil // Can. J. Microbiol. 1970. № 16. P. 57-62.

118. Bachan Y. Enhancement of wheat root colonization and plant development by Azospirillum brasilense Col. Following temporary depression of rhizosphere microflora//Appl. Environ. Microbiol. 1986. № 51. P. 1067-1071.

119. Baker J.H., Smith D.G. The bacteria in an Antarctic peat // J. Appl. Bacteriol. 1972. № 35 P. 589-596.

120. Bakken L.R., Olsen R.A. The relationship between cell size and viability of soil bacteria // Microb. Ecol. 1987. № 13. P. 103-114.

121. Bashan Y. Alginate beads as synthetic inoculant carriers for slow release of bacteria that affect plant growth // Appl. Environ. Microbiol. 1986. № 51. P. 1089-1098.

122. Bashan Y., Puente M.E., Rodriguez-Mendoza M.N., Toledo G., Holguin G., Ferrera-Cerrato R., and Pedrin S. Survival of Azospirillum brasilense in the bulk soil and rhizosphere of 23 soil types // Appl. Environ. Microbiol. 1995. №. 61. P. 19381945.

123. Becker J.O., Schwinn F.J. Control of soil-borne pathogens with living bacteria and fungi: status and outlook // Pestic. Sci. 1993. № 37. P. 355-363.

124. Bennett R.A., Lynch J.M. Colonization potential of bacteria in the rhizosphere // Curr. Microbiol. 1981. №. 6. P. 137-138.

125. Bergey's Manual of Systematic Bacteriology. Baltimore; Hong Kong; London; Sydney. 1984. V. 1. 859 p.

126. Bogosian G., Morris P.J.L., O' Neil J.P. A mixed culture recovery method indicates that enteric bacteria // Appl Environ. Microbiol. 1998. № 64. P. 1736-1742.

127. Bossio D.H., Scow K.M. Impact of carbon and flooding on the metabolic deversity of microbial communities in soils // Appl. Environ. Microbiol. 1995. № 61. P. 40434050.

128. Bottomley P.J., Dughri M.H. Population size and distribution of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii in relation to total soil bacteria and soil depth // Appl. Environ. Microbial. 1989. V. 55. P. 959-964.

129. Bottomley, P.J., Maggard S.P. Determination of viability within serotypes of soil population of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii // Appl. Environ. Microbiol. 1990. №56. P. 533-540.

130. Boylen C.W. Survival of Arthrobacter crystallopoietes during prolonged periods of extreme desiccation // J. Bacteriol. 1973. № 113. P. 33-57.

131. Brierley J.A. Use of microorganisms for mining metals // Halvorson H.O., Pramer D., Rogul M. Engineered organisms in the environment: scientific issues. -Washington: ASM Press, 1985. P. 141-146.

132. Briglia M., Nurmiaho-Lassila E.-L., Vallini G., Salkinoja Salonen M. The survival of the pentachlorophenol - degrading Rhodococcus chlorophenolicus PCP-1 and Flavobacterium sp. in natural soil //Biodégradation. 1990. № 1. P. 273-281.

133. Brodkorb T.S., Legge R.L. Enhanced biodégradation of phenanthrene in oil tar -contaminated soil supplemented with Phanerochaete chrysosporium II Appl. Environ. Microbiol. 1992. №. 58. P. 3117-3121.

134. Brown M.E. Seed and root bacterization //Annu. Rev. Phytopathol. 1974. №. 12. P. 181-197.

135. Cameron R. E., King J., David C. N. Microbiology ecology and microclimatology of soil sites in dry valley of southern Victoria Land. Antarctica// Antarctic Ecology (Ed. M.W. Holdgate). Academic Pess, London and New York. 1970. № 2. P. 702716.

136. Casida L.E. Continuously variable amplitude contrast microscopy for the detection and study of microorganisms in soil // Appl. Environ. Microbiol. 1976. № 31. P. 605608.

137. Chanway C.P., Nelson L.M. Field and laboratory studies of Triticum aestivum L. inoculated with co-existent growth-promoting Bacillus strains // Soil Biol. Biochem. 1990. №22. P. 789-795.

138. Chet I. Perspectives in microbial ecolody // Mergusar F., Gantar M. Slovene Society for Microbiology. Ljubljane, Yugoslavia, 1986. P. 489-491.

139. Chrzanovski T.H., Crotty R.D., Hubbard J.G., Weleh R.P. Applicability of the fluorescein diacetate metod of detecting active bacteria in freshwater // Microb. Ecol.1984. № 110. P. 179-185.

140. Cleyet-Marel J.C., Crozal Y., Pinochet X. Ability of two Bradyrhizobium japonicum strains to persistin soil and nodulate soybeans after dual inoculation // Biol. Fertil. Soils. 1995. № 20. P. 289-293.

141. Cooper R. Bacterial fertilizers in the Soviet Union // Soils Fertil. 1959. № 22. P. 327-333.

142. Crozat Y., Cleyet-Mavel J.C., Ciraud J., Obaton M. Survival rates of Rhizobium japonicum populations in different Soil // Soil Biol. Biochem. 1982. № 14. P. 401405.

143. Cutler D.W. The action of protozoa on bacteria when inoculated in soil // Ann. Appl. Biol. 1923. № 10. P. 137-141.

144. Danso S.K.A., Alexander M. Regulation of predation by prey density: the protozoan -Rhizobium relationship II Appl. Microbiol. 1975. № 29. P. 515-521.

145. Darbyshire J.F., Chapman S.J., Cheshire M.V., Gauld J.H., Me Hardy W.J., Paterson E., Vaughan D. Methods for the study of interrelationships between microorganisms and soil structure// Geoderma. 1993. № 56. P. 3-23.

146. Davison J. Plant beneficial bacterial bacteria // Bio. Technology. 1988. № 6. P. 282286.

147. Deacon J.W. Significance of ecology in the development of biocontrol agents against soil borne plant pathogens // Biocontrol Sci. Technol. 1991. № 1. P. 5-20.

148. Devliegher W., Arif M.A.S., Verstraete W. Survival and plant growth promation of detergent-adapted Pseudomonas fluorescens ANP 15 and Pseudomonas aeruginosa 1 NSK 2 // Appl. Enviro. Microbiol. 1995. № 61. P. 3865-3871.

149. Doblhoff-Dier O., Bahmayer H., Bennet A. et al. Safe biotechnology 9: values in risk assessment for the environmental application of microorganisms // Trends Biotechnol. 1999. № 17. P. 307-311.

150. Doyle J.D., Hendricks C.W. Effect of genetically engineerect microorganisms on soil ecology as influenced by soil type, organism phenotype and methods of study // Amer. Soc. Agron. Annu. Meet. Minneapolis, 1992. 254 p.

151. Dupler M., Baker R. Survival of Pseudomonas putida, a biological control agent, in soil 11 Phytopathology. 1984. № 74. P. 195-200.

152. Ehrlich H.L., Brierley C.L. Microbial mineral recovery. McGraw - Hill Publishing Co., New York, N.Y., 1990. 347 p.

153. Elliott E.T., Anderson R.V., Coleman D.C., Cole C.V. Habitable pore space and microbial trophic interaction // Oikos. 1980. № 35. P. 327-335.

154. England L.S., Lee H., Trevors J.T. Recombinant and wild-type Pseudomonas aureofaciens strains introduced info soil microcosms: effect on decomposition of cellulose and straw // Mol. Ecol. 1995. № 4. P. 221-230.

155. Evans J.C., Wallace, Dobrowolski N. Interaction of soil type and temperature on the survival of Rhizobium leguminosarum bv. viciae // Soil Biol. Biochem. 1993. № 25. P. 1153-1 160.

156. Firth J.R., Diaper J.P., Edwards C. Survival and viability of Vibrio vulnificus in seawater monitored by flow cytometry // Lett. Appl. Microbiol. 1994. № 18. P. 268271.

157. Foster R.C. Microenvironments of soil microorganisms // Biol. Fertil. Soils. 1988. №6. P. 189-203.

158. Garland J.L. Analytical approaches to the characterisation of samples of microbial communities using patterns of potential source utilisation // Soil. Biol. Biochem. 1996. №28. P. 213-221.

159. Garland J.L. Patterns of potential a sourse utilisation by rhizosphere communities// Soil. Biol. Biochem. 1996. № 28. P. 223-230.

160. Giller K.E., Day J.M. Nitrogen fixation in the rhizosphere: significance in natural and agricultural systems // Ecological interactions in soil: plants, microbes and animals. Oxford, 1985. P. 127-141.

161. Goldstein R.M., Mallory L.M. Alexander M. Reasons for possible failure of inoculation to enhance biodégradation // Appl. Environ. Microbiol. 1985. № 50. P. 977-983.

162. Gottschal J.C. Substrate capturing and growth in various ecosystems // J. Appl. Basteriol. Symp. Suppl, 1992. № 73. P. 39-48.

163. Gouzou L., Burtin G., Rhilippy R., Bartoli F., Heutin. Effect of inoculation with Bacillus polymyxa on soil aggregation in the wheat rhizosphera: preliminary examination // Geoderma. 1993. № 56. P. 479-491.

164. Gray T.R.G. Survival of vegetative microbes in soil // Symp. Soc. Gen. Microbial. 1975. №26. P. 327-364.

165. Gregg Bogasian, Patricia J.L. Morris, Julia O'Neil P. A mixed culture Recovery method indicates that enteric bacteria do not enter the viable but nonculturable state // Appl. Environ. Microbiol. 1998. № 3 P. 1736 1742

166. Griffiths B.S., Ritz K., Wheatley R.E. Relationship between functional diversity and genetic diversity in complex microbial communities // Microbial communities.

167. Functional versus structural approaches (Insam H., Rangger A. eds.). Springer Verlag, Heidelberg, 1997. P. 1-9.

168. Grosser R.J., Warshavvsky D., Vestal J.R. Indigoes and enhanced mineralization of pyrene, benzo a. pyrene and carbazole in soils // Appl. Environ. Microbiol. 1991. № 57. P. 3462-3469.

169. Growley D.E., Brennerova M.V., Irwin C., Brenner V., Focht D.D. Rhizosphere effects on biodégradation of 2,5 dichlorobenzoate by a bioluminescent strain of root - colonizing Pseudomonas fluorescens II FEMS Microbiol. Ecol. 1996. № 20. -P. 79-90.

170. Haack, S.K., Garchow H., Klug M.J., Forney L.J. Analysis of factors affecting the accuracy, reproducibility, and interpretation of microbial community carbon source utilization patterns // Appl. Environ. Microbiol. 1995. № 61. P. 1458-1468.

171. Haas L.M. Improved eppifluorescence microscopy for observing planktonic microorganisms //Ann. Inst. Oceanodr. Paris, 1982. № 58. P. 261-266.

172. Habte M., Alexander M. Protozoa as agents responsible for the decline of Xanthomonas campestris in soil// Appl. Environ. Microbiol. 1975. № 29. P. 159-164.

173. Hahn, D., Amann R.I., Ludwing W., Akkermans A.D.L., Schleifer K.H. Detection of microorganisms in soil after in situ hybridization with r RNA-targeted, fluorescently labeled oligonucleotides // S.Gen. Microbiol. 1992. № 138. P. 879-887.

174. Hattori T. Kinetics of colony formation of bacteria: an approach to the basis of the plate count method // Rep. Inst. Agr. Res. Tohoru Univ. 1994. № 34. P. 1-36.

175. Hattori T., Hattori R. The physical environment in soil microbiology: an attempt to extend principles of microbiology to soil microorganisms // CRC Crit. Rev. Microbiol. 1976. № 4. P. 423-461.

176. Hattory T. Kinetis of colony formation of bacteria // Rep. Inst. Agr. Res. Tohoku Univ. 1985. №34. P. 1-36.

177. Heijnen C.E. Population dynamics of bacteria introduced into bentonite amended soil // Ph. D. Thesis., Wageningen / Wageningen Agricultural University. The Netherlands, 1992. 345 c.

178. Heijnen C.E., Paga S., van Elsas J.D. Metabolic activity of Flavobacterium strain P 25 during starvation and after introduction into bulk soil and the rhizosphere of wheat //FEMS Microbiol. Ecol. 1995. № 18. P. 129-138.

179. Heijnen C.E., van Elsas J.D., Kuikman P.J., van Veen J.A. Dynamics of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii introduced in soil: The effect of bentonite clay on prédation by protozoa // Soil Biol. Biochem. 1988. № 20. P. 483-488.

180. Heijnen C.E., van Veen J.A. A determination of protective microhabitats for bacteria introduced into soil // FEMS Microbiol. Ecol. 1991. № 85. P. 73-80.

181. Herbert R.A. Methods for enumerating microorganisms and determining biomass in natural environments // Methods in Microbiology. Acad. Press, London, 1990. V. 22. P. 2-35.

182. Heuer H., Smalla K. Evaluation of community level catabolic profiling using BIOLOG GN microplates to study microbial community changes in potato phyllosphere // J. Micrbiol. Methods. 1997. № 30. P. 47-61.

183. Ho W.C., Ko W.H. Soil microbiostasis: effects of environmental and edaphic factors // Soil Biol. Biochem. 1985. № 17. P. 167-170.

184. Hofte H., Whitely H.R. // Microbiol. Revs. 1989. № 64. V.53, № 5. P. 242.

185. Howell C.R., Stipanhovic R.D. Suppression of Pythium ultimum induced damping off of cotton seedlings by Pseudomonas fluorescens and its antibiotic pyoluteorin // Phytopathology. 1980. № 70. P. 712-715.

186. Jenkins D.E., Chaisson S.A., Matin A. Starvation induced cross protection against osmotic challenge in Escherichia coli II J. Bacterial. 1990. №172. P. 2779-2781.

187. Johannes A. van Veen, Leonard S. van Overbeek, van Elsas J. D. Fate and Activity of Microorganisms Introduced into Soil // Microbiology and Molecular Biology Reviews. 1997. June. P. 121-135.

188. Kaprelyants, A.S., Cottschal J.C., Kell D.B. Dormancy in non-sporulating bacteria // FEMS Microbiol. 1993. № 104. P. 271-286.

189. Keya S., Alexander M. Factors affecting growth of Bdellovibrio on rhizobium // Arch. Microbiol. 1975. №103. P. 37-43.

190. Kilbertus G. Etude des microhabitats contenus dans les agregats du sol. Leur relation avec la biomasse bacterium et la taille des procaryotes presents // Rev. Ecol. Biol. Sol. 1980. № 17. P. 543-557.

191. King E.B., Parke J.L. Population density of the biocontrol agent Burkholderia cepacia AMMDRI on four pea cultivars // Soil Biol. Biochem. 1996. № 28. P. 307312.

192. Kjelleberg S., Humphrey B.A., Marschall K.C. Initial phases of starvation and activity of bacteria at surfaces // Appl. Environ. Microbiol. 1983. № 46. P. 978-984.

193. Kjelleberg. S. Starvation in bacteria. Plenum Press. New York, N.Y., 1993. 456 p.

194. Kloepper J.M., Lifshitz R., Zablotowicr R. Free-living bacterial inocula fore handing crop productivity // Trends in Biotechnology. 1989. № 7. P. 39-44.

195. Kloepper J.W., Leong J., Teintze M., Schroth M.N. Enhanced plant growth by siderophores produced by plant-growth promoting rhizobacteia // Nature. 1980. № 286. P. 885-886.

196. Kloepper, J.W., Lifschitz R., Zablotowicz R. Free living bacterial inocula for enhancing crop productivity // Trends in Biotechnology. 1989. №2. P. 39-44.

197. Laczko E., Rudaz A., Aragno M. Diversity of anthropogenically influenced or disturbed soil microbial communities //Microbial communities. Functional versus structural approaches (Insam H., rangger A., eds). Springer Verlag, Heidelberg, 1997. P. 57-67.

198. Li D.-M., Alexander M. Factors affecting co-inoculation with antibiotic -producing bacteria to enhance rhizobial colonization and nodulation // Plant. Soil. 1990. № 129. P. 195-201.

199. Lindow S.E., Panopoulos NJ. The release of genetically-engineered microorganisms / Eds by Sussman M., Collins G., Skinner F., Stewart-Tall D. -London: Acad. Press, 1988. 121 p.

200. Liu S.J., Lu M. H., Bollag J.-M. Transformation of metachlor in soil inoculated with Streptomyces sp. // Biodégradation. 1990. № LP. 9-17.

201. Lundgren B. Fluorescein diacetate as a stain of metabolically active bacteria in soil //Oikos. 1981. №36. P. 17-22.

202. Lynch J.M. Biological control within microbial communities of the rhizosphere // Ecology of microbial communities. London, 1987. P. 55-82.

203. Lynch J.M. Promotion and inhibition of soils aggregate stabilization by microorganisms // J.Gen. Microbiol. 1981. № 126. P. 371-375.

204. MeClure N.C., Fry J.C., Weightman, A.J. Survival and catabolic activity of natural and genetically engineered bacteria in a laboratory scale activated sludge unit // Appl. Environ. Microbial. 1991. № 57. P. 366-373.

205. Middeldorp P.J.M., Briglia M., Salkinoja-Salonen M.S. Biodégradation of pentachlorophenol in natural polluted soil by inoculated Rhodococcus chlorophenolicus //Microb. Ecol. 1990. № 20. P. 123-139.

206. Miethling R., Karlson V. Accelerated mineralization of pentachlorphenol in soil upon inoculation with Mycobacterium chlorophenolicum PCP-1 and Sphingomonas chlorophenolica RA2 //Appl. Environ. Microbial. 1996. № 62. P. 4361-4366.

207. Mikanova O., Kubat J., Voriiek K., Kandova D. Schopnost kmenu Rhizobium leguminosarum zpristupiovat fosfor // Rostl. vyroba. 1995. V. 41, №9. P. 423-425.

208. Millar W.N., Cacida L.E. Microorganisms in soil as observed by staining with rhodaminelabeled lysozyme // Can. J. Microbiol. 1970. № 16. P. 305- 307.

209. Morgan J.A.W., Winstanley C., Pickup R.W., Jones J.G., Saunders J.R. Direct phenotypic and genotypic detection of a recombinant pseudomonad population released into lake water// Appl. Environ. Microbiol. 1989. № 55. P. 2537-2544.

210. Morita R.Y. Bioavailability of energy and its relationship to growth and starvation survival in nature// Can. J. Microbial. 1988. № 34. P. 436-441.

211. Morita R.Y. Starvation-survival: the normal mode of most bacteria in the ocean // F. Megusar and Gantar M. (ed). Proceedings of the IV International Symposium on

212. Microbial Ecology. Slovene Society of Microbiology, Ljubljana, Slovenia, 1986. P. 242-248.

213. Nijhuis E.H., Maat M.J., Zeegers I.W.E., Waalwijk C., van Veen J.A. Selection of bacteria suitable for introduction into the rhizosphere of grass // Soil Biol. Biochem. 1993. №25. P. 885-895.

214. Oades J.M. The role of biology in the formation stabilization and degradation of soil structure // Geoderma. 1993. № 56. P. 377-400.

215. Okon, Y. Azospirillum as a potential inoculant for agriculture // Trends Biotechnol. 1985. №3. P. 223-228.

216. Oliver J.D. Formation of viable but nonculturable cells // I S.Kjellcberg (cd.), Starvation in bacteria. Phenum Press, New York, N.Y., 1993. P. 239-272.

217. Paton A.M., Jones S.M. The observations and enumeration of microorganisms in fluids usings membrane filtration and incident fluorescence microscopy // J. Appl. Bacteriol. 1975. № 38. P. 199-200.

218. Paul E.A., Clark F.E. Soil microbiology and biochemistry. Academic Press. Inc., San Diego, Calif., 1988. 453 p.

219. Paul J.H., Cazares, L., Thurmond, J. Amplification of the rbc L gene from dissolved and particulate DNA from aguatic environ ments // Appl. Environ. Microbiol. 1999. №56. P. 1963-1966.

220. Peter Kampfer and Reinen M. Kroppenstedt. Numerical analysis of fatty acid patterns of coryneform bacteria and related taxa // Can. J. Microbiol. 1996. №10. P. 989-1005.

221. Peterkin P.I., Idziak E.S., Sharpe A.N. Detection of Listeria monocytogenes by derect colony hybridization on hybrophobic grid membrane filters by using a chromogen-labeled DNA probe // Appl. Environ. Microbiol. 1991. № 57. P. 586-591.

222. Porter K.G., Feig Y.S. The use of DAPI of identifying and counting aguatic microflora // Limnol. Oceanogr. 1980. № 25. P. 943-948.

223. Postma J., van Veen J.A. Habitable pore space and survival of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii introduced into soil // Microb. Ecol. 1990. № 19. P. 149-161.

224. Postma J., Walter S., van Veen J.A. Influence of different initial soil moisture contents on the distribution and population dynamics of introduced Rhizobium leguminosarum biovar trifolii // Soil Biol. Biochem. 1989. № 21. P. 437-442.

225. Postma J.D., van Elsas, Govaert J.M., van Veen J.A. The dynamics of Rhizobium leguminosarum biovar trifolii introduced into soil as determined by immunofluorescence and selecting plating technigues // FEMS Microbial. Ecol. 1988. №53. P. 251-260.

226. Rattray E.A.S., Prosser J.I., Killham K., Glover L.A. Luminescence based nonextractive technigue for in situ detection of Escherichia coli in soil // Appl. Environ. Microbiol. 1990. № 56. P. 3368-3374.

227. Roszak D.B., Col well R.R. Survival strategies of bacteria in the natural environment //Microbiol. 1987. № 51. P. 365-379.

228. Ruddick S.M., Williams S.T. Studies on the ecology of actinomycetes in soil. V. Some factors influencing the dispersal and adsorption of spores in soil // Soil Biol, and Biochem. 1972. V.4. №1. P.93-103.

229. Sayler G.S., Layton A.C. Environmental application of nucleic acid hybridization // Annu. Rev. Microbiol. 1991. № 44. P. 625-648.

230. Scanferlato V.S., Lacy G.H., Cairns J. Jr. Persistence of genetically engineereal Envinia carotovora in perturbed and effect on recovery of indigenous bacteria // Microb. Ecol. 1990. № 20. P. 11-20.

231. Schmidt E.L. Quantitative autecologicae study of microorganisms in soil by immunofluorescence // Soil. Sci. 1974. V. 118, №3. P. 141-149.

232. Selden R.F., Howie K.W., Rowe M.E., Goodman H.M., Moore D.D. Human growth hormone as a reporter gene in regulation studies employing transient gene expression // Mol. Cell. Biol. 1986. № 6. P. 3173-3179.

233. Shippers B., Bakker A., Bakker P., Weisbeek P., Lugtenberg B. Plant growth inhibiting and stimulating rhizosphere microorganisms // Microbial communities in soil. London, 1986. P. 34-39.

234. Simonet P., Normand P., Moiroud A., Bardin R. Indentification of Frankia strains in nodules by hybridization of polymerase Chain reaction products with strain-specific oligonucleotide probes // Arch. Microbiol. 1990. № 153. P. 235-240.

235. Sinclair N.A., Stores J.L. Isolation of obligatory anaerobic psychrophilis bacteria // J. Bacteriol. 1964. № 87. P. 562-565.

236. Sinclar J.L., Alexander M. Effect of protozoan predation on relative abundance of fact and slow-growing bacteria // Can. J. Microbiol. 1989. №35. P. 578-582.

237. Smalla K., Wachtendorf U., Heuer H., Liu W-T., Forney 1. Analisis of BOILOG GN substrate utilization patterns by microbial // Appl Environ Microbiol. 1998. № 64. P. 1220-1225.

238. Smiles D.E. Aspects of the physical environment of soil organisms // Biol. Fertil. Soils. 1988. №6. P. 204-215.

239. Stark J.M., Firestone M.K. Mechanisms for soil moisture effects on activity of nitrifying bacteria // Appl. Environ. Microbiol. 1995. № 61. P. 218-221.

240. Steffan R.J., Aflas R.M. DNA amplification to enhance detection of genetically engineered bacteria in environmental samples // Appl. Environ. Microbiol. 1988. № 54. P. 2185-2191.

241. Steffan R.J., Breen A., Atlas R.M., Sayle G.S. Application of gene probe methods for monitoring specific microbial populations in freshwater ecosystems // Can. J. Microbiol. 1989. № 35. P. 681-685.

242. Storr M.P., Stolp H., Truper H.G., Balows A., Schlegel H.G. The Prokaryotes A Handbook on Habitats, Isolation and Identification of Bacteria, Bd. I, Springer Verlag. Berlin, Heidelberg, New York, 1981. V. 2. P. 1820-1870.

243. Suwa Y., Hattory T. Detection of proliferating bacteria in soil population by the analysis of colony forming curves // Soil Sci. Plant Nutr. 1989. № 3. P. 511-515.

244. Swisher R., Carroll G.C. Fluorescein diacetate hydrolysis as an estimator of microbial biomass on coniferous needle surfaces // Microbial Ecology. 1980. № 6. P. 217-226.

245. Thomas Selnin P., Kamoilaveni R., Sharimugasundaran S. Agrochemical resistant mutants of nitrogen fixity cyanobacterium Tolypothrix tenuis an nitrogen fortilizez for rice //Biotechnol. Leff. 1992. V.14,№ 10. P. 961-974.

246. Thomashow L.S., Weller D.M., Bonsall R.F., Pierson L.S. Production of the antibiotic phenazine-l-carboxylic acid by fluorescent Pseudomonas species in the rhizosphere of wheat // Appl Environ Microbiol. 1990. № 56. P. 908-912.

247. Thompson I.P., Young C.S., Cook K.A., Lethbridge G., Burns R.J. Survival of two ecologically distinct bacteria {Flavobacterium and Arthrobacter) in unplanted and rhizosphere soil: field studies // Soil. Biol. Biochem. 1992. № 24. P. 1-14.

248. Thompson J.A. Production and guality control of legume inoculants // F.J.Bergersen (ed.). Methods for evaluating biological nitrogen fixation. John Wiley & Sons, Inc., New York, N.Y., 1980. P. 489-599.

249. Tiedje T., Colwell R., Growsman Y. Hodson R., Lenski R., Mach R., Regal R. The planned introduction of genetically engineered organisms // Ecology. 1989. V. 70. -№2. P. 295-315.

250. Toledo Gerardo, Bashan Yoav, Soeldner Al. In vitro colonization and increase in nitrogen fixation of seedling roots of black mangrove inoculated by a filamentous cyanobacteria//Can. J. Microbiol. 1995. V. 41, № 11. P. 1012-1020.

251. Trevors J.T., van Elsas J.D., Lee H., van Overbeek L.S. Vse of alginate and other carriers for encapsulation of microbial cells for use in soil // Microb. Releases. -1992. № l.P. 61-69.

252. Trigo Eduardo J. Rellase of genetically modificed organisms into the environment // ICCC VII: 7lh Int. Congr. Culture Collections, Beijing Oct. 12-16, 1992. P. 32.

253. Vargas R., Hattori T. Protozoan prédation of bacterial cells in soil aggregates // FEMS Microbiol. Ecol. 1986. № 38. P. 233-242.

254. Walter M.V., Barbour K., McDowell M., Seidler R.J. A method to evaluate survival of genetically engineered bacteria in soil extracts // Curr. Microbiol. 1987. № 15. P. 193-197.

255. Weichert D., Oliver J.D., Kjelleberg S. Low temperature induced non-culturability and killing of vibrio vulnificus // FEMS Microbiol. Lett. 1992. № 100. P. 205-210.

256. Weller D.M., Cook R.J. Suppression of take-all of wheat by seed treatments with fluorescent pseudomonads // Phytopathology. 1983. № 73. P. 463-469.

257. Whipps J.M., Lynch J.M. The influence of the rhizosphere on crop productivity // Advancer in microbial ecology. 1986. № 9. P. 178-226.

258. Williams S.T. Streptomycetes in the soil ecosystem //Nocardia and Streptomyces. -Stuttgart; N.Y., 1978. P.137-144.

259. Williams S.T., Mayfield C.J. Studies on the ecology of actinomytes in soil. The behaviour of neutrophilic Streptomycetes in acid soils // Soil Biol. And Biochem. 1971. №3. P. 197-208.

260. Wimpee C.F., Nadeau T.L., Nealson, K.H. Development of species-specific hybridization probes for marine luminous bacteria by using in vitro DNA amplification //Appl. Environ. Williams. S.T. 1991. № 57. P. 1319-1324.

261. Wright D.A., Killham K., Glover L.A., Prosser J.I. Role of pore size location in determinig bacterial activity during prédation by protozoa in soil // Appl. Environ // Microbiol. 1995. № 61. P. 3537-3543.

262. Wright D.A., Killhan K.A., Glover L.A., Prosser J.I. The effect of location in soil on protozoal grazing of a genetically modified bacterial inoculum // Geoderma. 1993. № 56. P. 633-640.

263. Zak J.C., Willig M.R., Moorhead D.L., Wildman H.G. Functional diversity of microbial communities: a guantitative approach // Soil Biol. Biochem. 1994. № 26. P. 1101-1108.

264. Zeph L.R., Stotzky, G. Use of a biotinylated DNA probe to detect bacteria transduced by bacteriophage PI in soil // Appl. Environ. Microbiol. 1989. № 56. P. 661-665.

265. Zhebrak I., Skorobogatova R., Kozhevin P. Survival of Corynebacterium glutamicum population in soil, rhizosphere and rhizoplane, FOODMICR02004, 1216 September, 2004, Portoroz, P09-18. P. 222.

266. ПЕРЕЧЕНЬ УСЛОВНЫХ ОБОЗНАЧЕНИЙ

267. А ангстрем (1 миллиметр = 107 ангстрем) ГЦ - гуанин + цитозин (содержание пар оснований в ДНК) ДНК - дезоксирибоиуклеиновая кислота Д - дальтон

268. КОЕ колониеобразующие единицымезо-ДПК — мезо-Диаминопимелиповая кислотамкм микрометры (1 миллиметр = 103 микрометров)1. МПА мясо-пептонный агар

269. МСТ мультисубстратпое тестирование1. МУ микробные удобрения

270. НАД никотинамидадениндинуклеотид

271. НПВ или НП109 нестерильная почва с высоким уровнем внесения С. glutamicum, 109 кл/г

272. НПН или НП107 нестерильная почва с низким уровнем внесения С. ^Ыатжит, 10 кл/г

273. НПУБ нестерильная почва, убитая биомасса н.р. - не регестрируется популяция С. glutamicum ОМЧ - общее микробное число ПЦР - полимеразная цепная реакция РНК - рибонуклеиновая кислота

274. СПВ или СП109 стерильная почва с высоким уровнем внесения С. glutamicum, 109 кл/гЩ

275. СПН или СП10 стерильная почва с низким уровнем внесения С. glutamicum, 107 кл/г

276. СПУБ стерильная почва, убитая биомасса1. УФ ультра фиолетовый1. ФДА флуоресцеии-диацетат

277. ФИМ фосфотидилииозитмонозиды

278. ФИТЦ флуоресцеин-изотиоциаиат

279. С. glutamicum СогупеЬаМегшт glutamicum1. ОМЧ общее микробное число