Действие фитогормонов и красного света на рост и биоэлектропотенциалы проростков кукурузы тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.12, кандидат биологических наук Фролов, Кирилл Борисович

• Фролов, Кирилл Борисович
• кандидат биологических наук
• 2005

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Фролов, Кирилл Борисович

ВВЕДЕНИЕ

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

1.1. Рост и развитие колеоптиля и мезокотиля проростков кукурузы

1.2. Гормональная регуляция роста и развития

1.3. Изменения роста, вызванные деэтиоляцией

1.4. Фитогормоны на начальных этапах роста проростков и их органов при деэтиоляции

1.5. Электрофизиологическая система регуляции роста и развития растений

1.6. Взаимосвязь электрофизиологической и гормональной систем регуляции роста и развития

2. МАТЕРИАЛ И МЕТОДИКА

2.1. Изучение анатомического строения колеоптиля и мезокотиля проростка кукурузы

2.2. Исследование действия фитогормонов на рост и биоэлектропотенциалы органов проростка кукурузы

2.3. Измерение биоэлектропотенциалов (БЭП) тканей органов проростка

2.4. Измерение роста органов проростка

2.5. Измерение прироста мезокотилей, обработанных ИУК и кинетином в темноте и при облучении красным светом

2.6. Исследование действия красного света на БЭП

3. РЕЗУЛЬТАТЫ И ОБСУЖДЕНИЕ

3.1. Анатомическое строение органов зародыша кукурузы

3.2. Динамика развития тканей колеоптиля и мезокотиля проростков кукурузы

3.3. Действие фитогормонов на рост и БЭП отрезков органов проростков кукурузы

3.3.1. Ростовые и биоэлектрические реакции у отрезков корней с апексами

3.3.2. Ростовые и биоэлектрические реакции у отрезков колеоптилей

3.3.3. Ростовые и биоэлектрические реакции у отрезков листьев

3.3.4. Ростовые и биоэлектрические реакции у отрезков мезокотилей

3.4. Действие красного света на рост проростков кукурузы

3.5. Рост и деление клеток мезокотилей проростков кукурузы в темноте и при освещении красным светом

3.6. Действие красного света на биоэлектропотенциалы тканей колеоптильного узла и примыкающей к ней ростовой зоны мезокотиля

3.7. Действие ИУК и кинетина на рост мезокотилей в темноте и облучении красным светом

ВЫВОДЫ

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Действие фитогормонов и красного света на рост и биоэлектропотенциалы проростков кукурузы»

Рост и развитие растительного организма, формирование его органов, их взаимодействие в целом растении управляется иерархией систем регуляции, в основе которой на клеточном уровне лежат генная, мембранная и регуляция активности ферментов (Полевой, 1982, 1986, 2001). В многоклеточном организме с усложнением взаимосвязей органов возрастает значение межклеточных систем регуляции - трофической (Курсанов, 1976; Мокроносов, 1983), гормональной (Кулаева, 1973; Кефели, 1974; Полевой, 1982, 1986; Гамбург, 1976; Муромцев, Агнистикова, 1984; Дерфлинг, 1985; Кефели и др., 1989; Кулаева, Кузнецов, 2004) и электрофизиологической (Леваковский, 1866; Scott, 1967; Pickard, 1973; Опритов и др., 1977 и др.). К настоящему времени интенсивно исследуются трофическая и гормональная регуляции морфогенеза и в меньшей степени - электрофизиологическая, в частности взаимоотношение гормональной и электрофизиологических систем. В определенной степени это связано с недостаточной изученностью влияния известных фитогормонов на биоэлектрогенез растений на разных этапах онтогенеза. Лучше других исследованы электрофизиологические реакции органов растений на синтезируемую в верхушках побегов и отвечающую за развитие корневой системы индоли-3-уксусную кислоту (ИУК). В ответ на её воздействие в тканях и органах индуцируется позитивная волна биоэлектропотенциала (БЭП) (на клеточном уровне -гиперполяризация мембранного потенциала). Появление этой волны сопутствует базипетальному транспорту гормона (Newman, 1963), индуцирует поляризацию клеток, способствует созданию осевой полярности у растений. Медленный (0,5-1,5 см/ч) базипетальный транспорта ауксина, его влияние на биоэлектрические потенциалы тканей и органов создает электрические градиенты как на клеточном и тканевом, так и на организменном уровнях, влияющие на транспортные и морфогенетические процессы у растений.

Значительно менее исследовано влияние на биоэлектрогенез другого важнейшего фитогормона «центральной гормональной системы» (Полевой, 2001) - цитокинина, ответственного за функционирование апекса и органов побега и вырабатывающегося в меристемах корней. Цитокинины не оказывают влияния на биоэлектрогенез и рост отрезков колеоптилей, растущих растяжением, но вызывают быструю гиперполяризацию мембранного потенциала у некоторых объектов (корни, междоузлия Nitella) (Маггё et al, 1975; Абулатыбов и др., 1979; Максимов, Медведев, 1979). О влиянии на БЭП гиббереллинов, участвующих в удлинении стеблей, функционировании листьев и меристем и других процессах, известно еще меньше. Необходимо комплексное исследование воздействия гормонов как на рост, так и на биоэлектрогенез органов. Особенно интересно такое исследование при смене морфогенетических программ в ходе прорастания семени в темноте и при выходе органов проростка на свет.

Целью настоящей работы являлось изучение взаимодействия гормональной и электрофизиологической регуляции роста органов проростков кукурузы в темноте и при облучении красным светом. В работе были поставлены следующие задачи;

1. Изучить анатомическое строение органов зародышевой оси в сухом семени и органов этиолированного проростка кукурузы от начала замачивания до 5-суточного возраста.

2. Исследовать действие фитогормонов - индолил-3-уксусной кислоты (ИУК), кинетина и гибберелловой кислоты (ГК) на рост органов и их частей этиолированных проростков кукурузы.

3. Изучить влияние этих фитогормонов на биоэлектрогенез у органов (и их частей) этиолированных проростков кукурузы.

4. В ходе деэтиоляции под действием красного света исследовать влияние фитогормонов на рост органов проростков кукурузы.

5. Проанализировать части органов проростков кукурузы в качестве модельных систем для изучения коррелятивного роста.

1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Фролов, Кирилл Борисович

выводы

150

6. Наиболее сильная биоэлектрическая реакция (волны позитивации БЭП) у всех модельных систем органов наблюдалась под действием ИУК и смеси фитогормонов. Цитокинин и ГК индуцировали постепенно увеличивающуюся со временем позитивацию БЭП в отрезках мезокотилей с частью колеоптильного узла. л

7. Деэтиоляция красным светом (660-690 нм, 34 Дж/м с) в течение 5 ч вызывала остановку роста мезокотиля и корня и усиливала (в 2 раза) рост колеоптиля и листа (на 30%) 3-суточных интактных проростков кукурузы.

8. Остановка роста мезокотиля при деэтиоляции была связана со снижением митотического индекса и скорости роста клеток в зоне делений и значительной позитивацией (на 25 мВ) тканей колеоптильного узла.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Фролов, Кирилл Борисович, 2005 год

1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

2. Абуталыбов Н.Г., Мельников П.В., Марданов А.А.

3. Индуцируемые кинетином изменения мембранного потенциала и активность ионов калия в клетках эпидермиса корня // В кн: метаболизм и механизм действия фитогормонов, Иркутск, 1979, С. 158161.

4. Андреенко, С.С., Куперман Ф. М. Физиология кукурузы, М., Моск. Ун-т, 1959.

5. Билова, Т.Е., Осмоловская Н.Г., Полевой В.В.

6. Биоэлектрические реакции колеоптилей и корней кукурузы на импульсную гипер- и гипотермию // Вестник СПбУ, 2001, Сер. 3, Вып. 1 (№3), С. 38-49.

7. Борзова И.А., Михалевская О.Б., Анатомическое строение стебля десятидневного проростка кукурузы // Вестник Московского университета. 1969. Серия VI. Биология, почвоведение. №4. С. 55-59.

8. Вахмистров Д.Б. Пространственная организация ионного транспорта в корне // Наука, 1991, 49-е Тимирязевское чтение.

9. Власов В.П., Мазин В.В. Комплексный метод определения природных ингибиторов роста. Первичный анализ незрелых семян кукурузы на активность свободных ауксинов, гиббереллинов и цитокининов с помощью биотестов // Физиол. раст. 1979. Вып. 3. С. 648-651.

10. Гамбург К.З. Биохимия ауксина и его действие на клетки растений // Новосибирск: Наука, 1976, 272 С.

11. Гунар И.И., Синюхин A.M. Распространяющиеся волны возбуждения у высших растений // Докл. АН СССР, 1962, Т. 142, №4, С. 954-956.

12. Дарвин Ч. Способность к движению у растений // Соч. М.; Л.: Изд-во АН СССР, 1941, Т.8, С. 153-517.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ152

13. Дерфлинг К. Гормоны растений // М., 1985.

14. И. Духовный А.И. Электрофизиология опыления у высшихрастений (на примере кукурузы) // Штиинца, 1973.

15. Ефремов Д.П., Каравайкр Н.Н., Кулаева, О.Н. Влияние теплового шока и картолина-2 на рост проростков ячменя и содержание в них фитогоромнов // Доклады АН, 1992, Т 323, № 2, С. 362-365.

16. Иванов В.Б. Клеточные основы роста растений // М., 1974, 223 С.

17. Каменская, К.И., Шогенов Ю.Х., Третьяков Н.П.

18. Функциональная роль градиентов потенциалов в растениях // Электрофизиологические методы в изучении функционального состояния растений. Сб. Трудов ТСХА. М., 1988. С. 3-14.

19. Кефели В.И., Власов П.В., Прусакова Л.Д., Коф Э.М., Борисова Т.А., Аскоченская Н.А., Чижова С.И., Макарова Р.В. Природные и синтетические регуляторы онтогенеза растений // Итоги науки и техники Физиология растений, т.7, Москва, 1990.

20. Колотовский Р.А. Биоэлектрические реакции высших растений // Новосибирс, изд-во Наука, Сиб. Отд., 1980.

21. Коф Э.М., Борисова Т.А., Аскоченская Н.А. Регуляторы роста природного типа и отдельные фазы онтогенеза // В: Итоги науки и техники, 1990, Физиология растений, Т. 7, Природные и синтетические регуляторы онтогенеза растений, С. 41-83.

22. Кузнецов В.В. Гормональная регуляция биогенеза хлоропластов // Тезисы докладов междунар. конф. «Физиологические и молекулярно1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ153генетические аспекты сохранения биоразнообразия», Вологда, С. 95,2005.

23. Кузнецов Е.Д., Сечняк JI.K, Киндрук Н.А, Слюсаренко O.K.

24. Роль фитохрома в растениях// М.: Агропромиздат, 1986. 288 С.

25. Кулаева О.Н. Цитокинины, их структура и фунция // Изд-во «Наука», М., 1973.

26. Кулаева О.Н. Гормональная регуляция физиологических процессов у растений на уровне синтеза РНК и белка // Тимирязевские чтения XLI, Изд-во «Наука», 1982.

27. Кулаева О.Н. Как регулируется жизнь растений // Соросовский образовательный журнал, 1995, №1., С. 21-27.

28. Кулаева О.Н., Кузнецов В.В. Новейшие достижения и перспективы в обласли изучения цитокининов // Физиология растений, 2002, Т. 49, №4, С. 626-640.

29. Кулаева О.Н., Кузнецов В.В. Новейшие достижения и перспективы изучения действия фитогормонов и их участия в сигнальных системах целого растения // Вестник РФФИ, 2004, №2 (36), С. 12-36.

30. Кулаева О.Н., Прокопцева, О.С. Новейшие достижения в изучении механизма действия фитогормонов // Биохимия, 2004, Т. 69, Вып., 3, С. 293-310.

31. Курсанов A.JI. Транспорт ассимлятов в растении // М.: Наука, 1976, 646 С.

32. Максимов Г.Б., Медведев С.С., О механизме действия кинетина на функциональную активнсоть корня // В кн: метаболизм и механизм действия фитогормонов, Иркутск, 1979, С. 162-165.

33. Мананков М.К. Физиология действия гиббереллина на рост и генеративное развитие винограда // Автореферат дис. биол. наук, Киев: ИФР АН УССР, 1981, 23 С.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ154

34. Маслоброд С.Н. Пространственно-временная организацияповерхностных биоэлектрических потенциалов растительного организма//дисс в виде науч докл на.д.б.н, Кишинев, 1998.

35. Маслоброд С.Н. Электрофизиологическая полярность растений //Штиинца, 1973.

36. Медведев С.С. Физиологические основы полярности //Санкт-Петербург, «Кольна», 1996.

37. Медведев С.С. Электрофизиология растений // Изд-во С-Петербург. ун-та, 1998.

38. Методы изучения мембран растительных клеток // учебное пособие под ред. проф. Полевого В.В., изд-во Ленинградского ун-та, 1986.

39. Мокроносов А.Т. Фотосинтетическая функция и целостность растительного организма // М.: Наука, 1983, 64 С, (42 Тимирязевское чтение).

40. Москалёва О.В. Влияние фитогормонов на митотическую активность органов проростков кукурузы // Вестник ЛГУ. 1987. Вып. 2. Сер. 3. №10. С. 118-121.

41. Москалёва О.В., Полевой В.В. Влияние фитогормонов на рост проростков кукурузы //Вестник ЛГУ, 1987.

42. Москалёва О.В., Полевой В.В. Действие фитогормонов на рост изолированных органов проростков кукурузы // Физиол. и Биохим. Культ. Раст. 1989. Т.21. №3. С. 278-286.

43. Муромцев Г.С., Агнистикова В.Н. Гиббереллины // М.: Наука, 1984, 208 с.

44. Муромцев Г.С., Агнистикова В.Н. Гормоны растений гиббереллины // М.: Наука, 1973, 270 с.

45. Опритов В.А. К вопросу о роли биоэлектрических потенциалов в передвижении веществ у растений // Биофизика. 1963. Т. 8. Вып. 2. С. 218-224.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ155

46. Опритов В.А. Распространяющееся возбуждение у высшихрастений // Успехи совр. Биологии, 1977, Т.83, С. 442-458.

47. Опритов В.А. Электрические сигналы у высших растений // Соросовский образовательный журнал, 1996, № 10, С.22-27.

48. Опритов В.А. Электричество в жизни животных и растений // Соросовский образовательный журнал, 1996, № 6, С.40-46.

49. Опритов В.А., Пятыгин С.С., Ретивин В.Г. Биоэлектрогенез у высших растений // М., 1991.

50. Опритов В.В., Журавская Э.А. Изучение роли биоэлектрических потенциалов в передвижении веществ у растений путём шунтирования // Биофизика. 1964. Т. 9. Вып. 3. С. 337-342.

51. Паламарчук И.А., Веселова Т.А. Динамика содержания веществ в прорастающей зерновке кукурузы // Вестн. Моск. Ун-та, 1971, №6, С.56-63.

52. Полевой А.В. Эндогенные фитогормоны в этиолированных проростках кукурузы в норме и при температурном стрессе // Автореферат на соискание.к.б.н., 1993.

53. Полевой А.В., Саламатова Т.С. Гормональная реакция этиолированных проростков кукурузы на кратковременное действие красного света // Вестник СПбУ, 2000, Сер 3, Вып 1, №3, С. 52-58.

54. Полевой В.В., Ошарова Л.М., Леонова Л.А. Некоторые особенности биоэлектрической реакции отрезков колеоптилей на обработку ауксином //Докл. АН СССР. 1968. Т. 181. №1. С. 250-252.

55. Полевой В.В., Ошарова Л.М., Леонова Л.А., Максимов Г.Б., Побережный Е.С. Биоэлектрическая реакция отрезков колеоптилей кукурузы на одностороннюю обработку ауксином // Физиол. Раст. 1969. Т. 16. Вып. 5. С. 854-860.

56. Полевой В.В., Бумагина К.Н., Зырянова И.М., Штальберг Р.

57. Электрофизиологические аспекты действия ауксина // В кн:1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ156

58. Метаболизм и механизм действия фитогормонов, Иркутск, 1979, С.180.185.

59. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Протонные насосы и их функциональная роль // В кн: Итоги науки и техники, физиология растений, 1980, Т. 4, С. 78-125.

60. Полевой В.В. Фитогормоны // Ленинград, изд-во ЛГУ, 1982.

61. Полевой В.В. Эволюция гормональной системы растений // Труды биологического научно-исследовательского института ЛГУ, 1985, №36, гл XIV, с. 216-229.

62. Полевой В.В. Роль ауксина в системах регуляции у растений // Лениград: Наука, 1986, 80 С (44 Тимирязевское чтение).

63. Полевой В.В., Танкелюн О.В., Шарова Е.И. О роли ЬГ-помпы в действии ИУК на биопотенциал и рост отрезков колеоптилей кукурузы // Физиол. раст. 1989. Т. 36. №5. С. 998-1002.

64. Полевой В.В. Физиология растений // М.: Высшая школа. 1989, 464 с.

65. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Физиология роста и развития растений // Ленинград, изд-во ЛГУ, 1991.

66. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Биоэлектропотенциалы проростков кукурузы: градиенты и осцилляции // Вестн. С-Петербург. Ун-та, Сер. 3, 1997, Вып. 3 (№17), С. 95-99.

67. Полевой В.В., Шергина Н.Ф., Саламатова Т.С. Влияние красного света на поверхностный биоэлектропотенциал отрезков этиолированных проростков кукурузы // Вестн. С-Петербург. Ун-та, Сер. 3, 1997, Вып. 4 (№22), С. 100-104.

68. Полевой В.В. Механизмы действия ауксина и его роль в системах регуляции и интеграции у растений // Вестн. С-Петербург. Ун-та, Сер. 3, 1998, Вып. 2 (№10), С. 34-39.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ157

69. Полевой В.В., Саламатова Т.С. Топография поверхностныхбиоэлектропотенциалов у растений // Вестн. С-Петербург. Ун-та, Сер. 3, 2000, Вып. 4 (№27), С. 39-44.

70. Полевой В.В., Саламатова Т.С., Шишова М.Ф. Импульсный характер действия ауксина // Тезисы докл VI межд конф «Регуляторы роста и развития растений в биотехнологиях», 2001, С.

71. Полевой В.В., Тараховская Е.Р. Индукция электрофизиологических градиентов в осевых органах растений // Докл АН, 2001, Т. 377, №2, С. 270-272.

72. Полевой В.В., Саламатова Т.С., Лутова Л.А., Чиркова Т.В., Барашкова Э.А., Кожушко Н.А., Синельникова В.Н., Косырева

73. И.А. Практикум по росту и устойчивости // Учебное пособие под ред. д.б.н., проф. В.В. Полевого и д.б.н, проф. Т.В.Чирковой, изд-во СПбГУ, 2001.

74. Полевой В.В., Билова Т.Е., Шевцов Ю.И.

75. Электроосмотические явления в растительных тканях // Изв. АН, Серия биологическая, 2003, №2, С. 169-175.

76. Полевой В.В., Тараховская Е.Р., Маслов Ю.И., Полевой А.В.

77. Роль ауксина в индукции полярности у зигот Fucus vesiculosus L. // Онтогенез, 2003, Т.34, №6, С. 432-437.

78. Полевой В.В., Шерешков В.И. Биоэлектрические реакции листьев кукурузы при действии стрессовых факторов разной природы // Вестник СПбУ, Сер.З, Вып. 3 (№19), С. 105-108.

79. Пятыгин С.С. Электрогенез клеток растений в условиях стресса // Успехи современной биологии, 2003, т. 123, №6, с. 552-562.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ158

80. Романов Г.А. Рецепторы фитогормонов // Физиология растений,2002, Т. 49, №4, С. 615-625.

81. Рыбин В.А. Цитологический метод в селекции плодовых // М., изд-во «Колос», 1967.

82. Рыбин И.А. (отв. ред.) Светозависимая биоэлектрическая активность листьев растений // Свердловск. 1977.

83. Рыбин И.А. Электрофолиография // Екатеринбург, Изд-во Уральского университета, 1992.

84. Рязанская К.В. Н.Ф. Леваковский и его роль в изучении влияния внешней среды на растения // Труды ин-та истории естественных наук и техники АН СССР, Москва, 1957, Т. 14, Вып. 2, С. 429-457.

85. Садыков И.М. Биологические особенности прорастания семени кукурузы // Тр. Азерб НИИ земледелия, 12, 1962, С. 147-153.

86. Сакс Ю. Руководство к опытной физиологии растений. // С-Петербург, 1867.

87. Саламатова Т.С. Влияние красного света на содержание гиббереллинов в проростках кукурузы при деэтиоляции // Вестник Санкт-Петербургсного ун-та, 1994, Сер. 3, Вып. 4, № 24, С. 97-101.

88. Саламатова Т.С. Физиология растительной клетки // Изд-во Ленинградского университета, 1983.

89. Саламатова Т.С., Гуревич Л.С., Беккер A.M., Петров К.А.,

90. Содержание индолиуксусной кислоты в тканях колеоптилей кукурузы // Вест. Ленингр. Ун-та, 1982, №3, С. 112-115.

91. Сасс Дж.Е. Морфология вегетативных органов. В кн : Кукуруза и её улучшение., Изд. Иностранной литературы, М, 1957.

92. Скулачев В.П. Трансформация энергии в биомембранах // М.: Наука, 1972.

93. Соколовская Т.Б. Природа органов зародыша злаков // Автореферат дисс. на соиск. уч степени к.б.н., Л., 1968.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ159

94. Танкелюн О.В., Полевой В.В., Распространяющиесябиоэлектрические потенциалы у этиолированных проростков кукурузы // Вестн. С-Петербург. Ун-та, Сер. 3, 1994, Вып. 4 (№24), С. 102-108.

95. Чайлахян М.Х., Хлопенкова Л.Н., Хаджакян Х.К. О передвижении гиббереллинов и влиянии их на рост побегов и утолщение стебля в целых растениях // Доклады АН СССР, 1974, Т. 215, №2, С. 484-487.

96. Шарова Е.И., Прияткин С.С., Полевой В.В. Действие ингибиторов синтеза РНК и белков на индуцируемый ауксином рост отрезков колеоптилей кукурузы // Биол. Науки, 1983, № 1, С. 79-84.

97. Шишова М.Ф. Мембранный механизм действия ауксина на растительные клетки // Автореферат на соискание ученой степени д.б.н., Москва, 1999.

98. Шишова М.Ф., Инге-Вечтомова Н.И., Выхвалов К.А., Рудашевская Е.Л., Полевой В.В. Ауксин-зависимый транспорт К+ и Са2+ через мембрану везикул плазмалеммы клеток колеоптилей // Физиол. Раст., 1998, Т. 45, № 1, С. 79-85,

99. Шишова М.Ф., Инге-Вечтомова Н.И., Рудашевская Е.Л., Полевой В.В. Действие ауксина на транспорт катионов через мембрану везикул плазмалеммы клеток колеоптилей кукурузы // Докл. РАН, 1997, Т. 356, №5, С. 700-703.

100. Шишова М.Ф., Линдберг С., Полевой В.В. Активация ауксином транспорта Са через плазмалемму растительных клеток // Физиол. Раст., 1999, Т. 46, № 5, С. 718-727.

101. Шмальгаузен И.И. Организм как целое в индивидуальном и историческом развитии // М.: Наука, 1982.

102. Эсау К. Анатомия растений // М. 1969, 585 С.

103. Adam Е., Kozma-Bognar L., Dallmann G., Nagy F. Transcription of tobacco phytochrome-A genes initiates at multiple start sites and requires1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ160multiple cis-acting regulatory elements // Plant Mol Biol, 1995, № 29, P.983.993.

104. Ahmad M., Cashmore A.R. The blue-light receptor cryptochrome 1 shows functional dependence on phytochrome A or phytochrome В in Arabidopsis thaliana II Plant J., 1997, №11, P. 421-427.

105. Ahmad M., Cashmore A.R. The pef mutants of Arabidopsis thaliana define lesions early in the phytochrome signaling pathway. // The Plant Journal, 1996, № 10, P. 1103-1110.

106. Ang L.H., Chattopadhyay S., Wei N., Oyama Т., Okada K., Batschauer A., Deng X.W. Molecular interaction between COP1 and HY5 defines a regulatory switch for light control of Arabidopsis development // Mol. Cell., 1998, № 1, p. 213-222.

107. Avery G.S. Comparative anatomy and morphology of embryos and seedlings of maize, oats and wheat. // Bot. Gaz. 1930. Vol. №. 1.89. P. 1-39.

108. Barker-Bridgers M., Rybnicky D.M., Cohen J.D., Jones A.M. Red-light-regulated growth changes in abundance of indoleacetic acid in the maize {Zea mays L.) mesocotyl // Planta, 1997, V. 204, P. 207-211.

109. Basu S., Sun H., Brian L., Quatrano R.L., Muday G.K. Early embryo development in Fucus distichus is auxin sensitive // Plant Physiol., 2002, V. 130, P. 292-303

110. Batschauer A. Photoreceptors of higher plants // Planta 1998, V. 206, № 4, P. 479-492.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ161

111. Battacharya R.N., Basu P.S. Dependence of kinetin-inducedelongation of wheat coleoptiles on IAA metabolism // Biochem. und Physiol. Pflanz. 1986. V. 4. P.269-276.

112. Bhatla S.C, Kapoor S., Khurana J.P. Involvement of calcium in auxin-induced cell differentiation in the protonema of the wild strain and auxin mutants of the moss Funaria hydrometrica II J. Plant Physiol. 1996. V. 147. №5. P. 547-552.

113. Bleiss W. Time course of phytohrome-mediated changes in growth gradients on coleoptiles oiTriticum aestivum L. // Planta. 1994. V. 192. № 3. P. 340-346.

114. Botto J.F., Sanchez R.A., Casal J.J. Phytochrome A mediates the promotion of seed germination by very low fluences of light and shade light in Arabidopsis И Plant Physiol., 1996, № 110, P. 439-444.

115. Bowler C., Chua N-H. Emerging themes of plant signal transduction //The Plant Cell, 1994, №6, P. 1529-1541.

116. Bowler C., Newhaus G., Yamagata H., Chua N.-H., Cyclic GMP and calcium mediate phytochrome phototransduction // Cell, 1994 № 77, P., 73-81.

117. Boylan M., Douglas N., Quail P., Dominant negative suppression of Arabidopsis photoresponses by mutant phytochrome A sequences identities spatially discreate domains in photoreceptor // The Plant Cell, 1994, №6, P.449-460.

118. Brenner W.G., Romanov G.A., Kollmer I., Biirkle H., Schmulling

119. Briggs W.R., Olney M.A. Photoreceptors in plant photomorphogenesis to date. Five phytochrome, two cryptochromes, one phototropin, and one superchrome // Plant Physiol., 2001, V. 125., P. 85-88.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ162

120. ИЗ. Briggs W.R., Rice H.V. Phytochrome: chemical and physicalproperties and mechanism of action. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol.

121. Biol., 1972, V. 23, P. 293-334.

122. Burgess J. An introduction to plant cell development // Cambridge University press, 1985.

123. Carabelli M., Morelli G., Whitelam G.C, Ruberti I. Twilight-zone and canopy shade induction of the Athb-2 homeobox gene in green plants // Proceeding of the National academy of Science, USA, 1996, №93, P. 35303535.

124. Casal J.J., Clough R.H., Vierstra R.D. High-irradiance responses induced by far-red light in grass seedlings of the wild type or overexpressing phytochrome A // Planta, 1995, № 200, P. 132-137.

125. Casal J.J., Sanchez R.A., Botto J.F. Modes of action of phytochromes // J. of Experimental Botany, 1998, V. 49, №319, p. 127-138.

126. Casal J.J., Sanchez R.A., Yanovsky M.J. The function of the phytochrome A // Plant Cell and Environment, 1997, № 20, P. 813-819.

127. Causton D.R., Mer C.L. Analytical studies of the growth of the etiolated seedlings of Avena sativa L. I. Meristematic activity in the mesocotyl with special reference to the effect of carbon dioxide // New Phytol. 1966. V. 65. № 1. P. 87-99.

128. Chamovitz D.A., Wei N., Osterlund M.T., von Arnim A.G., Staub

129. J.M., Matsui M., Deng X.W. The COP9 complex, a novel multisubunit nuclear regulator involved in light control of a plant developmental switch // Cell, 1996, №86, P. 115-121.

130. Chen Y.-A., Shin J.-W., Liu Z.-H. Effect of light on peroxidase and lignin synthesis in mungbean hypocotyls // PI. Phys and Biochem., 2002, V. 40, № 1,P. 33-39.

131. Cho H.T., Hong Y.N. Effect of calcium channel blockers on the IAA-induced cell elongation of sunflower hypocotyl segments // J. Plant Physiol., 1995. V. 149. № 3-4. P. 377-383.

132. Cho H.T., Hong Y.N. Effect of synthesis and activity of the plasma membrane H+-ATPase of sunflower hypocotyls, in relation to IAA-induced cell elongation and H+ excretion // J. Plant Physiol., 1995, V. 145, № 5-6, P. 717-725.

133. Chory J., Cook R.K., Dixon R., Elich Т., Li H.M., Lopez E., Mochizuki N., Nagpal P., Pepper A., Poole D., Reed J. Signal-transduction pathways controlling light-regulated development in Arabidopsis // Phil. Trans. R. Soc. Lond. 1995, 350, P. 59-65.

134. Chory J., Peto C., Feinbaum R., Pratt L., Ausubel F. Arabidopsis thaliana mutant that develops as light-grown plant in absence of light // Cell, 1989, №58, P. 991-999.

135. Chory, J. A genetic model for light-regulated seedling development in Arabidopsis II Development, 1992, №115, P. 337-354.

136. Clack Т., Mathews S., Sharrock R.A., The phytochrome apoprotein family in Arabidopsis is encoded by five genes: the sequences and expression of PHYD and PHYE // Plant Mol. Biol. 1994, V. 25, P. 413-427.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ164

137. Cleland R.E., Prins Н.В.А., Harper J.R. Higinbotham N. Rapidhormone-induced hyperpolarization of the oat coleoptile transmembrane potential // Plant Physiol., 1977, V. 59, №3, P. 395-397.

138. Colon-Carmona A., Chen D.L., Yeh K.-C., Abel S. Aux/IAA proteins are phosphorylated by phytochrome in vitro // Plant Physiol., 2000, V. 124, P. 1728-1738.

139. Cooke R.I., Saunders P.F., Kendrick R.F. Red light induced production of gibbellin-like substances in homogenates of etiolated wheat leaves and in suspensions of intact etioplasts // Planta, 1975, V. 124, № 3, P. 319-328.

140. De Greef J.A., Frederico H. Photomorphogenesis and hormones // Encycl. Plant Physiol. New Ser., 1983, V. 16A, P. 401-427.

141. Desrosiers M.F. Cellular responses to endogeneous electrochemical gradients in morphological development // Advances in Space Research, 1996, V. 17, №6-7, P. 27-33.

142. Devlin P.F., Halliday K.J., Harberd N.P., Whitelam G.C. Therosette habit of Arabidopsis thaliana is dependent upon phytochrome action: novel phytochromes control internode elongation and flowering time // The Plant Journal, 1996, № 10, P. 1127-1134.

143. Edgerton M.D., Jones A.M. Localization of protein-protein interactions between subunits of phytochrome. // Plant Cell, 1992, №4, P. 161-171.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ165

144. Edgerton M.D., Jones A.M. Subunit interactions in the carboxyterminal domain of phytochrome. // Biochemistry, 1993, № 32, P. 82398245.

145. Felle H., Peters W., Palme K. The electrical response of maize to auxin //Biochem. Biophys. Acta. 1991. V. 1064. P. 199-204.

146. Fellner M., Horton L.A., Cocke A.E., Stephens N.R., Ford E.D. Van Volkenburg E. Light interacts with auxin during leaf elongation and leaf angle development in young corn aeedlings // Planta, 2003, V. 216, №3, P 366-376.

147. Fisher C., Newhaus G. Influence of auxin on the establishment of bilateral symmetry in monocots // Plant J., 1996, №9, P. 659-669.

148. Friml J., Vieten A., Sauer M., Weijers D., Schwarz H., Hamann Т., Offringa R., Jurgens G. Efflux-dependent auxin gradients establish the apical-basal axis of Arabidopsis //Nature, 2003, V. 426, №6963, P.147-153.

149. Fromm J., Fei H. Electrical signaling and gas exchenge in maize plants of drying soil // Plant Science, 1998, № 132, P. 203-213.

150. Furuya M. Phytochromes: their molecular species, gene families, and functions. // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1993, V. 44. P. 617645.

151. Furuya M., Schafer E. Photoperception and signalling of induction reactions by different phytochromes // Trends Plant Sci, 1996, 1, P. 301-307.

152. Goodvin D.C. On the inhibition of the first internode of Avena by light//Am. J.Bot. 1941. V. 28. №4. P. 325-332.

153. Goring C.H., Polevoi V., Stalberg R., Stumpe G. Depolarisation of transmembrane potential of corn and wheat coleoptiles under reduced water1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ166potential and after IAA application // Plant Cell Physiol. 1979. V. 20. P. 659656.

154. Haga K., lino M. Auxin-growth relationships in maize coleoptiles and pea internodes and control by auxin of the tissue sensitivity to auxin // Plant Physiol., 1998, V. 117, P. 1473-1486.

155. Hager A. Role of the plasma membrane H+-ATPase in auxin-induced elongation growth: historical and new aspects // J. Plant Res., 2003, V. 116, № 6, P. 483-505.

156. Hager A., Gebus G., Edel H.-G., Stransky H., Serrano R. Auxin induces exocytosis and the rapid synthesis of a high-turnover pool of plasmamembrane H^ATPase // Planta. 1991. V. 185. № 4. P. 527-537.

157. Halliday K.J., Thomas В., Whitelam G.C. Expression of heterologous phytochromes А, В or С in transgenic tobacco plants alters vegetative development and flowering time // Plant J., 1997, №12, P. 10791090.

158. Hardtke C.S., Deng X.W. The cell biology of the COP/DET/FUS proteins. Regulating proteolisis in photomorphogenesis and beyond? // Plant Physiol., 2000, V. 124, P. 1548-1557.

159. Harter K., Kircher S., Frohnmeyer H., Krenz M., Nagy F., Schafer E. Light-regulated modification and nuclear translocation of cytosolic G-box binding factors in parsley // Plant Cell, 1994, №6, P. 545559

160. Hartig K., Beck E. Endogenous cytokinin oscillations control cell cycle progression of tobacco BY-2 cells // Plant Biol., 2005, №. 7, P. 33-40.

161. Hauser B.A., Cordonnier-Pratt M.M., Daniel-Vedele F., Pratt L.H. The phytochrome gene family in tomato includes a novel subfamily // Plant Molecular Biology, 1995, № 29, P. 1143-1155.

162. Heim В., Schafer E. The effect of red and far red light in the high irradiance reaction of phytochrome (hypocotyl growth in dark-grown Sinapis albs L.) // Plant, Cell and Environment, 1984, №7, P. 39-44.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ167

163. Herde О., Cortes Н.Р., Wasternack С., Willmitzer L., Fisahn J.

164. Electrical signaling and pin2 gene expression on different abiotic stimuli depend on a distinct threshold level of endogenous abscisic acid in several abscisic acid-deficient tomato mutants // Plant Physiol., 1999, V. 119, P. 213-218.

165. Inouhe M., Inada G., Thomas B.R., Nevins D.J. Cell wall autolytic activities and distribution of cell wall glucanases in Zea Mays L. seedlings // Int. J. Biol. Macromol, 2000, V. 27, Is. 2, P. 151-156.

166. Irving H.R., Dyson G., McConchie R., Parish R.W., Gehring C.A. Effects of exogenously applied jasmonates on growth and intracellular pH in maize coleoptile segments // J. Plant Growth Regul., 1999, V. 18, P. 93-100.

167. Jackson M.B. Long-distance signalling from roots to shoots assessed: the flooding story // J. of Exp. Botany, 2002, V. 53, №367, P. 175-181.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ168

168. Jaffe L.F. Electrophoresis along cell membranes // Nature. London.1977. V. 265. P. 600-602.

169. Jaffe L.F., Nuccitelli K. Electrical controls of development // Annu. Rev. Biophys. Bioenerg. 1977. V. 27. P. 159-179.

170. Jaffe L.F. Localization in the developing Fucus eggs and the general role of localizing currents // Adv. Morphol., 1968, V. 7, P. 295-328.

171. Jensen P.J., Hangarter R.P., Estelle M. Auxin transport is required for hypocotyl elongation in light-growth but not dark-grown Arabidopsis // Plant Physiol, 1998, V. 116, P. 455-462.

172. Johnson C.B., Tasker R. A scheme to account quantitatievely for the action of phytochrome in etiolated and light-grown plants // Plant, Cell and Environment, 1979, №2, P. 259-265.

173. Jones A.M., Edgerton M.D., The anatomy of the phytochrome, a unique photoreceptor in plants // Semin. Cell Biol. 1994, №5, P. 295-302.

174. Jones R.L., Phillips J.D. Organs of gibberellin synthesis in light-grown sunflower plants // Plant Physiol., 1966, V. 41, №8, P. 1381-1386.

175. Kakimoto Т., CKII, a histidine kinase homolog implicated in cytokinin signal transduction // Science, 1996, № 274, P. 982-985.

176. Karcz W., Burdach Z. The effects of electric field on the growth of intact seedlings and coleoptile segments of Zea mays L. // Biologia plantarum, 1995, V. 37,№ 3, P. 391-397.

177. Kasamo K. Regulation of plasma membrane tT-ATPase activity by the membrane environment // J Plant Res., 2003, V. 116, №6, P. 517-523.

178. Kaufman L.S., Briggs W.R., Thompson W.F. Phytochrome control of specific mRNA levels in developing pea buds. The presence of both very low fluence responses and low fluence responses // Plant Physiology, 1985, №78, P. 388-393.

179. Kaufman L.S., Thompson W.F., Briggs W.R. Different red light requirements for phytochrome-induced accumulation of cab RNA and rbcS RNA//Science, 1984, №226, P. 1447-1449.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ169

180. Keller С.Р., Van Volkenburgh E. The electrical response of Avenacoleoptile cortex to auxins evidence in vivo for activation of Cl-conductance // Planta. 1996. V. 198. № 3. P. 404-412.

181. Kinraid T. Ion fluxes considered in terms of membrane-surface electrical potentials // Austr. J. of Plant Physiol., 2001, V.28, №7, P. 577590.

182. Kircher S., Wellmer F., Nick P., Rtigner A., Schafer E., Harter K.

183. Nuclear import of the parsley bZIP transcription factor CPRF2 is regulated by phytochrome photoreceptors // L. Cell. Biol., 1999b, № 144, P. 201-211.

184. Koorneef M., Rolff E., Spruit C.J. Genetic control of light-inhibited hypocotyl elongation in Arabidopsis thaliana II Z. Pflanzenphysiol., 1980, №100, P. 147-160.

185. Kopcewicz J., Madela K. Phytochrome-controlled level of growth substances in etiolated oat seedlings // Acta Soc. Bot. Polon., 1992, V, 61, P. 381-388.

186. Koshiba Т., Kamiya Y., lino M. Biosynthesis of indole-3-acetic acid from 1-tryptophan in coleoptile tips of maze (Zea mays L.) // Plant & Cell Physiol. 1995. V. 36. № 8. P. 1503-1510.

187. Kraepiel Y., Agnes C., Thiery L., Maldiney R., Delarue M. Thegrowth of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.) hypocotyls in the light and in darkness differentially involves auxin // PI Science, 2001, V. 161, Is. 6, P. 1067-1074.

188. KramI M Light direction and polarization // in: Kendrick R.E., Kronenberg G.M.H. (eds), Photomorphogenesis in Plants. 2nd edn. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, 1994, P. 417-443.

189. Kunkel Т., Neuhaus G., Batschauer A., Chua N.H., Schafer E. Functional analysis of yeast-derived phytochrome A and В phycocyanobilin adducts. // Plant J. № 10, P. 626-636.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ170

190. Kunkel Т., Tomizava К., Kern R., Furuya M., Chua N.H., Schafer

191. E. In vitro formation of a photoreversible adduct of phycocyanobilin and tobacco apophytochrome B. // Eur. J. Biochem., 1993, № 215, P. 587-594.

192. Lagaris J.C, LagarisD.M. Self-assembly of syntetic phytochrome holoprotein in vitro. // Proc. Natl. Acad Sci USA. 1989, V. 86, P. 5778-5780.

193. Leblan C.N., Perrot-Rechenmann C., Barbier-Brigoo M. The auxin-binding protein NT-Erabpl alone activates an auxin-like transduction pathway // FEBS Lett., 1999, V. 449, P. 57-60.л i

194. Leshem B. Luric S. Ca antagonists affects root regeneration in cultured melon cotyledons // J. Plant Physiol. 1995. V. 146. № 3. P. 343-347.

195. Lino В., Baizabal-Aguirre V. M., Gonzalez de la Vara L.E. The plasma-membrane IT^ATPase from beet root is inhibited by a calcium-dependent phosphorylation // Planta, 1998, V. 204, №3, P.352-359.

196. Liu P.B.W., Loy J.B. Action of gibberellic acid on cell proliferation in the subapical shoot meristem of watermelon seedlings // Amer. J. Bot., 1976, V. 63, №5, P. 700-704.

197. Liu P.B.W., Loy J.B. Action of gibberellic acid on cell proliferation in the subapical shoot meristem of watermelon seedlings // Amer. J. Bot., 1976, V. 63, №5, P. 700-704.

198. Liu Z.H., Liu H.Y., Wang H.Y. Effect of light on endogenous indolile-3-acetic acid, peroxidase and indolile-3-acetic acid oxidase in Soybean hypocotyls // Bot. Bull of Acad Sinica. 1996. V. 37. № 2. P. 113119.

199. Malone M. Kinetics of wound-induced hydraulic signals and variation potentials in wheat seedlings // Planta, 1992, V. 187, №4.

200. Marre E., Lado P., Rasi-Caldogno F., Colombo, Cocucci M., de Michelis M.I. Regulation of proton extrusion by plant hormones and cell elongation//Physiol. Veg., 1975, V. 13, №4, P. 797-811.

201. Matsuoka H., Sotoyama H., Saito M., Oh K.-B., Horikiri S. Effects of pulsing electric signal on the cross membrane potential and the cell1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ171division potentiality of a single cell of tobacco // Bioelectrochemistry and

202. Bioenergetics, 1999, №49, P. 65-72.

203. Mazzella M.A., Alconada Magliano T.M., Casal J.J. Duel effect of phytochrome A on hypocotyl growth under continuous red light // Plant, Cell and Environment, 1997, №20, P. 261-268.

204. McCurdy D.W., Pratt L.H. Immunogold electron microscopy of phytochrome in Avena: Identification of intracellular site responsible for phytochrome sequestering and enhanced pellet ability // J. Cell. Biol., 1986, №103, P. 2541-2550.

205. Мег C. L., Causton D. R. Analytical studies of the growth of the etiolated seedling of Avena saliva II. The effects of growth-modifying factors on cell division and extension. // New Phytol. 1967. Vol. 66. №. 4. P. 665681.

206. Mosinger E., Batschauer A., Vierstra R., Apel K., Schafer E., Briggs W.R. Phytochrome regulation of greening in barley. Effects on mRNA abundance and on transcriptional activity of isolated nuclei // Plant Physiology, 1988, №86, P. 706-710.

207. Murphy J.T., Lagarias J.C. Purification and characterization of recombinant affinity peptide-tagged oat phytochrome A // Photochem. Photobiol., 1997, № 65, P. 750-758.

208. Nagatami A., Reed J.W., Chory J. Isolation and initial characterization of Arabidopsis mutants that are deficient in phytochrome A // Plant Physiol., 1993, № 102, P. 269-267.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ172

209. Nagatani A., Chory J., Furuya M. Phytochrome В is not detectablein the hy3 mutant of Arabidopsis, which is deficient in responding to end-of-day far red light treatment // Plant Cell Physiol., 1991, №32, P. 1119-1122.

210. Nagy F., Schafer E. Nuclear and cytosolic events of light-induced, phytochrome-regulated signaling in higher plants // The EMBO journal, 2000, V. 19, №2, P. 157-163.

211. Nam M.H., Oh S.-E., Kang B.G. Enhancement of polar auxin transport by cycloheximide in etiolated pea seedlings // Plant Science, 1999, 142, P. 173-181.

212. Naren A., Prasad T.G., Sashidhar V.R., Kumar M.U. Involvement of calcium in brassinolide and auxin-induced cell elongation // Current Science. 1995. V. 69. № 9. P. 777-780.

213. Nelson T. Polarity, vascularisation and auxin // Trends in plant science, 1998, V. 3, №7, P. 245-246

214. Newman I.A. Electrical potential and auxin translocaion in Avena // Austr. J. Biol. Sci. 1963. V. 16. № 3. P. 629-646.

215. Nuccitelli R. Physiological electric fields can influence cell motility, growth, and polarity // Advances in Cell Biology, 1988, V. 2, P. 213-233.

216. Nuccitelli R. Transcellular ion currents: signal and effectors of cell polarity // Mod. Cell Biol., 1983, V. 2, P. 451-481.

217. Osterlund M.T., Hardtke C.S., Wei N., Deng X.W. Targeted destabilization of HY5 during light-regulated development of Arabidopsis II Nature, 2000a, №405, P. 462-466.

218. Oyama Т., Shimura Y., Okada K. The Arabidopsis HY5 gene encodes a bZIP protein that regulates stimulus-induced development of root and hypocotyl // Genes Dev., 1997, №11, P. 2983-2995.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ173

219. Parks В.М., Quail Р.Н. hy8, a new class of Arabidopsis longhypocotyl mutants deficient in functional phytochrome A // Plant Cell, 1993, № 5, P. 39-48,

220. Parks B.M., Quail P.H. Phytochrome-deficient hyl and hy2 long hypocotyl mutants of Arabidopsis are defective in phytochrome chromophore biosyntesis // PI. Cell, 1991, №3, P. 1177-1186.

221. Passioura J.B. Root signals control leaf expantion in wheat seedlings growing in drying soil // Austr. J. Plant Physiol., 1988, №15, P. 687-693.

222. Pengelly W.L., Hall P.I., Schulze A., Bandurski R.S. Disribution of free and ester indole-3-acetic acid in the cortex and stele of Zea mays mesocotyl//Plant Physiol. 1982. V. 69.1 6. P. 1304-1307.

223. Pengelly W.L., Hall P.I., Schulze A., Bandurski R.S. Disribution of free and ester indole-3-acetic acid in the cortex and stele of Zea mays mesocotyl // Plant Physiol. 1982. V. 69. № 6. P. 1304-1307.

224. Pepper A., Delaney Т., Washburn Т., Poole D., Chory J. DET1, a negativeregulator of light-mediated development and gene expression in Arabidopsis, encodes a novel nuclear-localized protein // Cell, 1994, №78, P. 109-116.

225. Peters W.S., Tomos A.D. The mechanic state of "inner tissue" in the growing zone of suflower hypocotyls and the regulation of its growth rate following excision // PI Physiol., 2000, V. 123, P. 605-612.

226. Pickard B.G. Action potentials in higher plants // Bot. Rev., 1973, V. 39, P. 172-201.

227. Polevoi V.V., Salamatova T.S. Auxin and plant behaviour // Biologija, 1997, №3, P. 47-50.

228. Poli D.B., Jacobs M., Cooke T. Auxin regulation of axial growth in bryophyte sporophytes: its potential significance for the evolution of early land plants // Am. J. Bot., 2003, V. 90, №10, P. 1405-1415.

229. Pospisilova J., Synkova H., Rulcova J. Cytokinins and water stress // Biologia plantarum, 2000, V. 43, №3, P. 321-328.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ174

230. Pratt L.H. Distribution and localization of phytochrome within theplant // In: Kendrick R.E., Kronenberg G.M.H. (eds), Photomorphogenesis in Plants. 2nd edn. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, The Netherlands, 1994, P. 163-185.

231. Qin M., Kuhn R., Moran S., Quial P.H. Overexpressed phytochrome С but a distinctive capacity to enhance primary leaf expansion. //Plant J., 1997, №12, P. 1163-1172.

232. Quail P.H., Boylan M.T., Parks B.M., Short T.W., Xu Y., Wagner

233. D. Phytochromes: photosensory perception and signal transduction // Science, 1995, № 268, P. 675-680.

234. Quial P.H. Phytochromes genes and their expression. In: Kendrick R.E., Kronenberg G.H.M. (eds) Photomorphogenesis in plants, 2nd edn. Kluwer Dordrecht, 1994, P. 71-104.

235. Railton I.D., Wareing P.F Effects of daylength on endogenous gibberellins in Solanum andigena III. Gibberellin production by the leaves // Physiol. Plant., 1973, V. 29, № 3, P. 430-433.

236. Rathore K.S., Robinson K.R. Ionic currents around developing embrios of higher plants in culter // The biological bulletin, Vol. 176, № 2 (Suppl.), P.46-49.

237. Rayle D., Cleland R. The acid growth theory of auxin-induced cell elongation is alive and well // Plant Physiol. 1992. V. 99. № 4. P. 1271-1274.

238. Reed J.W., Nagatani A., Elich T.D., Fagan M., Chory J. Phytochrome A and phytochrome В have overlapping but distinct function in Arabidopsis development // Plant Physiology, 1994, №104, P. 1139-1149.

239. Reinhardt D., Pesce E-R., Stieger P., Mandel Т., Baltensperger K.,

240. Bennett M., Traas J., Friml J., Kuhlemeler C. Regulation of phyllotaxis by polar auxin transport // Nature, 2003, V. 426, №6964, P. 255-260.

241. Roberts L.W., Gaham P.B., Aloni, R.Vascular differentiation and plant growth regulators // Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, 1988.

242. Robson, P.H., Smith, H., Genetic and transgenic evidence that phytochromes A and В act to modulate the gravitropic orientation of Arabidopsis thaliana hypocotyls // Plant Physiology, 1996, №110, P. 211216.

243. Ross J.J., Murfet I.C., Reid J.B. Distribution of gibberekkins in Lathyrus odoratus L. and their role in leaf growth // Plant Physiol., 1993, V. 102, P. 603-608.

244. Sakamoto K., Nagatani A. Nuclear localization activity of phytochrome В // Plant J. 1996, V. 10., P. 859-868.

245. Sass J.E. Botanical microtechnique // Third edition, The Iowa State University Press, Ames, Iowa, 1961.

246. Schaer J. A., Mandoli D. F., Briggs W. R. Phytochrome-mediated cellular photomorphogenesis // Plant Physiol. 1983. Vol. 72. №. 3. P. 706712.

247. Schaller A., Oecking C. Modulation of plasma membrane H*-ATPase activity differentially activates wound and pathogen defense responses in tomato plants // The Plant Cell, 1999, V. 11, P. 263-272.

248. Schneider-Poetsch H.A. Braun В., Marx S., Schaumburg A. Phytochromes and bacterial sensor proteins are related by structural and functional homologies // FEBS Lett., 1991, № 281, P. 245-249.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ176

249. Schneider-Poetsch Н.А. Signal transduction by phytochrome:phytochromes have a module related to the transmitter modules of bacterial sensor protein// Photochem. Photobiol., 1992; № 56, P. 839-846.

250. Scott B.I.H. Electric fields in plants. Annu. Rev. Plant Physiol., 1967, V. 18, P. 409-418.

251. Shimmen T. Involvement of receptor potentials and action potentials in mechanoperceprion in plants // Austr. J. Plant Physiol., 2001, V. 28, №7, P. 591-606.

252. Shinkle J.R. Photobiology of phytochrome-mediated responses in sections of stem tissue from etiolated oats and corn // Plant Physiol. 1986. V. 81. P. 533-537.

253. Shinkle J.R., Kadakia R., Jones A.M. Dim-red-light-induced increase in polar auxin transport in cucumber seedlings. I. Development of altered capacity, velocity and response to inhibitors // PI Physiol., 1998, V. 116, P. 1505-1513.

254. Shinomura Т., Nagatani A., Chory J., Furuya M. The induction of seed gemiination in Arabidopsis thaliana is regulated principally by phytochrome В and secondarily by phytochrome A // PI. Physiol., 1994, № 104, P. 363-371.

255. Shinomura Т., Nagatani A., Hanzava H., Kubota M., Watanabe M., Furuya M. Action spectra for phytochrome A- and B-specific photoinduction of seed germination in Arabidopsis thaliana // Proc Natl Acad Sci USA, 1996, №96, P. 8129-8133.

256. Shinomura Т., Uchida K., Furuya M. Elementary processes of photoperception by phytochrome A for high-irradiance response of hypocotyls elongation in Arabidopsis // Plant Physiol. 2000, V. 122, P. 147156.

257. Sineshchekov V., Lamparter Т., Hartmann E. Evidence for the existence of membrane-associated phytochrome in the cell // Photohem. Photobiol., 1994, V. 60, P. 516-520.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ177

258. Smith Н. Physiological and ecological function within thephytochrome family // Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1995, 46, P. 289-315.

259. Somers D.E., Quail P.H., Temporal and spatial expression patterns of PHY- and PHYB-GUS transgenes in Arabidopsis thaliana seedlings // The Plant Journal, 1995b, №7, P. 413-427.

260. Somers D.E., Sharrock R.A. Tepperman J.M., Quail P.H. The hy3long hypocotyl mutant of Arabidopsis is deficient in phytochrome B. // Plant Cell, 1991, №3, P. 1263-1274.

261. Speth V., Otto V., Schafer E. Intracellular localization of phytochrome in oat coleoptiles by electron microscopy // Planta, 1986, №168, P. 299-304.

262. Stankovic В., Davies E. Both action potentials and vibration potentials induce proteinase inhibitor gene expression in tomato // FEBS Lett., 1996, V. 390, P. 275-279.

263. Stankovic В., Davies E. Intercellular communication in plants: electrical stimulation of proteinase inhibitor gene expression in tomato // Planta, 1997, №4, V. 202, P. 402-406.

264. Tamimi S., Trebacz K., Sievers A. The spontaneous growth response of maize coleoptile segments and change in tissue sensitivity to endogeneous auxin//J. Exp. Bot., 1996, V. 301, №47, P. 993-998.

265. Terry M.J., Wahleithner J.A., Lagarias J.C. Biosyntesis of the plant photoreceptor phytochrome // Arch. Biochem. Biophys. 1993, № 306, P. 1-15.

266. Terzaghi W.B., Cashmore A.R. Light-regulated transcription // Annual Review of Plant Physiology, 1995, №46, P. 445-474.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ178

267. Thiimmer F., Algarra P., Fobo G.M. Sequence similarities ofphytochrome to protein kinases: implication for the structure, function and evaluation of the phytochrome gene family // FEBS Lett., 1995, № 357, P. 149-155.

268. Tian Q., Reed J.W. Molecular links between light and auxin signaling pathways // J. Plant Growth Regul., 2001, V. 20, P. 274-280.

269. Tr^bacz K., Stolarz M., Dziubinska H., Zawadzki T. Electrical control of plant development // Travelling Shot on Plant Development H. Greppin, C. Penel&P. Simon, eds University of Geneva, 1997, P. 165-181.

270. Tsiantis M., Brown M.I.N., Skibinski G., Langdale J. Disruption of auxin transport is associated with aberrant leaf development in maize // PI. Physiol., 1999, V. 121, P. 1163-1168.

271. Vanderhoef L.N., Quail P.H., Briggs W.R. Red light-inhibited mesocotyl elongation in maize seedlings. II. Kinetic and spectral studies // Plant Physiol. 1979. V. 63. N. 6. P. 1062-1067.

272. Vian A., Henry-Vian C., Schantz R., Ledoigt G., Frachisse J.-M., Desbiez M.-O., Julien J.-L. Is membrane potential involved in calmodulin gene expression after external stimulation in plants? // FEBS Letters, 1996, №97, V. 380, P. 93-96.

273. Viereck R., Kirsch M., Low R., Rausch T. Down-regulation of plant V-type t^-ATPase genes after light-induced inhibition of growth // FEBS Letters, 1996, V. 384, Is. 3, P. 285-288.

274. Vierstra R.D. Phytochrome degradation // In: Kendrick R.E., Kronenberg G.H.M. (eds) Photomorphogenesis in plants, 2nd edn. Kluwer Dordrecht, 1994, P. 141-162.

275. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol. 1996, 47, P. 215-243;279. von Arnim A., Deng X-W. Ring finger motif of Arabidopsis thaliana COP1 defines a new class of zinc-binding domain // J. Biol. Chem., 1993, № 268, P. 19626-19631.

276. Wagner D., Fairchild C.D., Kuhn R.M., Quail P.H. Chromophore-bearing NH2-trminal domains of phytochromes A and В determine their photosensory spesificity and differential light lability // Proc Natl. Acad. Sci. USA, 1996a, №93, P. 4011-4015.

277. Wagner D., Hoecker E., Quail P.H. RED1 is necessary for phytochrome B-mediated red light specific signal transduction in Arabidopsis II Yhe Plant Cell, 1997, №9, P. 731-743.

278. Wagner D., Quial P.H. Mutational analysis of phytochrome В identifies a small COOH-terminal-domain region critical for regulatory activity // Proceedings of the National Academy of Sciences, 1995, USA, №92, P.8596-8600.

279. Walton J., Ray P.M. Evidence for receptor function of auxin binding sites in maize. Red light inhibition of mesocotyl elongation and auxin binding //PlantPhysiol. 1981. V. 68. P. 134-1338.

280. Ward J.M., Pei Z.-M., Scheder J.I. Roles of ion channels in initiation of signal transduction in higher plat // Plant Cell. 1995. V. 7. P. 833844.

281. Wei N., Chamovitz D.A., Deng X-W., Arabidopsis COP9 is a component of a novel signaling complex mediating light control of development//Cell, 1994, №78, P. 117-124.

282. Wellmer F., Kircher S., Rtigner A., Frohnmeyer H., Schafer E., Harter K. Phosphorylation of the parsley bZIP transcription factor CPRF2 is regulated by light II J. Biol. Chem., 1999, №274, P. 29476-29482.1. СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ180

283. White M.J., Kaufman L.S., Horwitz B.A., Briggs W.R.,

284. Thompson W.F. Individual members of the Cab gene family differ widely in fluence response // Plant Physiology, 1995, № 107, P. 161-165.

285. Whitelam G.C., Johnson E., Peng J., Carol P., Andersen M.L., Cowl J.S., Hardberg N.P. Phytochrome A null mutants of Arabidopsis display a wild-type phenotype in white light // Plant Cell, 1993, № 5, P. 757768.

286. Whitelam G.C., Johnson E., Perg J., Carol P., Anderson M., Cowl J., Harberd N.P. Phytochrome A null mutants of Arabidopsis display a wild-type phenotype in white light I I PI. Cell, 1993, №5, P. 757-768.

287. Wilkins M. B. Geotropic response mechanisms in roots and shoots // In: Plant growth regulation: Proc. 9th Intern. Conf. Plant Growth Subst. Lausanne, 1976, Spring.-Verlag, 1977, P. 199-207.

288. Xu Y., Parks B.M., Short T.W., Quail P.H. Missense mutations define segment in the C-terminal domain of phytochrome A critical to its regulatory activity // The Plant Cell, 1995, №7, P. 1433-1443.

289. Yahalom A., Epel B. L., Glinka Z., MacDonald I. R., Gordon D. C. A kinetic analysis of phytochrome controlled mesocotyl growth in Zea mays seedlings // Plant Physiol. 1987. Vol. 84. №. 3. P. 390-394.

290. Yang Y-Y., Nagatani A., Xhao Y-J., Kang B-J., Kendrick R.E., Kamiya Y. Effects of gibberellins on seed germination of phytochrome-deficient mutants of Arabidopsis thaliana II Plant Cell Physiology, 1995, №36, P. 1205-1211.

291. Yi H.J., Park D., Lee Y. In vivo evidence for the involvment of phospholipase A and protein kinase in the signal transduction pathway for auxin-induced corn copeoptile elongation // Physiologia Plantarum, 1996, V. 96, №3, P. 359-368.

292. Zelena E. The effect of light of IAA metabolism in different parts of maize seedlings in correlation with their growth // J. Plant Growth Regul., 2000, V. 32, P. 239-243.

293. Zelena E. The effect of light on metabolism of IAA in maize seedlings // J. Plant Growth Regul., 2000, V. 30, P. 23-29.