Диагностика и морфофункциональная характеристика риккетсиозов у собак тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 06.02.02, кандидат наук Раевская, Мария Андреевна

• Раевская, Мария Андреевна
• кандидат наук
• 2012

Оглавление диссертации кандидат наук Раевская, Мария Андреевна

СОДЕРЖАНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Историческая справка

1.2. Токсономическое положение и свойства возбудителей риккетсиозов

1.3. Заболевания, вызываемые риккетсиями

1.4. Распространение, векторы и природные резервуары возбудителей риккетсиозов собак

1.5. Особенности клинического течения риккетсиозов

1.6. Диагностика риккетсиозов

1.7. Лечение инфекций, вызванных риккетсиями

1.8. Профилактические меры

1.9. Заключение

2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материал и методы исследований

2.2. Распространение риккетсиозов собак в Ростовской области

2.3. Разработка для выявления и идентификации риккетсий

2.4. Симптомы болезни

2.5.Особенности риккетсиозов у собак, проявляющихся преимущественно гемолитическим синдромом

2.5.1. Особенности клинического проявления и течения риккетсиозов при остром течении с гемолитическим синдромом

2.5.2. Результаты морфологических исследований крови у собак при остром течении риккетсиозов с гемолитическим синдромом

2.5.3. Результаты биохимических исследований крови у собак при остром течении риккетсиозов с гемолитическим синдромом

2.6. Особенности риккетсиозов у собак, проявляющихся преимущественно гепатопривным синдромом

2.6.1. Особенности клинического проявления и течения риккетсиозов при гепатопривном синдроме

2.6.2. Результаты морфологических исследований крови при остром течении риккетсиозов у собак с гепатопривным синдромом

2.6.3. Результаты биохимических исследований крови у собак при остром течении риккетсиозов с гепатопривным синдромом

2.7.0собенности риккетсиозов у собак, проявляющихся преимущественно уремическим синдромом

2.7.1. Особенности клинического проявления и течения риккетсиозов с острым течением при уремическом синдроме

2.7.2. Результаты морфологических исследований крови у собак с острым течением риккетсиозов с уремическим синдромом

2.7.3. Результаты биохимических исследований крови у собак при остром течении риккетсиозов с уремическим синдромом

3. СРАВНИТЕЛЬНАЯ ЭФФЕКТИВНОСТЬ МЕТОДОВ ЛЕЧЕНИЯ СОБАК, БОЛЬНЫХ РИККЕТСИОЗАМИ

4. ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ

5. ВЫВОДЫ

6. ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

7. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Диагностика и морфофункциональная характеристика риккетсиозов у собак»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Проблема заболеваний собак инфекциями, переносчиками которых являются иксодовые клещи, приобретает все большее значение для многих регионов России и в первую очередь для южных регионов [2]. В последнее время существенно расширились представления о распространении сочетанных очагов трансмиссивных клещевых инфекций риккетсиозной, бактериальной и протозойной природы на территории Российской Федерации [4, 7]. В Ростовской области и Краснодарском крае отмечается резкое и устойчивое повышение уровня заболеваемости собак пироплазмидозами и появилась новая проблема -клещевые риккетсиозы. Возрастанию интереса к этой группе инфекций способствовало и появление «новых» и пока не изученных для России инфекций - гранулоцитарного анаплазмоза собак (ГАС) и моноцитарного эрлихиоза собак (МЭС). Однако реальная роль этих клещевых патогенов в инфекционной патологии собак на территории Ростовской области пока не изучена. Нет данных по распространению этих инфекций, слабо разработана диагностическая база по их выявлению. В доступной литературе мало данных по морфофункциональным изменениям в органах и тканях собак при риккетсиозах, что и послужило целью нашего исследования [4, 26, 37].

Цель работы. Изучить распространение и морфофункциональные изменения при риккетсиозах у собак с разными клиническими синдромами, разработать способ диагностики и терапии собак, больных риккетсиозами.

Достижение намеченной цели осуществлялось решением следующих

задач:

1. провести анализ эпизоотической ситуации при риккетсиозах собак в Ростовской области в зависимости от возраста, породы, сезона года;

2. установить клинические критерии у собак, больных риккетсиозами;

3. изучить морфологические и биохимические показатели крови собак при риккетсиозах;

4. создать набор для диагностики риккетсиозных инфекций у собак в реакции ПЦР;

5. провести сравнительное изучение терапевтической эффективности схем лечения с текущим контролем по гематологическим показателям.

Научная новизна. Изучено распространение риккетсиозов у собак в Ростовской области в зависимости от возраста, породы, сезона года. Выявлены клинические и гематологические особенности при риккетсиозе у собак. Разработан диагностический алгоритм при риккетсиозах у собак. Выявлены основные синдромы, характерные для этих заболеваний, и установлены их диагностические критерии. Найден эффективный способ комплексной терапии собак, больных риккетсиозами.

Практическая значимость. Разработан набор для детекции генетического материала риккетсий в реакции ПЦР. Полученный научный материал позволяет точно и объективно оценить тяжесть течения риккетсиозов, выяснить основные системы организма, поврежденные патологическим процессом. Предложены схемы комплексной терапии собак, больных риккетсиозами с гепатопривным синдромом.

Апробация работы. Основные результаты диссертационной работы доложены и одобрены на заседаниях ученого совета ГНУ СКЗНИВИ; на четырех международных и двух всероссийских научно-практических конференциях: Международной научно-практической конференции преподавателей, молодых учёных, аспирантов и студентов факультета РУДН, г. Москва; Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы производства и переработки продуктов животноводства», п. Нижний Архыз; Международной научно-практической конференции «Актуальные проблемы биологии, нанотехнологий и медицины», г. Ростов-на-Дону; Международной научно-практической конференции «Пути интенсификации производства и переработки продуктов животноводства»,г. Черкесск; Всероссийской научно-практической конференции «Актуальные проблемы ветеринарного обеспечения Российского животноводства», г. Новочеркасск; Всероссийской научно-практической конференции «Научное обеспечение инновационного развития отечественного животноводства», г. Новочеркасск.

Реализация результатов исследований. Практические предложения реализуются в практической работе ветеринарных клиник Ростовской

области, ГУРО «Ростовская областная ветеринарная лаборатория» в отделе донозологической и клинической диагностики, лаборатории функциональной диагностики болезней с.-х. животных ГНУ СКЗНИВИ Россельхозакадемии, в учебном процессе при чтении лекций и проведении лабораторно-практических занятий на кафедре внутренних незаразных болезней и патофизиологии Дон ГАУ по курсу «Болезни мелких домашних животных».

Публикации. По материалам представленной к защите диссертации опубликовано 11 научных работ, в том числе 3 в издании, рекомендованном ВАК.

Структура и объем работы. Диссертация изложена на 127 страницах текста компьютерного исполнения, состоит из введения, обзора литературы, результатов собственных исследований и их обсуждения, выводов, предложений для практики и списка литературы. В диссертации приведено 23 таблицы, она иллюстрирована 15 рисунками. Список литературы включает 191 источника литературы, в том числе 114 на иностранных языках.

На защиту выносятся следующие основные положения:

1) распространение риккетсиозов собак в Ростовской области;

2) клинико-морфологические критерии диагностики риккетсиозов у собак, основные синдромы и симптомы риккетсиозов у собак;

3) особенности терапии при разной степени тяжести риккетсиозов у собак.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 1.1. Историческая справка

Риккетсиозы собак - группа трансмиссивных, инфекционных заболеваний домашних собак и других представителей семейства псовых, эндемичных на различных территориях, но, однако, широко распространенные во всём мире [10, 14, 18].

Основным представителем риккетсиозов собак является Ehrlichia canis. Е. canis впервые была обнаружена в Алжире в 1935 году. Внимание на заболевание было обращено во время войны во Вьетнаме, когда эрлихиоз приводил к смерти сотен служебных военных собак. Позднее МЭС вызвал интерес в 1987 году, когда Е. chaffeensis, очень похожий организм, был идентифицирован как возбудитель моноцитарного эрлихиоза человека. В 1996 году было доказано, что заражение Е. chaffeensis вызывает у собак признаки, неотличимые от заражения Е. canis [1, 8, 16].

До 1986 года считалось, что эрлихиоз - это проблема чисто ветеринарная, но в 1986 у 51-го летнего мужчины из Детройта, укушенного клещом в районе Арканзаса, в крови были обнаружены эрлихии. В 1990 агент человеческого эрлихиоза был изолирован крови резервиста армии США в v/ Форте Chaffee, Арканзас, далее была проведена генетическая экспертиза возбудителя, и он был назван Е. chaffeensis [8, 28, 34].

В 1950 г. в Японии Misao Kobayashi из костного мозга больного с симптомами мононуклеоза выделил возбудителя, которого вначале относили к риккетсиям, и лишь в 1984 г. возбудитель отнесен к эрлихиям Ehrlichia sennetsu. Заболевание, получившее название «лихорадка сеннетцу», наблюдалось в ограниченном регионе Японии. Всего с 1953 по 1978 гг. наблюдалось 46 случаев. В различных штатах США заболеваемость колеблется в пределах 3,3—5,3 случаев на 100 000 населения в год [3,64, 70].

Наибольшую известность эрлихиоз собак получил после вспышки инфекции у британских военных собаках в Сингапуре в 1963 и у военных собак Соединенных Штатов во Вьетнаме, эпизоотия началась в 1968, что

привело к гибели более чем 200 собак в течение 4-х лет, при этом все собаки погибли от тяжелой панцитопении [5, 7, 9, 28, 30, 82, 84].

Эрлихиозы и анаплазмозы являются типичными трансмиссивными природноочаговыми зоонозами. Если заболевания животных переносят, главным образом, клещи родов Dermacentor, Rhipicephalus, Amblyomma, то в передаче эрлихиозов человека велика роль клещей рода Ixodes. Наибольшее значение, как патогены человека, имеют виды Ehrlichia chaffeensis, E.muris и Anaplasma phagocytophilum, в 2001 г. вычлененные из рода Ehrlichia [12, 18, 17, 20, 21, 39, 72]. Известны единичные случаи заболеваний человека, вызываемые E.canis и E.ewingii, возбудителями эрлихиозов собак [10, 13, 15, 22, 85, 86].

Имеется группа не связанных с клещами эрлихий (в настоящее время их относят к роду Neorickettsia [12, 23, 24]), переносчиками которых служат гельминты, а заражение происходит алиментарным путем. Человек заражается N. sennetsu при употреблении недостаточно термически обработанной рыбы, содержащей инфицированных трематод [12, 18, 29, 35, 59, 62].

N.(E.) risticii локализуется в трематодах, паразитирующих в улитках и различных водных насекомых. Вызывает тяжелые заболевания лошадей и собак, которые заражаются, поедая траву с зараженными улитками, или с водой естественных водоемов[28,41, 65, 67].

1.2. Токсономическое положение и свойства возбудителей риккетсиозов

Риккетсиозы - группа заболеваний многих видов животных и человека, вызываемых внутриклеточными паразитами (риккетсиями), которые передаются в основном трансмиссивно и проявляются у животных лихорадками, пневмониями, ринитами, абортами и послеродовыми эндометритами, а также поражением лимфатической системы и форменных элементов крови [19, 80, 81, 83].

Риккетсии названы в честь американского микробиолога Говарда Тейлора Риккетса, открывшего в 1909 году возбудителя одного из

риккетсиозов - пятнистую лихорадку Скалистых гор и погибшего при ее исследовании [19, 73, 74, 80, 81].

Риккетсии - довольно многочисленная группа, представленная патогенными и непатогенными видами. Патогенных видов значительно меньше. В природе риккетсии обитают преимущественно в организме насекомых (вшей, блох, клещей), а также грызунов, диких и сельскохозяйственных животных [19, 20, 21, 80, 81].

До 2001 года согласно Определителя бактерий Берджи (1984; 1994) риккетсии классифицировались следующим образом: царство Procariotae, отдел Gracilicutes, секция 9 - Rickettsii et Chlamydii, порядок Rickettsiales [19], который включал три семейства: Rickettsiaceae, Bartonellaceae и Anaplasmataceae. В семейство Rickettsiaceae входили следующие роды: Rickettsia, Rochalimaea, Coxiella, Ehrlichia, Cowdria, Neorickettsia, Wolbachia и Rickettsiella. В семейства Bartonellaceae два рода: Bartonella и Grahamella. В семейство Anaplasmataceae четыре рода: Anaplasma,

Aegyptianella, Haemobartonella, Eperhytrozoon [2, 48, 77, 79].

В настоящее время таксономическое положение риккетсий устанавливают с помощью молекулярно-генетических методов. У этих бактерий выявлены три различных кластера генов, на основании чего их разбили на три группы [6, 27, 31].

На сегодняшний день токсономия возбудителей риккетсиозов собак выглядит следующим образом: царство Procariotae, Тип Proteobacteria, Class Alphaproteobacteria, порядок Rickettsiales, Семейство Anaplasmataceae, включает роды: Aegyptianella, Anaplasma, Ehrlichia, Neorickettsia [7,11, 32, 63, 66, 75].

Род Aegyptianella включает виды, патогенные для птиц. Род Anaplasma включает следующие виды: Anaplasma bovis, Anaplasma ovis, Anaplasma platys, Anaplasma phagocytophilum. Для собак патогенными являются последние два вида, и заболевания, вызываемые этими видами, называют анаплазмозами. A. phagocytophilum, кроме того, патогенна для человека. Род Ehrlichia включает так называемую группу Е. canis, в которой три вида: Е.

canis, E. chaffeensis, E. ewingii, все патогенны для собак и человека, и заболевания, вызываемые этими видами, называют эрлихиозами. И наконец, род Neorickettsia, включает виды Neorickettsia helminthoeca, Neorickettsia risticii, Neorickettsia sennetsu. N. helminthoeca и N. risticii могут болеть собаки и кошки, а N. sennetsu патогенен для человека [7, 33, 44, 50, 57].

Таким образом, патогенные возбудители для собак собраны в три основные группы. В первой группе вместе с Ehrlichia chaffeensis и Ehrlichia canis находится Ehrlichia (Cowdria) ruminantium; все они переносятся иксодовыми клещами [31, 44].

Во вторую группу попали бактерии, также переносимые иксодовыми клещами: возбудитель гранулоцитарного эрлихиоза у человека, сходный с Ehrlichia equi, а также сама Ehrlichia equi, Ehrlichia phagocytophila и Anaplasma marginale [11, 27, 48, 61, 63].

И наконец, в третью группу вместе с Ehrlichia sennetsu попали эрлихии, обитающие в трематодах, хозяевами которых служат рыбы. Эта группа и по генетическим признакам, и по занимаемой экологической нише далеко отстоит от возбудителей человеческих эрлихиозов, обнаруженных в США [2, 27, 66, 75, 77, 79].

Для первых двух групп эрлихий резервуаром служат млекопитающие, а переносчиками - иксодовые клещи. Личинки и нимфы инфицируются при кровососании и сохраняют возбудителя от линьки к линьке до конца жизни. Трансовариальная передача им несвойственна. Заражение происходит при укусах клеща [ 11, 27, 31, 44, 77, 79].

Строение риккетсий аналогично строению прочих бактерий. У риккетсий выделяют оболочку, цитоплазму и зернистые включения [9, 13, 50, 57]. Ядерная структура представлена глобулами (от 1-2 до 4). В клетках выявляют ДНК и РНК. Риккетсии полиморфны. Все многообразие их форм может быть сведено к четырем основным морфологическим типам: кокковидные, монозернистые риккетсии, размер 0,3-1 мкм (чаще 0,5 мкм) в диаметре, этот тип наиболее патоген и типичен для интенсивного размножения возбудителя в клетках; палочковидные, биполярные

(гантелевидные), размер: ширина 0,3 мкм, длина 1-1,5 мкм (также выделяются при активном развитии риккетсиоза); бациллярные, удлиненные, обычно изогнутой формы, размер: в ширину 0,3-1 мкм, в длину 3-4 мкм (выделяются в начальном периоде болезни, слабовирулентные, часто бизернистые палочки, иногда могут включать по 4 зернышка парно расположенных на полюсах); нитевидные, полизернистые риккетсии имеют вид длинных, причудливо прогнутых нитей, размер: ширина 0,3-1 мкм, длина 10-40 мкм и более [2, 14, 27, 61, 76]; (их выделение также характерно для начальных стадий инфекции - показатель раннего умеренного риккетсиоза); встречаются также очень мелкие до 0,2 мкм, проходящие через бактериальные фильтры и невидимые в обычном световом микроскопе формы, которые являются ранней стадией внутриклеточной репродукции возбудителя болезни [11, 27, 63, 66].

Риккетсии неподвижны, спор и капсул не образуют. Риккетсии размножаются, как и бактерии, простым поперечным делением. Выделяют 2 типа деления: обычное деление кокковидных а - и в - форм с образованием гомогенных популяций; размножение дроблением нитевидных с1 - форм с последующим образованием популяций, состоящих из клеток а - и в - типов.

Риккетсии окрашиваются грамотрицательно. Кокковидные формы риккетсий окрашиваются по Романовскому-Гимзе и Цилю-Нильсону в красный цвет, палочковидные и нитевидные в красно-голубой (зерна-гранулы красные, цитоплазма между ними голубая), по Здродовскому - в красный цвет [27, 46, 47, 49].

Чаще в практике используют методы дифференциальной окраски фуксином и метиленовым синим, это методы окраски по Здродовскому и Маккиавелло. Суть окраски этими методами заключается в том, что риккетсии имеют известную кислотоустойчивость. После окраски препаратов фуксином, их дифференцируют кислотой и докрашивают метиленовым синим. В итоге риккетсии сохраняют окраску фуксина, а тканевые элементы окрашиваются в контрастный синий или голубой цвет [32, 55, 56, 78, 86].

Патогенным риккетсиям свойственен внутриклеточный паразитизм. Риккетсии не культивируются на обычных питательных средах. Их репродуцируют на развивающихся куриных эмбрионах (РКЭ), в культуре клеток или в организме лабораторных животных [44, 51, 58, 69].

Риккетсии - аэробы, поглощают 02 и выделяют С02, образуют гемолизины, активно окисляют глютаминовую кислоту, выделяя углекислый газ, но индифферентны к глюкозе, образуют эндотоксины, сходные в иммунологических реакциях с бактериальными токсинами, но будучи связанными с риккетсиями, в окружающую среду не выделяются [31, 36, 38, 40,42, 45].

Патогенные риккетсии образуют токсические вещества, играющие важную роль в патогенезе риккетсиозов. От бактериальных токсинов их отличает неотделимость от микробных клеток и их чрезвычайная неустойчивость. Эндотоксины сходны в иммунологических реакциях с бактериальными токсинами, но будучи связаны с риккетсиями, в окружающую среду не выделяются. В то же время они не тождественны эндотоксинам, так как термолабильны (белки) и неустойчивы к действию формалина (при иннактивации сохраняют свои иммуногенные свойства). Всем патогенным видам присущи гемолитические свойства [31, 33, 52, 54].

Выживаемость в жидких средах зависит от их свойства рН и температуры, лучше сохраняются в белковых средах с нейтральной или слабощелочной рН. Так, Coxiella burnetii сохраняется в молоке при 4°с до 2-х месяцев. В высушенном состоянии сохраняются дольше на различных субстратах (фекалии вшей) до 1 - 3 лет. Во внешней среде устойчивость риккетсий невысокая [6,11, 53, 74, 78]. Нагревание во влажной среде до 50-60°с обеспечивает гибель риккетсий через 5-30 мин, при 70°с - через 1-3 мин [50, 57, 61]. Риккетсии Бернета (возбудитель Ку-лихорадки) выдерживают длительное (30-90 мин) нагревание при 60-63°с и полностью погибают только при кипячении. Низкие температуры не убивают, а консервируют риккетсий. Консервируются при минус 20-70°с, в замороженном состоянии длительное время сохраняют жизнеспособность и

вирулентные свойства. При воздействии на риккетсий различных дезсредств в обычных концентрациях (3-5 % фенол, 2% хлорамин, 2 % формальдегид, 10 % перекись водорода, 10 % гидроокись натрия) их гибель наступает через 5 мин, а 1 % раствор хлорной извести убивает риккетсий через 1 минуту. Риккетсии чувствительны к тетрациклину, дибиомицину, синтомицину, левомицетину и сульфаниламидам. Лиофилизация обеспечивает длительное сохранение (годами) [61, 79].

Патогенность риккетсий определяется их способностью проникать в чувствительные к ним клетки, где происходит их размножение, синтезировать токсин, действие которого проявляется лишь при жизни микроорганизмов. Токсин не секретируется, как истинные экзотоксины, и не вызывает интоксикацию организма после гибели возбудителя, как эндотоксины [20, 23, 24]. Он термолабилен, разрушается при нагревании микробной суспензии до 600С. Внутривенное введение взвеси живых риккетсий белым мышам вызывает острую интоксикацию и смерть животных через 2-24 часа. Риккетсиям свойственна изменчивость, проявляющаяся снижением и утратой вирулентности с сохранением иммуногенных свойств, что используют при изготовлении живых авирулентных вакцин [11]. Риккетсии схожи как с вирусами, так и с бактериями, но существует ряд отличительных особенностей [6, 33, 50, 57, 75].

Сходство с прокариотными микроорганизмами: риккетсии имеют трехслойную клеточную стенку; содержат два типа нуклеиновых кислот, рибосомы и систему дыхания, сходную с прокариотами; окрашиваются анилиновыми красителями; чувствительны к антибиотикам тетрациклинового ряда, сульфаниламидам, а некоторые виды (К Ы1ттЙюеса) - к широкому спектру антибиотиков [27, 31, 50, 66]. Сходство с вирусами: риккетсии облигатные внутриклеточные паразиты; самые мелкие формы риккетсий обладают фильтруемостью через бактериальные фильтры; риккетсии способны культивироваться только в живой клетке (РКЭ, КК, организме лабораторных животных); риккетсии обладают тканевым

тропизмом; для риккетсий характерно отсутствие строгой хозяиноспецифичности. Риккетсии стимулируют выработку интерферона [2, 11,79].

Таким образом, для микроорганизмов порядка Rickettsiales свойственны: плеоморфизм; неподвижность; грамотрицательное окрашивание; патогенность для многих видов сельскохозяйственных животных, человека и членистоногих; невысокая устойчивость во внешней среде; особая чувствительность к антибиотикам тетрациклинового ряда [11, 32, 44].

Основной отличительной особенностью от прокариотных микроорганизмов и вирусов является наличие в цикле развития риккетсий членистоногих (вшей, клещей, блох) [7, 11, 18, 27].

1.3. Заболевания, вызываемые риккетсиями

Разные виды риккетсий заражают различные типы лейкоцитов, что обусловливает названия передаваемых ими болезней: A. phagocytophilum и E.ewingi - гранулоциты, в основном, нейтрофилы (гранулоцитарный анаплазмоз собак - ГАС и гранулоцитарный эрлихиоз собак - ГЭС), E.chaffeensis, E.muris, E.canis - моноциты (моноцитарный эрлихиоз собак -МЭС) [88, 102, 103, 147, 156].

Виды Е. equi, E.phagocytophila и возбудитель ГЭС в настоящее время объединены в один вид A. phagocytophilum [10]. МЭС, вызываемый E.chaffeensis, описан впервые в 1986 г., возбудитель выделен в 1991 г. Распространен, главным образом, на юго-востоке и в центре США. Основным переносчиком E.chaffeensis служит клещ Amblyomma americanum, в меньшей степени - Dermacentor variabilis. Зараженность имаго А. americanum колеблется от 2 до 10-17% [91, 127, 133, 149]. Первой инфекцией человека, вызванной Ehrlichia, была мононуклеозоподобная болезнь, лихорадка Сеннетцу, обнаруженная в Японии в 1954 г. Для постановки диагноза у человека применяли в течение нескольких лет серологические реакции на Е. canis - этиологический возбудитель геморрагической болезни у

собак [123, 149, 160]. В 1986 г. была впервые диагностирована инфекция в США у человека, путешествовавшего по Арканзасу и укушенного клещом. В 1991 г. у солдата армии США был выявлен новый вид возбудителя, поражающий преимущественно мононуклеарные кроветворные клетки [91, 100, 107, 113, 144, 152]. Было обнаружено, что этот вид Е. chaffeensis, названный "в честь" военной базы (Fort Chaffee, штат Арканзас), где дислоцировалось подразделение, в котором служил больной солдат, как серологически, так и морфологически напоминал Е. canis [104, 116, 141, 153]. С помощью рибосомной ДНК-пробы и путем сравнения нуклеотидных последовательностей рДНК 16S, широко применяемого метода классификации бактерий, был описан другой вид инфекции у 12 больных из Миннесоты и Висконсина (США). Этот микроорганизм инфицирует только гранулоцитарные кроветворные клетки. Он, вероятно, передается теми же клещами, что и болезнь Лайма, а именно клещами Ixodes scapularis [105, 110, 155].

Гранулоцитарный эрлихиоз у человека проявляется острым, иногда летальным, лихорадочным синдромом, обычно сопровождаемым лейкопенией, тромбоцитопенией и повышением активности аминотрансфераз в сыворотке. О данном возбудителе известно мало, поскольку его никогда не культивировали.

J. Goodman и соавт. [1] обследовали 3 больных - 2 мужчин (61 года и 64 лет) и 1 женщину (66 лет), у которых отмечались характерные симптомы и имелись лабораторные признаки, свидетельствующие о наличии человеческого гранулоцитарного эрлихиоза, в том числе и необъяснимая лихорадка после возможного контакта с клещами, грануло - и тромбоцитопения. Периферическую кровь изучали под микроскопом, а также с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР) [97, 111, 114, 158]. Кроме того, кровь вносили в культуру HL-60-клеток, линию промиелоцитарных лейкозных клеток. Клеточные культуры мониторировали на наличие инфекции окрашиванием по методу Гимзы и ПЦР. Пробы крови и культивируемые клетки обрабатывали в помещении, в котором никогда не

было микроорганизмов Ehrlichia и их аминокислот [106, 119, 125, 134, 140]. Кровь всех 3 больных вызвала заражение культур HL-60-клеток внутриклеточными микроорганизмами, обнаруженными уже на 5-й день после ее внесения в культивируемые клетки, причем лизис клеток происходил в течение 12-14 дней. Анализ крови этих 3 больных на наличие человеческого гранулоцитарного эрлихиоза с помощью ПЦР дал положительный результат, хотя только у 1 больного были включения, свидетельствующие о присутствии в нейтрофилах бактерий Ehrlichia [103, 126, 136, 140,145, 159].

Идентичность культивируемых микроорганизмов подтвердилась в ходе иммунофлюоресцентной микроскопии, анализа с помощью ПЦР, а также секвенирования ДНК. В областях рибосомного гена 16S определяли первичную структуру макромолекул ДНК из инфицированных клеток. Последовательность во всех трех изолятах, полученных от людей, была идентичной и отличалась от изучаемого штамма Е. equi наличием скорее гуанина [111], чем аденина у нуклеотида 84. Больные выздоровели после лечения доксициклином (2 больных) и хлорамфениколом (1 больной) [96, 99, 121, 122, 139]. Генетические различия в последовательностях рДНК 16S между микроорганизмом, вызывающим гранулоцитарный эрлихиоз, Е. equi и Е. phagocytophila малы, и еще предстоит понять, является ли он новым видом или просто вариантом ранее известных патогенов животных [99, 114, 116, 153]. Благодаря развитию методики серологических определений с помощью специфического антигена, полученного из вновь изолированных микроорганизмов, в настоящее время можно выяснить, различаются ли эти микроорганизмы также и иммуногенетически [104].

W. Schaffner и S. Standaert [111] в передовой статье уделяют особое внимание тому, что в настоящее время человеческий эрлихиоз встречается все чаще из-за постоянных перемещений восприимчивых людей в места, где они встречаются с клещами-переносчиками [93, 102]. Два вида инфекций, вызываемых микроорганизмами Е. chaffeensis и вариантами Е. equi и Е. phagocytophila, как описано здесь, являются клинически неотличимыми.

Данная болезнь очень напоминает пятнистую лихорадку Скалистых Гор, но протекает без появления пятен. У больных обычно отмечаются лихорадочное состояние, головная боль, общее недомогание в течение месяца после контакта с клещом. При острой инфекции имеют место лейко - и тромбоцитопения, обычно сопровождаемые гепатитом в легкой форме [147, 149, 160]. Могут возникнуть почечная и легочная недостаточность, а также поражение центральной нервной системы. У пожилых людей вероятность тяжелой инфекции и летального исхода выше, причем смертность составляет 5% [88, 90, 111].

После появления симптомов необходимо как можно скорее начать эмпирическую терапию. Стандартные дозы тетрациклина или доксициклина могут вводиться либо внутрь, либо внутривенно [19,80, 81, 105]. Не рекомендуется профилактическое лечение антибиотиками или после укуса клещом, или до потенциального контакта с клещами, поскольку отсутствуют данные, подтверждающие целесообразность такой практики [81, 115, 117, 120]. К мерам профилактики инфекции относятся избежание укусов клещей, применение препаратов, отпугивающих насекомых, ношение одежды светлых тонов, длинных брюк и рубашек с длинными рукавами, тщательный осмотр кожи после прогулок в лесу или поле [93, 102].

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Раевская, Мария Андреевна, 2012 год

7. СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Абуладзе К.И. Паразитология и инвазионные болезни сельскохозяйственных животных /К.И. Абуладзе, Н.В. Демидов, A.A. Непоклонов и др.// Под ред.: К.И. Абуладзе. - 3-е изд., перераб. и доп. - М.: Агропромиздат, 1990. - С. 358-362.

2. Авроров В.Н. Электронно-микроскопические исследования при риккетсиозе крупного рогатого скота /В.Н. Авроров, В.А. Черванев// Ветеринария. - 1991. - № 10. - С. 29-31.

3. Алексеев А.Н. 1993. Система клещ-возбудитель и ее эмерджентные свойства /А.Н. Алексеев// СПб: ЗИН РАН. 204 с.

4. Алексеев А.Н. 1994. Многообразие способов циркуляции возбудителя - необходимое условие существования очагов природных инфекций /А.Н. Алексеев // Актуал. вопр. мед. паразитол. Тез. докл. научн. конф., посвящ. 110-летию со дня рожд. акад. E.H. Павловского. 23-24 марта 1994 г. С.-Петербург. С. 5.

5. Алексеев А.Н. Гено - и фенотипы кровососущих клещей Ixodes persulcatus Schulze (Acariña, Ixodidae) различных популяций: встречаемость, зараженность патогенами бактериальной природы (боррелиями и эрлихиями) /А.Н. Алексеев, Е.В. Дубинина, A.B. Семенов, Л.А. Анисюткин// Роль кровососущих насекомых и клещей в лесных экосистемах России. Сб. науч. Работ по матер. Республик, конф. 3-5 октября 2000 г./ Под. ред. А.К. Юзбекова и в.Г. Федоровой. Великий Новгород: НовГУ им. Ярослава Мудрого. С. 70-75.

6. Андриасян В.Б. Инфекционный кератоконъюнктивит у крупного рогатого скота в Северо-Западной зоне РСФСР /В.Б. Андриасян, В.П. Урбан// Инфекционные болезни сельскохозяйственных животных и птиц: Сб.науч.тр./Л., 1987. - С. 14-20.

7. Антонов Б.А. Лабораторные исследования в ветеринарии: вирусные, риккетсиозные и паразитарные болезни / Б.А. Антонова// - М.: Агропромиздат, 1987. - С. 191-198.

8. Антыкова JI.П. Фауна кровососущих членистоногих и переносчиков трансмиссивных инфекций на территории Санкт-Петербурга /Л.П. Антыкова, Л.В. Пызина, Т.О. Смыслова// С.-Петербург, 1996 г. ЗИН РАН. С. 7-8.

9. Арумова Е.А. Первые сведения об эрлихиозах в Московской области /Е.А. Арумова// РЭТ-инфо. 2006.- № 2.- С. 50.

10. Арумова Е.А. Первые сведения об эрлихиозах в Московской области/Е.А. Арумова//РЭТ-инфо. 2006, № 2, С. 50.

11. Бакулов. И.А. Карантинные и малоизвестные болезни животных /И.А. Бакулов// - М.: Колос, 1983. - С. 260-264.

12. Гласкович A.A. Практикум по частной микробиологии /A.A. Гласкович//- Мн.: Ураджай, 2000. - 250 с.

13. Гусев М.В. Микробиология /М.В. Гусев, Л.А. Михеева// - М.: Изд. Московского университета, 1987.-С. 171-172.

14. Дроздов В.М., Оберт А С., Рудаков Н. В. и др. Ошибки диагностики и дифференциальный диагноз клещевых инфекций в Западной Сибири /В.М. Дроздов, A.C. Оберт, Н.В. Рудаков// Современная ситуация и борьба с клещевыми инфекциями в XXI веке. - Томск, 2006. — С. 50—51.

15. Дубинина Е.В. Синергизм и антагонизм возбудителей болезней и их переносчиков /Е.В. Дубинина // Проблемы и перспективы паразитоценологии. Матер. V конф. паразитоценол. Украины. 29-30 окт. 1997 г. Харьков-Луганск. 1998 С. 11-12.

16. Жукова Т. Г. Эпидемиологичесая обстановка и актуальность проблемы клещевых инфекций для Томской области /Т.Г. Жукова, A.B. Шихин, A.B. Полторацкая// Мед.-фармац. журн. — 2006. — № 4. — С. 44— 49.

17. Здродовский П.Ф. Руководство по лабораторной диагностике вирусных и риккетсиозных болезней /П. Ф. Здродовсий// - М.: Медицина, 1968.-С. 468-591.

18. Злобин В. И. Актуальные вопросы эпидемиологии и современные подходы к профилактике в Российской федерации /В.И. Злобин, Д.К. Львов, A.A. Иванова // Дальневост. журн. инфекц. пат. — 2007. — № 11. — С. 109.

19. Инфекционные болезни животных: Справочник /Ю.Ф. Борисович, JI.B. Кириллов//; Под ред. Д.Ф. Осидзе. - М.: Агропромиздат, 1987. - С. 151157.

20. Козлова И. В. Методология дифференциальной экспресс-диагностики трансмиссивных клещевых инфекций /И.В. Козлова, М.М. Верхозина, М.А. Хаспатиков// Современные ситуации и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 69—70.

21. Козлова И. В. Методология дифференциальной экспресс-диагностики трансмиссивных клещевых инфекций /И.В. Козлова, М.М. Верхозина, М.А. Хаспатиков// Современные ситуации и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 69—70.

22. Козловский Е.В. Ветеринарная микробиология /Е.В. Козловский// Под ред. Профессора Е.В. Козловского и П.А. Емельяненко. - М.: Колос, 1987.-С. 226-272.

23. Колешко О.И. Микробиология./О.И. Колешко// - Мн.: Вышэйшая школа, 1977.-С. 73.

24. Коляков Я.Е. Ветеринарная микробиология /Я.Е. Коляков// - 2-е изд., доп. и перераб. - М.: Сельхозгиз, 1960. - С. 322-328.

25. Конопаткин A.A. Тропические болезни животных /A.A. Конопаткин, A.B. Степанов, Г.И. Забалуев// - М.: Агропромиздат, 1990. - С. 99-104, 160-165.

26. Коренберг Э.И. Эрлихиозы - новая для России проблема инфекционной патологии /Э.И. Коренберг// Мед. паразитол. 1999, № 4, С. 1016.

27. Коренберг Э.И. Эрлихиозы - новая для России проблема инфекционной патологии /Э.И. Коренберг// Мед. паразитол. 1999, № 4, С.10-16.

28. Костенко Т.С. Практикум по ветеринарной микробиологии и иммунологии /Т.С. Костенко, Е.И. Скаршевская, С.С. Гительсон// - М.: Агропромиздат, 1989. - С. 245-248.

29. Ливанова H.H. Разнообразие паразитарных систем с участием мелких млекопитающих и Ixodes persulcatus Shculze на Северном Урале /H.H. Ливанова, В.А. Pap, С.Г. Ливанов, Я.П. Иголкина// Сиб. эколог, журн. 2005. Т. 10. №5. С. 1079—1084.

30. Лочкарев В.А. Лечение при риккетсиозе глаз у крупного рогатого скота /В.А. Лочкарева, В.А. Дмитриев// Ветеринария. - 1990. - № 6. - С. 47.

31. Мерзлова Н.Б. «Клещевые инфекции» у детей Пермского края в эпидсезон 2006 года /Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров// Здоровье и образование в 21-м веке: материалы VII международной науч.-практ. конф. - М., 2006. - С. 341.

32. Мерзлова Н.Б. Применение доксициклина в лечении моноцитарного эрлихиоза человека и гранулоцитарного анаплазмоза человека у детей /Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров// Человек и лекарство: сб. материалов XV Рос. нац. конгр. - М., 2008. - С. 225-226.

33. Мерзлова Н.Б. Применение доксициклина в лечении моноцитарного эрлихиоза человека и гранулоцитарного анаплазмоза человека у детей /Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров// Человек и лекарство: сб. материалов XV Рос. нац. конгр. - М., 2008. - С. 225-226.

34. Мерзлова Н.Б. Распространенность и диагностика трансмиссивных инфекционных природно-очаговых заболеваний в Пермском крае / Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров// Здоровье и образование в 21-м веке: научные труды VI Международной науч.-практ конф. - М., 2005. -С. 335.

35. Мерзлова Н.Б. Распространенность и диагностика трансмиссивных инфекционных природно-очаговых заболеваний в Пермском крае / Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева, М.Н. Самаров// Здоровье и образование в 21-м веке: научные труды VI Международной науч.-практ конф. - М., 2005. -С. 335.

36. Мерзлова Н.Б. Поражение гепатобилиарной системы у детей при новых «клещевых» инфекциях в Пермском крае /Н.Б. Мерзлова, М.Н. Самаров// Актуальные проблемы абдоминальной патологии у детей:

материалы XVI Конгресса детских гастроэнтерологов России и стран СНГ. -М., 2009.-С. 263-265.

37. Мерзлова Н.Б. Поражение гепатобилиарной системы у детей при новых «клещевых» инфекциях в Пермском крае /Н.Б. Мерзлова, М.Н. Самаров// Актуальные проблемы абдоминальной патологии у детей: материалы XVI Конгресса детских гастроэнтерологов России и стран СНГ. -М., 2009.-С. 263-265.

38. Моноцитарный эрлихиоз лошадей / обзор иностранной литературы // Ветеринария. - 1988. - № 2. - С. 69-71.

39. Никитин В.Я. Роль риккетсий в заболеваемости коров послеродовым метритом /В.Я. Никитин, Л.Д. Тимченко // Ветеринария. -1994.-№ 10.-С. 44-45.

40. Орлов. Ф.М. - Малоизвестные заразные болезни животных / Ф.М. Орлов // - 2-е изд., доп. и перераб. - М.: Колос, 1973. - С. 186-206, 289-295.

41. Особенности клинического течения заболеваний, передающихся иксодовыми клещами /М.Н. Самаров и др.// Здоровье ребенка - здоровье нации: сб. науч. работ. - Киров, 2006. - С. 225-226.

42. Попонникова Г. В. Современные особенности клещевых микст-инфекций /Г.В. Попонникова, О.С. Пиневич// Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. — 2006. — № 4. — С. 39—43.

43. Попонникова Г. В. Современные особенности клещевых микст-инфекций /Г.В. Попонникова, О.С. Пиневич// Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. — 2006. — № 4. — С. 39—43.

44. Радчук, H.A. Ветеринарная микробиология и иммунология /H.A. Радчук, Г.В. Дунаев, Н.М. Колычев//. - М.: Агропромиздат, 1991. - С. 312322.

45. Pap В. А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий в паразитарных системах Западной Сибири и Урала /В .А. Pap, H.H. Сиванова, В.В. Панов// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инекциями. — Томск, 2006. — С. 110—112.

46. Pap В. А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий в паразитарных системах Западной Сибири и Урала /В.А. Pap, H.H. Сиванова, В.В. Панов// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инекциями. — Томск, 2006. — С. 110—112.

47. Pap В.А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий в паразитарных системах юга Западной Сибири и Урала /В.А. Pap, H.H. Ливанова, В.В. Панов, В.Б. Астанин, С.Г. Ливанов, О.В. Морозова // Бюлл. сиб. мед. 2006. 5(1), 116-120.

48. Pap В.А. Выявление антител к возбудителям гранулоцитарного анаплазмоза и моноцитарного эрлихиоза в крови пациентов из Новосибирской области /В.А. Pap, H.B. Фоменко, O.B. Мельникова, Н.Я. Черноусова// Бюлл. сиб. мед. 2008. №7, Прил. 1. 73-77.

49. Рудаков Н. В. Современные представления о клещевом риккетсиозе /Н.В. Рудаков, И.Е. Самойленко, Г.А. Решетникова// Журн. инфекц. пат. — 1996. — № 4. — С. 64—69.

50. Рудаков Н. В. Современные представления о клещевом риккетсиозе /Н.В. Рудаков, И.Е. Самойленко, Г.А. Решетникова// Журн. инфекц. пат. — 1996. — № 4. — С. 64—69.

51. Рудаков Н. В. Современные подходы к изучению Rickettsiales /Н.В. Рудаков, С.Н. Шпанов, И.Е. Самойленко// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006.

— С. 117—119.

52. Рудаков Н. В. Современные подходы к изучению Rickettsiales /Н.В. Рудаков, С.Н. Шпанов, И.Е. Самойленко// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006.

— С. 117—119.

53. Руководство по инфекционным болезням / Под ред. Ю. В. Лобзина//

— СПб., 2000.

54. Самаров М.Н. Трансмиссивные инфекционные природно-очаговые заболевания у детей в Пермском крае /М.Н. Самаров// Пермской краевой

детской клинической больнице 50 лет. Этапы, итоги, перспективы: юбилейная науч.-практ. конф. - Пермь, 2007. - С. 19.

55. Самаров М.Н. Новые «клещевые» инфекции - моноцитарный эрлихиоз человека и гранулоцитарный анаплазмоз человека у детей Пермского края /М.Н. Самаров, Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева// Вестн. Рос. гос. мед. ун-та (специальный выпуск). - М., 2008. - Т. 63. - №4. - С. 74.

56. Самаров М.Н. Новые «клещевые» инфекции - моноцитарный эрлихиоз человека и гранулоцитарный анаплазмоз человека у детей Пермского края /М.Н. Самаров, Н.Б. Мерзлова, H.H. Воробьева// Вестн. Рос. гос. мед. ун-та (специальный выпуск). - М., 2008. - Т. 63. - №4. - С. 74.

57. Семенов A.B. Выявление генотипической неоднородности популяции Ixodes persulcatus Shculze (Acari: Ixodidae) северо-запада России и особенности распределения клещевых патогенов — возбудителей болезни Лайма и эрлихиозов в различ-ных генотипах /A.B. Семенов, А.Н. Алексеев, Е.В. Дубинина // Мед. паразитология. 2001. Т. 3. С. 11—15.

58. Семенов A.B. Выявление генотипической неоднородности популяции Ixodes persulcatus Shculze (Acari: Ixodidae) северо-запада России и особенности распределения клещевых патогенов — возбудителей болезни Лайма и эрлихиозов в различ-ных генотипах /A.B. Семенов, А.Н. Алексеев, Е.В. Дубинина, П.М. Иенсен // Мед. паразитология. 2001. Т. 3. С. 11—15.

59. Сидельников Ю.Н. Первый случай гранулоцитарного эрлихиоза на Дальнем Востоке Российской Федерации /Ю.Н. Сидельников, О.Ю. Медянников, Л.И. Иванов, Н.И. Здановская// Клинич. медицина. 2003. Т. 81. С. 67—68.

60. Сидельников Ю.Н. Первый случай гранулоцитарного эрлихиоза на Дальнем Востоке Российской Федерации /Ю.Н. Сидельников, О.Ю. Медянников, Л.И. Иванов, Н.И. Здановская// Клинич. медицина. 2003. Т. 81. С. 67—68.

61. Смирнова Н.И. Ветеринарная микробиология: Уч. пособие для ветеринарных ВУЗов /Н.И. Смирнова//. - Мн.: Вышэйшая школа, 1979. - С. 198-200.

62. Субботин А. В. Особенности структуры клещевых заболеваний с поражением нервной системы /A.B. Субботин, В.А. Семенов. H.A. Короткевич// Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. — 2006. — № 4. — С. 121—123.

63. Субботин А. В. Особенности структуры клещевых заболеваний с поражением нервной системы /A.B. Субботин, В.А. Семенов. H.A. Короткевич// Сиб. консилиум. Мед.-фармац. журн. — 2006. — № 4. — С. 121—123.

64. Телфорд С.Р. Выявление в России природных очагов бабезиоза и гранулоцитарного эрлихиоза /С.Р. Телфорд, Э.И. Коренберг, Х.К. Гойберг// Журн. микробиологии. 2002. № 6.- С. 21—25.

65. Телфорд С.Р. Выявление в России природных очагов бабезиоза и гранулоцитарного эрлихиоза /С.Р. Телфорд, Э.И. Коренберг, Х.К. Гойберг// Журн. микробиологии. 2002. № 6.- С. 21—25.

66. Топычканова Н. Г. Выявление серологических маркеров инфекций, передаваемых клещами, у пациентов, поступивших в клиники Томска с подозрением на клещевой энцефалит в 2004 г /Н.Г. Топычканова, Н.Г. Жукова, И.Н. Кувшинова// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. —С. 136—137.

67. Тузова Р.В. Микробные и вирусные заболевания животных, опасные для человека (зоонозы) /Р.В. Тузова// - Мн.: Ураджай, 1969. - С. 247-251.

68. Фоменко В.А., Выявление антител к возбудителям гранулоцитарного анаплазмоза и моноцитарного эрлихиоза в крови пациентов из Новосибирской области /В.А. Фоменко// Бюлл. сиб. мед. 2008. №7, Прил. 1.73-77.

69. Фоменко Н.В. Молекулярно-генетический анализ инфекций, переносимых клещами, у больных Новосибирской области /Н.В. Фоменко, В.А. Pap, Е.В. Романова// Молекуляр. ме-дицина. 2005. Т. 4. С. 48—52.

70. Фоменко H.B. Молекулярно-генетический анализ инфекций, переносимых клещами, у больных Новосибирской области /Н.В. Фоменко, В.А. Pap, E.B. Романова// Молекуляр. ме-дицина. 2005. Т. 4. С. 48—52.

71. Хоулта Дж. Определитель бактерий Берджи. В 2-х т. Т.1: Пер. с англ./Под ред. Дж. Хоулта, Н. Крита, П. Снита и соавт// - М:., Мир, 1997 - 432 с.

72. Черногор Л. И. Клинико-лабораторная характеристика иксодового боррелиоза в Прибайкалье /Л.И. Черногор, Е.В. Арбатская, Г.А. Данчинова// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 145—147.

73. Шатекаури С. А. Выявление новых клинических форм клещевых инфекций в Красноярском крае /С .А. Шатекаури, И.А. Ольховский, H.A. Шакина// Современные тенденции и борьба с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 150—152.

74. Шпынов С. Н. Первое молекулярно-биологическое подтверждение клещевого риккетсиоза, вызываемого Rickettsia sibirica sensu stricto /С.Н. Шпынов, H.B. Рудаков, B.B. Гранитов// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 157—159.

75. Шпынов С.Н. Новые данные о выявлении эрлихий и анаплазм в иксодовых клещах в России и Казахстане /С.Н. Шпынов, Н.В. Рудаков, В.К. Ястребов //.- Мед. паразитология и паразитар. болезни. 2004. №. 2. С. 10—14.

76. Шутова Н. А. Изучение актуальной проблемы эрлихиозов в Томской области /H.A. Шутова, Е.М. Волкова, М.И. Кузьмиченко// Современная ситуация и перспективы борьбы с клещевыми инфекциями в XXI веке. — Томск, 2006. — С. 159—160.

77. Юров Н.П. Инфекционные болезни лошадей /Н.П. Юров//.- М.: Росагропромиздат, 1991.-С. 153-157.

78. Aguero-Rosenfeld М.Е. Laboratory aspects of tick-borne diseases: Lyme, Human Granulocytic Ehrlichiosis and Babesiosis. // Mount Sinai J Med. 2003, V. 70, No. 3. P. 197-206.

79. Alekseev A.N. 1999. Emergent qualities of the vector—multipathogen systems (Ixodes ticks—Borreliae, Ehrlichiae, tick-borne encephalitis virus) // VIII Inten. Conf. Lyme Borreliosis and other Emerging Tick-Borne Diseases. Munich, Germany, June 20-24,1999. Abstr. book. Munich. P. 79.

80. Alekseev A.N., Dubinina H.V., Schouls L. First determination of Ehrlichia infected ticks among the primary vectors of the tick-borne encephalitis and borreliosis in the RUSSIAN Baltic region. // Bull Scand Soc Parasitol. 1998, V. 8, No. 2, P. 88-91.

81. Alekseev A.N., Dubinina H.V., Van De Pol I., Schouls L.M. Identification of Ehrlichia spp. and Borrelia burgdorferi in Ixodes ticks in the Baltic regions of Russia // J. Clin. Micro-biol. 2001. V. 39. P. 2237—2342.

82. Alekseev AN, Dubinina HV, Semenov AV, Bolshakov CV. Evidence of ehrlichiosis agents found in ticks (Acari: Ixodidae) collected from migratory birds. // J Med Entomol. 2001, V. 38, No. 4, P. 471-474.

83. Amyx, H. L., D. L. Huxsoll, D. C. Zeiler, and P. K. Hildebrandt. 1971. Therapeutic and prophylactic value of tetracycline in dogs infected with the agent of Tropical Canine Pancytopenia. J. Amer. vet. med. Assoc. 159: 1428-1432.

84. Anderson B.E., Dawson J.E., Jones D.C., Wilson K.H. Ehrlichia chaffeensis, a new species associated with human ehrlichiosis. Journal of Clinical Microbiology 1991;29(12):2838-42.

85. Anderson, B., J. Dawson, K. Wilson, and S. A. Ewing. 1991. Recognition of two new species of Ehrlichia as determined by comparative sequencing of the 16S rRNA gene, abstr. 2, p. 15. 9th Sesqui-Annu. Meet. Am. Soc. Rickettsiology Rickettsial Dis., Galveston, Tex.

86. Bakken J.S., Dumler J.S. Human granulocytic ehrlichiosis // Clin. Infect. Dis. 2000. V. 31. P. 554—560.

87. Baumgarten BU, Rollinghoff M, Bogdan C. Prevalence of Borrelia burgdorferi and granulocytic and monocytic ehrlichiae in Ixodes ricinus ticks from southern Germany. // J Clin Microbiol. 1999, V. 37, No. 11, P. 3448-3451.

88. Bellah, J., R. M. Shull, and E. V. S. Selcer. 1986. Ehrlichia canis-related polyarthritis in a dog. J. Am. Vet. Med. Assoc. 189:922-923.

89. Bjoersdorff A., Bagert B., Massung R.F. et al. Isolation and characterization of two European strains of Ehrlichia phagocytophila of equine origin // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2002. V. 9. P. 341—343.

90. Blair, W. F., A. P. Blair, P. Brodkorb, F. R. Cable, and G. A. Moore. 1968. Vertebrates of the United States. McGraw Hill Book Company, N.Y.

91. Bown K.J., Begon M., Bennett M. et al. Seasonal dynamics of Anaplasma phagocytophila in a rodenttick (Ixodes trian-guliceps) system, United Kingdom // Emerg. Infect. Dis. 2003. V. 9. P. 63—70.

92. Breitschwerdt EB. The Rickettsioses; in Ettinger SJ, Feldman EC (eds): Textbook of Veterinary Internal Medicine. Diseases of the Dog and Cat. Philadelphia, WB Saunders Co, 2000, pp. 400-408.

93. Bühles, W. C., D. L. Huxsoll, and M. Ristic. 1974. Tropical canine pancytopenia: clinical, hematologic and serologic response of dogs to Ehrlichia canis infection, tetracycline therapy, and challenge inoculation. J. Infect. Dis. 130:357-367.

94. Buller R.S., Arens M., Hmiel S.P. et al. Ehrlichia ewingii, a newly recognized agent of human ehrlichiosis // N. Engl. J. Med. 1999. V. 341. P. 148— 155.

95. Burt, W. H., and R. P. Grossenheider. 1952. A Field Guide to the Mamn,nals. Houghton Muffin Company, Boston.

96. Cao W.C., Zhao Q.M., Zhang P.H. et al. Prevalence of Anaplasma phagocytophila and Borrelia burgdorferi in Ixodes persulcatus ticks from Northe Eastern China // Am. J. Trop. Med. Hyg. 2003. V. 68. P. 547—550.

97. Carrillo, J. M., and R. A. Green. 1978. A case report of canine ehrlichiosis: neutrophilic strain. J. Am. Anim. Hosp. Assoc. 14:100-104.

98. Carter S.E., Ravyn M.D., Xu Y. et. al. Molecular typing of the etiologic agent of human granulocytic ehrlichiosis // J. Clin. Microbiol. 2001. V. 39. P. 3398—3401.

99. Centers For Disease Control and Prevention. Lyme disease: epidemiology. 1999. V. 9. P. 234—239.

100. Centers for Disease Control and Prevention. Lyme disease—United States, 1996. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 1997;46:531-5. Centers for Disease Control and Prevention. Statewide surveillance for ehrlichiosis—Connecticut and New York, 1994-1997. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 1998;47:476-80.

101. Centers for Diseases Control and Prevention. Division of Viral and Rickettsial Diseases: Indirect fluorescent antibody technique for the detection of rickettsial antibodies. Atlanta: National Center for Infectious Diseases, s.d;ll, 2001.

102. Chen S.M., Dumler J.S., Bakken J.S., Walker D.H. Identifi-cation of a granulocytotropic Ehrlichia species as the etiologic agent of human disease // J. Clin. Microbiol. 1994. V. 32. P. 589—595.

103. Cowell, R. L., R. D. Tyler, K. D. Clinkenbeard, and J. H. Meinkoth. 1988. Ehrlichiosis and polyarthritis in three dogs. J. Am. Vet. Med. Assoc. 192:1093-1095.

104. Daniels TJ, Boccia TM, Varde S, Marcus J, Le J, Bucher DJ, et al. Geographic risk for Lyme disease and human granulocytic ehrlichiosis in southern New York state. Appl Environ Microbiol 1998;64:4663-9.

105. Danks, W. B. C. 1937. Rickettsia infection of the dog. Annual Report of the Veterinary Department, Kenya, pp. 64-66.

106. Dawson J.E., Anderson B.E., Fishbein D.B. et al. Isolation and characterization of an Ehrlichia sp. from a patient diag-nosed with Human ehrlichiosis // J. Clin. Microbiol. 1991. V. 29. P. 2741—2745.

107. Dawson, J. E., Y. Rikihisa, S. A. Ewing, and D. B. Fishbein. 1991. Serologic diagnosis of human ehrlichiosis using two Ehrlichia canis isolates. J. Infect. Dis. 163:564-567.

108. Demma LJ, Holman RC, McQuiston JH et al. Epidemiology of human ehrlichiosis and anaplasmosis in the United States, 2001-2002. // Am J Trop Med Hyg. 2005, V. 73, No. 2, P. 400-409.

109. Devereaux C.E. Human monocytic ehrlichiosis presenting as febrile diarrhea. Journal of Clinical Gastroenterology 1997;25(3):544-5.

110. Diseases of Domestic Animals. Oxford, New York, Seoul, Tokyo,

Pergamon Press, 1993, pp. 169-186.

111. Donatien, A., and F. Lestoquard. 1935. Existance in Algerie dume

Rickettsia du chien. Bull. Soc. Pathol. Exot. 28:418-419.

112. Dumler J.S., Barbet A.F., Bekker C.P. et al. Reorganization of genera in families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales: unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia and Ehrlichia with Neorickettsia, descriptions of six new species combinations and designation of Ehrlichia equi and 'HGE agent' as subjec-tive synonyms of Ehrlichia phagocytophilum // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2001. V. 51. P. 2145—2165.

113. Dumler JS, Barbet AF, Bekker CPJ. et al. Reorganization of genera in the families Rickettsiaceae and Anaplasmataceae in the order Rickettsiales; unification of some species of Ehrlichia with Anaplasma, Cowdria with Ehrlichia, and Ehrlichia with Neorickettsia; description of five new species combinations: and designation of Ehrlichia equi and HGE agent as subjective synonyms of Ehrlichia phagocytophila. // Int J Syst Evol Mikrobiol. 2001,V.51, P. 2145-2165.

114. Dumler JS. Anaplasma and Ehrlichia infection. // Ann. N.Y. Acad. Sci.

2005, V. 1063, P. 361-373.

115. Eng T.R., Harkess J.R., Fishbein D.B., et al. Epidemiologic, clinical, and laboratory findings of human ehrlichiosis in the United States, 1988. Journal of the American Medical Association 1990;264:251-8.

116. Ewing, S. A. 1963. Observations on leukocytic inclusion bodies from with Babesia camiis. J. Amer. vet. med. Assoc. 143: 503-506.

117. Ewing, S. A. 1963. Observations on leukocytic inclusion bodies from dogs infected with Babesia canis. J. Am. Vet. Med. Assoc. 503-506.

118. Ewing, S. A. 1964. Correspondence. J. Amer. vet. med. Assoc. 144: 4.

119. Ewing, S. A. 1969. Canine Ehrlichiosis. Adv. vet. Sci. comp. Med. 13: 331-353.

120. Ewing, S. A. 1969. Canine ehrlichiosis. Adv. Vet. Sci. Comp. Med. 13:331-353.

121. Ewing, S. A., J. C. Fox, E. M. Johnson, C. G. MacAllister, R. E. Corstvet, C. J. Baldwin, D. A. Mosier, K. M. Kocan, R. T. Tyler, and R. L. Cowell. 1988. Canine ehrlichiosis: differences between granulocytic and agranulocytic agents, p. 39. Proc. 69th Annu. Meet. Conf. Res. Workers Anim. Dis., Chicago, 111.

122. Ewing, S. A., R. G. Buckner, and B. G. Stringer. 1964. The coyote, a potential host for Babesia camlis and Ehrlichia sp. J. Parasit. 50: 704.

123. Ewing, S. A., W. R. ROBERSON, R G. BUCKNER, and C S. HAYAT. 1971. A new strain of Ehrlichia camlis. J. Amer. vet. med. Assoc. 159: 1771-1774.

124. Ewing, S. A., W. R. Robertson, R. G. Buckner, and C. S. Hayat. 1971. A new strain of Ehrlichia canis. J. Am. Vet. Med. Assoc. 159:1771-1774.

125. Galväo M.A.M., Lamounier J.A. , Bonomo E., et al. Emerging and reemerging rickettsiosis in an endemic area of Minas Gerais State, Brazil. Cadernos de Saúde Pública 2002; 18(6): 1593-7.

126. Goodman JL, Nelson C, Vitale B, Madigan JE, et al. Direct Cultivation of the Causative Agent of Human Granulocytic Ehriichiosis. N Eng J Med 1996:334:209-15.

127. Greene, C. E., and J. W. Harvey. 1990. Canine ehrlichiosis, p.405-414. In C. E. Greene (ed.), Clinical microbiology and infectious diseases of the dog and cat. The W. B. Saunders Co., Philadelphia.

128. Harrus S, Waner T, Bark H, et al. Canine Monocytic Ehrlichiosis -Recent Advances. J Clin Microbiol 1999;37:2745-2749.

129. Harrus S, Waner T, Bark H. Canine monocytic ehrlichiosis: an update. Comp Cont Edu Pract Vet 1997;19:431-447.

130. Harrus S, Waner T, Weiss DJ, et al. Kinetics of serum antiplatelet antibodies in experimental acute canine ehrlichiosis. Vet Immunol Immunopathol 1996;51:13-20.

131. Hodzic E., Fish D., Maretzki C.M. et al. Acquisition and transmission of the agent of human granulocytic ehrlichiosis by Ixodes scapularis ticks // J. Clin. Microbiol. 1998. V. 36. P. 3574—3578.

132. Holland, C. J., and M. Ristic. 1990. Development of a cell line for continuous in vitro propagation of Ehrlichia canis, abstr. no. 55, p. 89. Program

Abstr. IVth Int. Symp. Rickettsiae Rickettsial Dis. Piegiany Spa. Publishing House of the Slovak Academy of Sciences, Bratislava, Czechoslovakia.

133. Huxsoll, D. L., H. L. Amyx, I. E. Hemelt, P. K. Hildebrandt, R. M. Nims, and W. S. Gochenour Jr. 1972. Laboratory studies of Tropical Canine Pancytopenia. Exper. Parasit. 31: 53-59.

134. Huxsoll, D. L., P. K. Hildebrandt, R. M. Nims, and J. S. Walker. 1970. Tropical Canine Pancytopenia. J. Amer. vet. med. Assoc. 157: 1627-1632.

135. Huxsoll, D. L., P. K. Hildebrandt, R. M. Nims, H. L. Amyx, and J. A. Ferguson. 1970. Epizootiology of Tropical Canine Pancytopenia. J. Wildl. Dis. 6: 220-225.

136. Jacobs R.F. Human monocytic ehrlichiosis: similar to Rocky Mountain spotted fever but different. Pediatric Annals 2002;31 (3): 180-4.

137. Katavolos P, Armstrong PM, Dawson JE et al. Duration of tick attachment required for transmission of granulocytic ehrlichiosis. // J Infect Dis. 1998, V. 177, No. 5, P. 1422-1425.

138. Kim C.M., Kim M.S., Park M.S. et al. Identification of Ehr-lichia chaffeensis, Anaplasma phagocytophilum, and A. bo-vis in Haemaphysalis longicornis and Ixodes persulcatus ticks from Korea // Vector Borne Zoonotic Dis. 2003. V.3.P. 17—26.

139. Levin, M. L., des Vignes F., Fish D. Disparity in the natural cycles of Borrelia burgdorferi and the agent of human granulocytic ehrlichiosis. // Emerg. Infect. Dis., 1999, V. 5, P. 204-208.

140. Lewis, G. E., D. L. Huxsoll, M. Ristic, and A. J. Johnson. 1975. Experimentally induced infection of dogs, cats, and nonhuman primates with Ehrlichia equi, etiologic agent of equine ehrlichiosis. Am. J. Vet. Res. 36:85-88.

141. Liz J.S. Ehrlichiosis in Ixodes ricinus and wild mammals. // Int J Med Microbiol. 2002, V. 291 Suppl 33, P. 104-105.

142. Liz J.S., Anderes L., Sumner J.W. et al. PCR detection of granulocytic ehrlichiae in Ixodes ricinus ticks and wild small mammals in western Switzerland //J. Clin. Microbiol. 2000. V. 38. P. 1002—1007.

143. Liz J.S., Sumner J.W., Pfister K., Brossard M. PCR detection and serological evidence of granulocytic ehrlichial infection in roe deer (Capreolus capreolus) and chamois (Rupicapra rupicapra) // J. Clin. Microbiol. 2002. V. 40. P. 892—897.

144. Long SW, Zhang X, Zhang J et al. Evaluation of transovarial transmission and transmissibility of Ehrlichia chaffeensis (Rickettsiales: Anaplasmataceae) in Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae). // J Med Entomol. 2003, V. 40, No. 6, P. 1000-1004.

145. Lotric-Furlan S, Avsic-Zupanc T, Petrovec M et al. Clinical and serological follow-up of patients with human granulocytic ehrlichiosis in Slovenia. // Clin Diagn Lab Immunol. 2001, V. 8, No. 5, P. 899-903.

146. Luckhart S, Mullen GR, Wright JC. Etiological agent of Lyme disease, Borrelia burgdorferi, detected in ticks (Acariilxodidae) collected at a focus in Alabama. J Med Entomol 1991;28:652-7.

147. Magnarelli LA, Anderson JF, Stafford KC 3rd, Dumler JS. Antibodies to multiple tick-borne pathogens of babesiosis, ehrlichiosis, and Lyme borreliosis in white-footed mice. // J Wildl Dis. 1997, V. 33, No. 3, P. 466-473.

148. Massung RF, Slater K, Owens JH, Nicholson WI,Mather TN, Solberg VB, et al. Nested PCR assay for detection of granulocytic Ehrlichia. J Clin

Microbiol 1998;36:1090.

149. Mcintosh, A., and W. C. McDuffie. 1956. Ticks that affect domestic animals and poultry. In: The Yearbook of Agriculture, Animnal Diseases, USDA, Washington, D.C. pp. 157-166.

150. McQuiston JH, Paddock CD, Holman RC, Childs JE. The human ehrlichioses in the United States. Emerg Infect Dis 1999;5:635-42.

151. Morozova O.V., Dobrotvorsky A.K., LivanovaN.N. et al. PCR detection of Borrelia burgdorferi sensu lato, tick-borne encephalitis virus, and the human granulocytic ehrlichiosis agent in Ixodes persulcatus ticks from Western Siberia, Russia. // J. Clin. Microbiol. 2002,V.40, No. 10, P. 3802-3804.

152. Nadelman RB, Horowitz HW, Hsieh TC, Wu JM, Aguero-Rosenfeld ME, Schwartz I, et al. Simultaneous human granulocytic ehrlichiosis and Lyme borreliosis.

153. Neer TM. Ehrlichiosis. Canine monocytic and granulocytic ehrlichiosis; in Greene CE (ed.): Infectious diseases of the dog and cat. Philadelphia, WB Saunders Co, 1998, pp 139-154.

154. Neitz, W. 0., and A. D. Thomas. 1938. Rickettsiosis in the dog. J. South Africa vet. med. Assoc. 9: 166-174.

155. Nyindo, M. B. A., M. Ristic, D. L. Huxoll, and A. R. Smith. 1971. Tropical canine pancytopenia-in vitro cultivation of the causative agent, Ehrlichia canis. Am. J. Vet. Res. 32:1651- 1658.

156. Ogden N.H., Bown K., Horrocks B.K. et al. Granulocytic Ehrlichia infection in ixodid ticks and mammals in woodlands and uplands of the U.K; // Med. Vet. Entomol. 1998. V. 12. P. 423—429.

157. Pancholi P, Kolbert CP, Mitchell PD, Reed KD, Dumler JS, Bakken JS, et al. Ixodes dammini as a potential vector of human granulocytic ehrlichiosis. J Infect Dis 1995;172:1007-12.

158. Parola P., Davoust B., Raoult D. Tick- and flea-borne rickettsial emerging zoonoses // Vet. Res. 2005. V. 36. № 3. P. 469—492.

159. Persing DH, Telford SR, Rys PN, Dodge DE, White TJ, Malawista SE, et al. Detection of Borrelia burgdorferi DNA in museum specimens of Ixodes dammini ticks. Science 1990;249:1420.

160. Persing DH, Telford SR, Spielman A, Barthold SW. Detection of Borrelia burgdorferi infection in Ixodes dammini ticks with the polymerase chain reaction. J.Clin Microbiol 1990;28:566. Magnarelli LA, Stafford KC, Mather TN, Yeh MT, Horn KD, Dumler JS, et al. Hemocytic Rickettsia-like organisms in ticks: serologic reactivity with antisera to ehrlichiae and detection of DNA of agent of human granulocytic ehrlichiosis by PCR. J Clin Microbiol 1995;33:2710-4.

161. Petrovec M., Bidovec A., Sumner J.W. et al. Infection with Anaplasma phagocytophila in cervids from Slovenia: evi-dence of two genotypic lineages // Wien Klin. Wochenschr. 2002. V. 31. P. 641—647.

162. Pierce, K. R. 1971. Ehrhichia canis: A cause of pancytopenia in Texas. Southwestern Vet. 24: 263-267.

163. Pretzman, C. I., Y. Rikihisa, D. Ralph, J. C. Gordon, and S. Bech-Nielson. 1987. Enzyme-linked immunosorbent assay for Potomac horse fever disease. J. Clin. Microbiol. 25:31-36.

164. Rar V.A., Fomenko N.V., Dobrotvorsky A.K. et al. Tickborne pathogen detection, Western Siberia, Russia // Emerg. Infect. Dis. 2005. V. 11. P. 1708— 1715.

165. Ratnasamy N., Everett E.D., Roland W.E., et al. Central nervous system manifestations of human ehrlichiosis. Clinical Infectious Diseases 1996;23:314-9.

166. Ravyn M.D., Korenberg E.I., Oeding J.A. et al. Monocytic Ehrlichia in Ixodes persulcatus ticks from Perm, Russia // Lancet. 1999. V. 27. P. 722—723.

167. Ravyn M.D., Korenberg E.I., Oeding J.A. et al. Monocytic Ehrlichia in Ixodes persulcatus ticks from Perm, Russia. // Lancet. 1999,V. 353, No. 9154, P. 722-723.

168. Rikihisa Y. The tribe Ehrlichieae and ehrlichial diseases. Clin Microbiol Reviews 1991;4:286-308.

169. Rikihisa, Y. 1991. Cross-reacting antigens between Neorickett-sia helminthoeca and Ehrlichia species, shown by immunofluorescence and Western immunoblotting. J. Clin. Microbiol.

170. Ristic M, Holland CJ. Canine Ehrlichiosis; in Woldehiwet Z, Ristic M (eds): Rickettsial and Chlamydial

171. Ristic, M., D. L. Huxsoll, R. M. Weisiger, P. K. Hildebrandt, and M. B. A. Nyindo. 1972. Serologic diagnosis of tropical canine pancytopenia by indirect immunofluorescence. Infect. Immun. 6:226-231.

172. Schaffner W, Standaert SM. Editorial. Ehriichiosis - In Pursuit of an Emerging Infection. N Eng J Med 1996:334:262-3.

173. Schwartz IS, Varde S, Nadelman RB, Wormser GP, Fish D. Inhibition of efficient polymerase chain reaction amplification of Borrelia burgdorferi DNA in blood fed ticks. Am J Trop Med Hyg 1997;56:339-42.

174. Shibata S, Kawahara M, Rikihisa Y et al., New Ehrlichia species closely related to Ehrlichia chaffeensis isolated from Ixodes ovatus ticks in Japan. // J Clin Microbiol. 2000, V. 38, No. 4, P. 1331-1338.

175. Skotarczak B. Canine ehrlichiosis. // Ann Agric Environ Med. 2003, V.10, P. 137-141.

176. Smith, C. N., and F. D. Enzie. 1965. External parasites of dogs and cats. In: The Yearbook of Agriculture, Amiiinal Diseases, USDA, Washington, D.C. pp. 517-523. Received for publication June 28, 1972

177. Stafford KC 3rd, Massung RF, Magnarelli LA. et al. Infection with agents of human granulocytic ehrlichiosis, Lyme disease, and babesiosis in wild white-footed mice (Peromyscus leucopus) in Connecticut. // J Clin Microbiol. 1999, V. 37, No. 9, P. 2887-2892.

178. Sudarto, M. W., and D. H. A. Unruh. 1984. Kasus penyakit rickettsia pada anjing (canine ehrlichiosis) di Yogyakarta. Annual report on animal disease investigation in Indonesia during the period of 1982-1983, p. 38-44. Direktorat Kesehatan Hewan Direktorat Jenderal Peternakan, Departemen Pertanian, Jakarta, Indonesia.

179. Tate C.M., Mead D.G., Luttrell M.P. et al. Experimental in-fection of white-tailed deer with Anaplasma phagocytophilum, etiologic agent of human granulocytic anaplasmosis // J. Clin. Microbiol. 2005. V. 43. P. 3595—3601.

180. Telford S.R., Dawson J.E., Katavolos P. et al. Perpetuation of the agent of human granulocytic ehrlichiosis in a deer tickrodent cycle // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1996. V. 11. P. 6209—6214.

181. Varde S, Beckley J, Schwartz I. Prevalence of tickborne pathogens in Ixodes scapularis in a rural New Jersey county. Emerg Infect Dis 1998;4:97-9.

182. Walder G., Fuchs D., Sarcletti M. et al. Human granulocytic anaplasmosis in Austria: Epidemiological, clinical, and laboratory findings in five consecutive patients from Tyrol, Austria. //Int J Med Microbiol. 2006, V. 296. Suppl 1,P. 297-301.

183. Walker D.H., Dumler J.S. Emergence of ehrlichioses as human health problems. Emerging Infectious Diseases 1996;2(1): 18-29.

184. Walker D.H., Dumler J.S. Human monocytic and granulocytic ehrlichioses. Discovery and diagnosis of emerging tick-borne infections and the critical role of the pathologist. Archives of Pathology Laboratory Medicine 1997; 121 (8):785-91.

185. Walker, J. S., J. D. Rundquist, R. Taylor, B. L. Wilson, M. R. Andrews, J. Barck, A. L. Hogge, D. L. Huxoll, P. K. Hildebrandt, and R. M. Nims. 1970. Clinical and clinicopathologic findings in tropical canine pancytopenia. J. Am. Vet. Med. Assoc. 157:43-55.29:2024-2029.

186. Walpole RE, Myers RH. Probability and statistics for engineers and scientists. 2nd ed. New York: Macmillan Publishing Co., Inc.; 1978.

187. Waner T, Harrus S, Bark H, et al. Characterization of the subclinical phase of canine ehrlichiosis inexperimentally infected beagle dogs. Vet Parasitol 1997;69:307-317.

188. Wen B, Cao W, Pan H. Ehrlichiae and ehrlichial diseases in China. // AnnN Y Acad Sci. 2003, V. 990, P. 45-53.

189. Wen B., Rikihisa Y., Mott J. et al. Ehrlichia muris sp. nov., identified on the basis of 16S rRNA base sequences and serological, morphological, and biological characteristics // Int. J. Syst. Bacteriol. 1995. V. 45. P. 250—254.

190. Wen B., Rikihisa Y., Mott J., et al. Ehrlichia muris sp. nov., identified on the basis of 16S rRNA base sequences and serological, morphological, and biological characteristics. International Journal of Systematic Bacteriology 1995;45:250-4.

191. Wolfe D, Fries C, Reynolds K, Hathcock L. The epidemiology of Lyme disease in Delaware 1989-1992. Del Med J 1994; 66:603-13.