Cтроение, развитие и изменчивость крестцово-тазового комплекса бесхвостых амфибий (Amphibia, Anura) тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.00.08, кандидат биологических наук Кружкова, Юлия Игоревна

• Кружкова, Юлия Игоревна
• кандидат биологических наук
• 2008

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Кружкова, Юлия Игоревна

Оглавление.

Введение.

Глава 1. Материалы и методы.

1.1. Материал.

1.2. Методы получения материала.

1.3. Методики обработки материала.

Глава 2. Обзор литературных данных.

2.1. Современные представления о развитии крестцово-тазового комплекса Anura.

2.2. Закономерности изменчивости крестца Anura.

2.3. Преобразование мышечной системы личинок Anura под воздействием тироидных гормонов.

Глава 3. Результаты.

3.1. Разнообразие вариантов нормального дефинитивного строения крестцово-тазового комплекса Anura (собственные и литературные данные).

3.2. Нормальное развитие крестцово-тазового комплекса Anura.

3.2.1. Травяная лягушка {Rana temporaria Linnaeus,1758).

3.2.2. Серая жаба {Bufo bufo Linnaeus, 1758) и зеленая жаба {Pseudepidalea viridis Laurenti, 1768).

3.2.3. Гладкая шпорцевая лягушка {Xenopus laevis Daudin, 1802).

3.2.4. Карликовый когтеносец {Hymenochirus boettgeri Tornier, 1896).

3.2.5. Краснобрюхая жерлянка {Bombina bombina Linnaeus, 1761).

3.2.6. Кавказская крестовка {Pelodytes caucasicus Boulenger, 1896).

3.3. Нормальное развитие крестово-тазового комплекса у Caudata.

3.3.1. Обыкновенный тритон (Lissotriton vulgaris Linnaeus, 1758) и сибирский углозуб (Salamandrella keyserlingii, Dybowski, 1870).

3.4. Некоторые варианты индивидуальной изменчивости посткраниального скелета модельных видов.

3.5. Динамика развития и строение осевого скелета личинокXenopus laevis, выращенных в условиях подавления синтеза тироидных гормонов.

Глава 4. Обсуждение.

4.1. Поперечные отростки позвонков.

4.1.1. Формирование различий между поперечными отростками в пределах одного позвоночника.

4.1.2. Формирование межвидовых различий между одноименными поперечными отростками.

4.1.3. Проблема "сложного крестца" бесхвостых амфибий.

4.2. Крестцово-уростильное сочленение.

4.2.1. Формирование подвижного и неподвижного крестцово-уростильного сочленения.

4.2.2. Способ развития, дефинитивное строение и индивидуальная изменчивость.

4.3. Крестцово-тазовое сочленение.

4.3.1. Формирование крестцово-тазового сочленения.

4.3.2. Роль подвздошного отростка таза в развитии крестцово-уростильной области.

Выводы.

Благодарности.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Cтроение, развитие и изменчивость крестцово-тазового комплекса бесхвостых амфибий (Amphibia, Anura)»

Бесхвостые амфибии выделяются среди прочих Tetrapoda не только уникальностью строения крестцово-тазового комплекса (длинные подвздошные отростки таза, длинный и несегментированный уростиль), но и очень высокой степенью изменчивости этого отдела (как индивидуальной, так и на уровне семейств, родов и даже видов). Разнообразие вариантов строения крестцово-тазового комплекса Anura заслуженно привлекает внимание систематиков и морфологов. Систематики видят в нем источник данных для диагностики видов и выявления филогенетических связей (Lynch, 1973; Trueb, 1996; Haas, 2003 и мн. др.). Морфологи используют это разнообразие для анализа закономерностей формообразования скелетных элементов (Ridewood, 1897; Hodler, 1949 a, b; Борхвардт, 1975; Борхвардт, 1982; Коваленко, 1981, 1985), а также закономерностей межвидовой и индивидуальной изменчивости (Коваленко, 1996 а, б; Коваленко, 2000 б; Коваленко, Данилов, 2006).

Морфогенетические причины высокого разнообразия осевого скелета Anura, и в частности их крестцово-тазового комплекса, издавна являлись объектом интереса ученых. Большой сдвиг в исследовании причинно-следственных связей в ходе формообразования скелетных элементов произошел в связи с появлением новых подходов к изучению этого процесса. Борхвардт (Борхвардт, 1982) предложил исследовать морфогенез скелета в связи с развитием окружающих его структур. Он и его последователи показали огромное значение сосудов, нервов, мышц, миосепт, брюшной полости, хорды и нервной трубки в развитии позвоночника, (Борхвардт, 1982; Коваленко, 1985; Борхвардт, Коваленко, 1985; Борхвардт, Коваленко, 1986; Коваленко, Анисимова 1987; Борхвардт, 1990; Коваленко, 1992; Борхвардт, 1995). Например, было показано, что необычно большой объем брюшной полости у личинок Anura, является причиной резкой смены условий формирования позвонков на границе туловище-хвост, что, в свою очередь, объясняет разницу в дефинитивной морфологии последних (Коваленко, 1985; Коваленко, Анисимова 1987). Также благодаря этому подходу была обнаружена связь между изменчивостью не скелетных структур и скелета. Например, было показано, что разница в величине околохордового пространства определяет разницу в способе закладки и развития тел позвонков у разных видов Апига (Борхвардт, 1982).

Подход, предложенный Коваленко (1985, 20006), предполагает, что механизм морфогенеза должен описывать причины формирования, как нормы, так и отклонений от нее. Варианты индивидуальной изменчивости в свете этого подхода рассматриваются как своего рода природный эксперимент без искусственного вмешательства в ход онтогенеза и нарушения целостности организма. Они используются для проверки моделей морфогенетических отношений. Например, с их помощью был расшифрован ряд механизмов развития позвоночника бесхвостых амфибий (Коваленко, 1992). Часть версий относительно морфогенеза крестца, напротив, была опровергнута вариантами индивидуальной изменчивости (Борхвардт, 1995; Коваленко, Бордукова, 1995; Коуа1епко, Коуа1епко, 1996). Этими двумя подходами, предложенными Борхвардтом (1982) и Коваленко (1985, 20006) руководствовался и автор данной работы.

Для объяснения тех или иных особенностей строения крестцово-тазового комплекса Апига в разное время было выдвинуто несколько гипотез (НосИег, 1949Ь; Коваленко, 1985; Коваленко, Анисимова 1987; Борхвардт, 1995). Однако ни одна из них не объясняла весь диапазон его изменчивости. Так, остается неизвестным, что определяет разницу в размерах между крестцовыми и не крестцовыми диапофизами, от чего зависят размер и форма крестцовых диапофизов, а также, что определяет тип крестцово-уростильного и крестцово-тазового сочленений. Между тем все перечисленные признаки являются важными для систематики крупнейшего отряда амфибий.

Особое место в вопросе истории отряда занимает проблема сложного крестца (см. Коваленко, 1999). Является ли это состояние крестца продвинутым для Апига в целом или представляет собой лишь редкий вариант строения нормы? Для ряда видов, демонстрирующих так называемый сложный крестец (например, НутепосЫгш Ьое^еп, ОгеоркгупеИа quelchii) до сих пор было неизвестно точное количество позвонков образующих эту конструкцию. Некоторыми авторами ставится под сомнение сама возможность формирования сложного крестца (как результата полного слияния нескольких позвонков и их диапофизов) при нормальном онтогенезе у Апига (Коваленко, 1999; Коваленко, Данилов, 2006). Решение вопроса о природе этой структуры у бесхвостых амфибий осложнялось отсутствием информации о ее морфогенезе. Между тем, ответ на этот вопрос сам по себе играет важную роль в анализе общего характера межвидовой и индивидуальной изменчивости крестцового отдела позвоночника у Апига. И поэтому представляет самостоятельный интерес. . Таким образом, целью работы стало выявление закономерностей морфогенеза крестцово-тазового комплекса Апига, объясняющих его высокую межвидовую и индивидуальную изменчивость. Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

1) сравнить условия формирования предкрестцовых и крестцовых диапофизов в пределах одного позвоночника на модельных видах;

2) сравнить условия развития крестцовых диапофизов у видов с разной их формой;

3) проследить развитие сложного крестца на примере НутепосЫгш Ъоеи^еН;

4) сравнить условия формирования разных типов крестцово-тазового и крестцово-уростильного сочленений Апига;

5) исследовать преобразование осевой мускулатуры в ходе онтогенеза Апига и оценить его влияние на развитие диапофизов;

6) поставить эксперимент по блокированию процесса метаморфоза у личинок бесхвостых амфибий и проследить развитие их диапофизов в этих условиях.

Заключение диссертации по теме «Зоология», Кружкова, Юлия Игоревна

Выводы

1. Гормонозависимая перестройка мышечной системы личинок бесхвостых амфибий является ведущим морфогенетическим фактором, определяющим особенности роста поперечных отростков позвонков Апига.

2. Размер и форма конкретного поперечного отростка зависят от топологии пространства, в котором он развивается. На топологию этого пространства, в свою очередь, влияют следующие факторы: а) взаимное расположение септы и нервного ганглия в сегменте, которое определяет площадь зоны крепления септальных волокон на невральную дугу, что в свою очередь определяет ширину основания развивающегося на этих волокнах диапофиза; б) относительная ширина пространства между невральной дугой и миомерами, в период закладки и начального роста диапофиза; в) количественное соотношение личиночных и взрослых мышечных трубочек в миомерах, прилегающих к септе, которое отражается на степени разрушения последних во время метаморфоза; г) время закладки поперечного отростка относительно начала метаморфоза мышечной системы головастика; д) особенности прохождения вторичного миогенеза у конкретного вида.

3. Перечисленные факторы варьируют у Апига относительно независимо друг от друга и поэтому создают множество комбинаций условий для формирования диапофизов. Этим и объясняется столь высокая межвидовая и индивидуальная изменчивость этих структур.

4. Основой исключительно крупных крестцовых крыльев у НутепосЫгш boettgeri (так называемого «сложного крестца») является одна пара поперечных отростков (седьмого позвонка). Развитие этой единственной пары существенно отличается от развития крестцовых диапофизов других видов. Причиной этого является большее, чем у остальных Апига, несоответствие длин мышечного и неврального сегментов в крестцовой области.

5. Основным фактором, определяющим формирование двух разных типов крестцово-уростильного сочленения Апига (подвижного и неподвижного), являются различия в топографии и времени возникновения мышц крестцово-уростильной области.

6. Формирование того или иного типа крестцово-тазового сочленения у бесхвостых амфибий зависит от положения дистального конца подвздошного отростка таза относительно крестцового позвонка. Последнее, в свою очередь, определяется положением брюшной полости личинки относительно осевого комплекса.

Благодарности.

Я выражаю свою глубокую искреннюю благодарность моему Учителю - профессору Елене Евгеньевне Коваленко, за мое научное образование, бесконечное терпение и мудрость, а также за поддержку, которую я чувствовала на протяжении всех этапов данного исследования. Я очень признательна всем членам морфологической группы кафедры зоологии позвоночных СПбГУ за обсуждение представленных в данной работе результатов и особенно В. Г. Борхвардту за ценные консультации. За предоставление материала я благодарю Н. В. Балееву, В. Г. Борхвардта, И Г. Данилова, Г. А. Ладу, Е. Б. Малашичева, Е. М. Рыбалтовского, а также всех студентов, аспирантов и сотрудников кафедры зоологии позвоночных СПбГУ, принимавших участие в создании морфологической коллекции препаратов кафедры. Также я благодарна Т. А. Бордуковой, А В. Буланкиной, С. Э. Данилевской за помощь в организации выращивания личинок Апига. Особую благодарность я выражаю И. В. Коваленко за профессиональную помощь в организации базы данных и создание специальных программ для ее обработки.

Настоящее исследование поддержано грантами РФФИ 06-04-49721а и Президента РФ для поддержки ведущих научных школ НШ-4534.2006.4.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Кружкова, Юлия Игоревна, 2008 год

1. Анисимова Е.В. Строение крестцово-уростильного сочленения у кавказской крестовки {Pelodytes caucasicus) // Вопросы герпетологии: Автореф. докл. 6 Всесоюз. герпет. конф. 1985. JI. С. 10-11.

2. Анисимова Е.В. Строение, развитие и изменчивость крестцово-тазовой области обыкновенного тритона (Triturus vulgaris L.) // Вестн. ЛГУ. 1990. Сер. 3. № 3. Вып. 1. С. 3-10.

3. Балеева Н. В. Строение и развитие грудного пояса хвостатых и бесхвостых амфибий. Дисс. канд. биол. наук. СПб. 2005. 302 с.

4. Борхвардт В.Г. Строение и развитие позвоночника бесхвостых амфибий // Зоол. Журн. 1975. Т. 54. Вып. 1. С. 68-79.

5. Борхвардт В.Г. О природе дуг позвонков миног (Petromyzonidae) // Вопросы Ихтиологии. 1978. Т. 4. С. 767-771.

6. Борхвардт В. Г. Морфогенез и эволюция осевого скелета. Л.: изд-во ЛГУ. 1982. 144 с.

7. Борхвардт В.Г. Осевой комплекс позвоночных в онто- и филогенезе // Организация, интеграция и регуляция биологических систем. Труды Биолог. НИИ ЛГУ. 1990. №41. С. 120-138.

8. Борхвардт В.Г. Закономерности развития хрящевых элементов в онтогенезе позвоночных // Журн. Общ. Биол. 1991. Т. 52. № 5. С.746-758.

9. Борхвардт В.Г. О формировании крестцово-подвздошного скелетного комплекса в онтогенезе тетрапод // Зоол. Журн. 1995. Т. 74. № 5. С. 8494.

10. Борхвардт В.Г., Коваленко Е.Е. Роль механических взаимодействий в развитии миомеров и осевого скелета анамний // Вестн. ЛГУ. 1985. № 3. Вып. 1.С. 3-10.

11. Борхвардт В.Г., Коваленко Е.Е. Септальные перегородки эмбрионов и личинок анамний // ДАН СССР. 1986. Т. 287. № 3. С. 764-768.

12. Гуртовой, Н. Н., Дзержинский, Ф. Я. Практическая зоотомия позвоночных. Земноводные, прсмыкающиеся. Учебное пособие для биол. специальностей университетов. Под ред. Матвеева Б.С., Гуртового Н.Н. М.: Высшая школа. 1978. 407с.

13. Дабагян Н. В., Слепцова J1. А. Травяная лягушка Rana temporaria L. С. 442-462 в сб.: Детлаф Т. А. (ред.). Объекты биологии развития. 1975. М.: Наука.

14. Детлаф Т. А., Руднева Т. Б. Шпорцевая лягушка Xenopus laevis Daudin. С. 392-441 в сб.: Детлаф Т. А. (ред.). Объекты биологии развития. М.: Наука. 1975.

15. Дзержинский Ф. Я. Сравнительная анатомия позвоночных животных. М.: «ЧеРо». 1998. 208 с.

16. Дубинин В.Б. Изменение шейного отдела позвоночника в филогенезе и онтогенезе //Журн. Общ. Биол. 1949. Т. 10. № 2. С. 42-75.

17. Иванова Н. JL, Пястолова О. А. Содержание дальневосточной жерлянки (ВотЫпа orientalis) в лабораторных условиях // Зоол. Журн. 1979. Т. 58. Вып. 10. С. 1582-1584.

18. Кабардин Н. Е. Оперативное лечение ложных суставов и дефектов костей предплечья. Автореферат дисс. к. б. н. Киев. 1963. 18 с.

19. Коваленко Е.Е. О сочленении тел позвонков травяной лягушки Rana temporaria II Вопросы герпетологии: Автореф. докл. 5 Всесоюз. герпет. конф. Л. 1981. С. 65-66.

20. Коваленко Е.Е. Коррелятивные изменения в позвоночнике травяной лягушки Rana temporaria II Зоол. Журн. 1983. Т. 62. Вып. 4. С. 564-569.

21. Коваленко Е.Е. Строение, развитие и изменчивость позвоночника травяной лягушки (Rana temporaria L.): Автореф. канд. дисс. JI. 1985. С. 1-16.

22. Коваленко Е. Е. Форма тел позвонков бесхвостых амфибий // Систематика и экология амфибий и рептилий. Тр. Зоол. ин-та АН СССР. 1986. Т. 157. С. 69-85.

23. Коваленко Е. Е. Аномалии позвоночника бесхвостых амфибий. СПб. 1992. 142 с.

24. Коваленко Е. Е. Анализ изменчивости крестца Anura. 1. Метод анализа изменчивости крестца бесхвостых амфибий // Зоол. Журн. 1996а. Т. 75. Вып. 1. С. 52-66.

25. Коваленко Е. Е. Анализ изменчивости крестца Anura. 2. Изменчивости крестца у представителей рода Rana // Зоол. Журн. 19966. Т. 75. Вып. 2. С. 222-236.

26. Коваленко Е. Е. Строение крестцво-уростильного отдела в семействе Pipidae (Amphibia, Anura) // Зоол. Журн. 1999. Т. 78. № 1. С. 57-69.

27. Коваленко Е. Е. Изменчивость посткраниального скелета бесхвостых амфибий: Автореф. Докт. дисс. СПб. 2000. С. 1-117.

28. Коваленко Е. Е. Изменчивость крестца у шпорцевой лягушки Xenopus laevis (Pipidae) при нормальном морфогенезе конечностей // Зоол. Журн. 2003. Т. 82. Вып. 10. С. 1222-1238.

29. Коваленко Е. Е. Изменчивость крестца у шпорцевой лягушки Xenopus laevis (Pipidae) при аберрантном морфогенезе конечностей // Зоол. Журн. 2007. Т. 86. Вып. 1. С. 66-80.

30. Коваленко Е. Е., Анисимова Е. В. Особенности строения и развития крестцово-уростильной области бесхвостых амфибий // Зоол. Журн. 1987. Т. 66. Вып. 4. С. 557-566.

31. Коваленко Е. Е., Бордукова Т. А. Изменение формы крестца в онтогенезе шпорцевой лягушки Xenopus laevis (Anura, Pipidae) // Вестн. СПбГУ. 1995. Сер. 3. Вып. 2. № 10. С. 18-31.

32. Коваленко Е. Е., Данилов И. Г. Разнообразие крестцово-уростильного отдела в семействе Bufonidae (Amphibia, Anura). 1. Фактическоеразнообразие крестца у буфонид // Зоол. Журн. 2006. Т. 85. № 4. С. 500516.

33. Коваленко Е.Е., Кружкова Ю.И. Аномалии задних конечностей у лабораторной шпорцевой лягушки Хепорив 1аеУ18 (Апига, Р1р1с1ае). 1. Феномен массовых аномалий // Вестн. СПбГУ. 2000а. Сер. 3. Вып. 1. № 3. С. 3-21.

34. Коваленко Е.Е., Кружкова Ю.И. Аномалии задних конечностей у лабораторной шпорцевой лягушки ХепориБ 1аеу1$ (Апига, Р1р1с1ае). 2. Коррелятивные изменения таза и задних конечностей // Вестн. СПбГУ. 20006. Сер. 3. Вып. 3. № 19. С. 9-24.

35. Коваленко Е.Е., Кружкова Ю.И. Аномалии задних конечностей у лабораторной шпорцевой лягушки Хепорш \aevis (Апига, Р1р1с1ае). 3. Характеристики спектра изменчивости и параметры, влияющие на них // Вестн. СПбГУ. 2001. Сер. 3. Вып. 1. № 3. С. 3-17.

36. Малашичев Е. Б. Строение и развитие крестцово-тазового комплекса амниот. Дисс. канд. биол. наук. СПб. 2003. 244 с. ^

37. Николаев Л. П. Биомеханическое и клиническое значение болыдеберцово-пяточного неоартроза // Тр. Харьк. Науч. Мед. Общ. Сб. статей. Ортопедия, травматология и протезное дело. Киев. 1954. С. 99-111.

38. Ноздрачёв А. Д. Поляков Е. Л. Анатомия лягушки. (Лабораторные животные). М.: Высшая школа. 1994. 320 с.

39. Объекты биологии развития. М.: Наука. 1975. 582 с.

40. Пономарёва-Астраханцева, Л. 3. Методы вызывания у животных заболеваний костно-суставного аппарата. С. 326-355 в: Воспроизводство заболеваний у животных для экспериментально-терапевтических исследований. Л. 1954.

41. Ромер А., Парсонс Т. Анатомия позвоночных. М.: Мир. 1992. 358 с.

42. Шмальгаузен И. И. Основы сравнительной анатомии. М. 1938. С. 1488.

43. Шмальгаузен И. И. Значение корреляций в эволюции животных // Сборник памяти А. Н. Северцева. 1939. Т. 1. M.-JL: Изд-во АН СССР. С. 175-226.

44. Эпштейн Г. Я. Лечение ложных суставов и замедленной консолидации. Наркомздрав СССР: Гос. Изд-во Мед. Литературы. Ленинградское отд. 1940. 143 с.

45. Al-Hussaini А.Н. Notes on the anatomy of Egyptian toads (Bufo regularis Reuss and Bufo viridis Laur) // Bull. Fac. Sci. Fouad I Univ. 1939. V. 19. № 3. P. 1-40.

46. Al-Hussaini A.H. The osteology of Rana mascareniensis И Dum. et Bibr. Bull. Fac. Sci., Fouad I Univ. 1941. V. 24. P. 75-89.

47. Allen В. M. The results of extirpation of the anterior lobe of the hypophysis and the thyroid of Rana pipiens larvae. Science. 1916. V. 44. P. 755-758.

48. Allen В. M. The results of thyroid removal in the larvae of Rana pipiens. J. Exp. Zool. 1918. V. 26. P. 499-519.

49. Baez A. M., Pugener L. A. Ontogeny of a new Palaeogene pipid frog from southern South America and xenopodinomorph evolution // Zool. J. Linn. Soc. 2003. V. 139. P. 439-476.

50. Baleeva N. Formation of the scapular part of the pectoral girdle in anuran larvae // Russ. J. Herpetol. 2001. V. 8. №. 3.P. 195-204.

51. Banbury B. and Maglia A. M. Skeletal development of the mexican spadefoot, Spea multiplicata (Anura: Pelobatidae) I I J. Morphol. 2006. V. 1. P. 1-19.

52. Basoglu M. and Zaloglu S. Morphological and osteological studies in Pelobates syriacus from Izmir region, western Anatolia (Amphibia, Pelobatidae) // Senck. biol. 1964. V. 45. № 3/5. P. 233-242.

53. Becker K. B., Stephens K. C., Davey J. C., Schneider M. J., Galton V. A. The type 2 and type 3 iodothyronine deiodinases play important roles in coordinating development in Rana cdesbema tadpoles. Endocrinology. 1997. V. 13. № 8. P. 2989-2997.

54. Berger L. Some characteristics of backcrosses within forms of Rana esculenta-complQX// Genet, pol. 1973. V. 14. P. 413-430.

55. Blanco M.J., Sanchiz B., 2000. Evolutionary mechanisms of rib loss in Anurans // A Comparative Developmental Approach//Journal of Morphology, V. 244, P. 57-67.

56. Borkhvardt V.G., Malashichev Y.B. Correlative changes during early morphogenesis of the sacroiliac complex in squamate reptiles // Ann. Anat. (Anat. Anz.). 2000. V. 182. № 5. P. 439-444.

57. Borkhvardt V. G., Malashichev Y. B. Epicoracoid overlap in fire-bellied toads, Bombina bombina, from parents of known morphology // Amphibia-Reptilia. 2001. V. 22. P. 480-484.

58. Boulenger G.A. The tailless batrachians of Europe, Part II. London. 1898. P. 211-376.

59. Cai L., Brown D. D. Expression of type II iodothyronine deiodinase marks the time that a tissue responds to thyroid hormone-induced metamorphosis inXenopus laevis //Dev. Biol. 2004. V. 266. № 1. P. 87-95.

60. Callery E.M., Elinson R.P. Thyroid hormone-dependent metamorphosis in a direct developing frog // Dev. Biol. 2000. V. 97. № 6. P. 2615-2620.

61. Cannatella D. C. A new genus of bufonid (Anura) from South America, and phylogenetic relationships of Neotropical genera // Herpetologica. 1986. V. 42. P. 193-201.

62. Cannatella D.C. and Trueb L. Evolution of pipoid frogs: morphology and phylogenetic relationships of Pseudhymenochirus II J. Herpet. 1988b. V. 22. № 4. P. 439-456.

63. Chanoine C., d'Albis A., Lenfant-Guyot M., Janmot C., Gallien C. Regulation by thyroid hormones of terminal differentiation in the skeletal dorsal muscle. II. Urodelan amphibians // Dev. Biol. 1987. V. 123. № 1. P. 33-42.

64. Chanoine C., Janmot C., Guyot-Lenfant M., Durend J., d'Albis A., Gallien C. Hormonal determination of the differentiation of striated skeletal muscle in urodele amphibians // Reprod. Nutr. Dev. 1988. V. 28. № 3B. P. 721-731.

65. Clarke B. T. A. Discription of the skeletal morphology of Barbourula (Anura: Discoglossidae), with comments on its relationships // J. Nat. Hist. 1987. V.21.P. 879-891.

66. Cloma L. A. Two new species of Atelopus (Anura: Bufonidae) from Ecuador // Herpetologica 2002. V. 58. № 2. P. 229-252.

67. Das B., Schreiber A. M., Huang H., Brown D. D. Multiple thyroid hormone-induced muscle growth and death programs during metamorphosis in Xenopus laevis //Develop. Biology. 2002. V. 99. № 19. P. 12230-12235.

68. De Silva P. Some observations on the skeletal system of the genus Rana Linne as represented in Ceylon // Spolia Zeylanica. 1956. V. 28. № l.P. 8793.

69. Dey D., Dutta S.K., Mohanty-Hejmadi P. Chondriflcation and osteological development of vertebral column in tadpoles of Microchyla ornata Dumaril et Bibron // Amph. Rept. 1989. V. 10. P. 321-329.

70. Drachman D. B., Sokoloff L. The role of movement in embryonic joint development//Dev. Biol. 1966. V. 14. P. 401 -420.

71. Dragomirowa, N. Uber die abhangige Entwicklung von Sacralwirbel und Urostyl bei den Axolotl // Zool. Jahrb., Abt. Zool. Physiol. 1935. V. 54. No. 3. P. 249-266

72. Drewes R.C. A phylogenetic analysis of the Hyperoliidae (anura): Treefrogs of Africa, Madagascar and Seychelles Islands // Occas. Papes of the California Acad, of Sci., 1984. V. 139. P. 70.

73. Duellman W.E., Trueb L. Biology of amphibians. N.-Y. Mc Grow-Hill. 1986. 670 p.

74. Duellman W.E., Trueb L. Cryptic species of hylid marsupeal frogs in Peru // J. Herpetol. 1988. V. 22. № 2. P. 159-179.

75. Duellman E. D., Trueb L. Biology of amphibians. Baltimore & London: The Johns Hopkins University Press. 1994. 670 p.

76. Elinson R.P., Remo B., Brown D.D. Novel structural elements identified during tail resorption in Xenopus laevis metamorphosis: lessons from tailed frogs // Dev. Biol. 1999. V. 215. № 2. P. 243-252.

77. Emerson Sh. B. The ilio-sacral articulation in frogs: form and function // Biol. J. Linn. Soc. 1979. V. 11. №2. P. 155-168.

78. Emerson Sh. B. Frog postcranial morphology: identification of a functional complex // Copeia. 1982. №3. P. 603-613.

79. Estabel J., Mercer A., Konig N,, Exbrayat J.M. Programmed cell death in Xenopus laevis spinal cord, tail and other tissues, prior to, and during, metamorphosis // Life Sci. 2003. V. 73. № 25. P. 3297-3306.

80. Estes R. Relationships of the South African fossils frog Eoxenopoides reuningi (Anura, Pipidae) // Ann. Sauth. Afr. Mus. 1977. V. 73. № 2. P. 4980.

81. Estes R., Reig O.A. The early fossil record of frogs: a review of the evidence // Evolutionary biology of the anurans. University of Missouri Press, Columbia. 1973. P. 11-62.

82. Faivovich J., Haddad C., GarciA P., Frost D., Campbell J., Wheeler W., Systematic review of the frog family Hylidae, with special reference to Hylinae: phylogenetic analysis and taxonomic revision // Bui. Am. Mus. Nat. Hist. 2005. № 294. P.: 1-240.

83. Francis E. T. B. The anatomy of the Salamander. 1934. Oxford: Clarendon Press. 381 p.

84. Frost D. R. Amphibian Species of the World: an Online Reference. Version 5.1 (10 October, 2007). Electronic Database accessible at http://research.amnh.org/herpetology/amphibia/index. php. American Museum of Natural History, New York, USA. 2007.

85. Gaupp E. Eckers und Wiedersheim Anatomie des Frosches. Abt. 1. Lehre vom Skelet und vom Muskelsystem. Braunschweig: Druck und Verlag von Friedrich Vieweg und Sohn. 1896. 229 p.

86. Gaupp E. Eckers und Wiedersheim Anatomie des Frosches. Abt. 2. Lehre vom Nervensystem und Gefässsystem. Braunschweig: Druck und Verlag von Friedrich Vieweg und Sohn. 1899. 548 p.

87. Goto S. A few cases of merestic variation in the Common Toad and Isopod // Annot. Zool. Japonenses. 1906. V. 5 № 1-5. P. 267-276.

88. Grandison A.G.C. Morphology and phylogenetic position of the west African Didynamipus sjoestedti Andersson, 1903 (Anura: Bufonidae) // Monitore Zool. Ital. (N.S.). Suppl. 1981.V. 15. P. 187-215.

89. Green T. L. On the pelvic of the Anura: a study in adaptation and recapitulation//Proc. Zool. Soc. London. 1931. V. 4. P. 1259-1291.

90. Grimaldi A., Tettamanti G., Martin B. L., Gaffield W., Pownall M. E., Hughes S. M. Hedgehog regulation of superficial slow muscle fibres in

91. Xenopus and the evolution of tetrapod trunk myogenesis // Development. 2004. V. 131. №14. P. 3249-3262.

92. Haas A. Phylogeny of frogs as inferred from primarily larval characters (Amphibia: Anura) // Cladistics, 2003. V. 19. P. 23-89.

93. Hall B.K. Cartilage changes after experimental immobilization of the knee joint in the young rat // J. Bone Joint Surg. Am. 1963. V. 45. P. 36-44.

94. Hall J. A., Larsen J.H. Jr. Postembryonic ontogeny of the spadefoot toad, Scaphiopus intermontanus (Anura: Pelobatidae): skeletal morphology // J. Morphol. 1998. V. 238. № 2. P. 179-244.

95. Hanken J, Hall BK. Skull development during anuran metamorphosis. II. Role of thyroid hormone in osteogenesis // Anat Embryol (Berl). 1988. V. 178. № 3. P.219-227.

96. Haugton S.H. On a collection of fossil frogs from the clays of Banke // Trans. R. Soc. S. Afr. 1931. V. 19. P. 233-249.

97. Hensey C., Gautier J. Programmed cell death during Xenopus development: a spatio-temporal analysis // Dev Biol. 1998. V. 203. № 1. P. 36-48.

98. Hinchliffe J. R., Johnson D. R. Growth of cartilage. P. 255-295 in: Hall B. K. (ed.). Cartilage. V. 2. New York: Acad. Press. 1983.

99. Hodler F. Zur Entwicklung der Anurenwirbelsaule // Rev. Suisse Zool. 1949a. T. 56. Fasc. 2. P. 327-330.

100. Hodler F. Untersuchungen über die Entwicklung von Sacralwirbel und Urostyl bei den Anuren, Ein Beitrag, zur Deutung des anuren Amphibientypus // Rev. Suisse Zool. 1949b. V. 56. Fasc. 4. P. 747-790.

101. Holman J.A. Anuran sacral fusion and the status of the Pliocene genus Anchylorana Taylor // Herpetologica. 1963. V. 19. N 3. P. 160-166.

102. Huang H., Marsh-Armstrong N. and Brown D. D. Metamorphosis is inhibited in transgenic Xenopus laevis tadpoles that overexpress type III deiodinase //Dev. Biol. 1999. V. 96. P. 962-967.

103. Imai M. Electronmicroscopic observation on the degeneration of skeletal muscles in Xenopus laevis during metamorphosis and after denervation // Ahat Anz. 1993. V. 175. № 5. P. 417-423.

104. Ishizuya-Oka A. Apoptosis of larval cells during amphibian metamorphosis // Microsc. Res. Tech. 1996. V. 34. № 3. P. 228-235.

105. Kanamori A., Brown D. D. The analysis of complex developmental programmes: amphibian metamorphosis // Genes Cells. 1996. V. 1. № 5. P. 429-435.

106. Kelly R. G., Zammit P. S., Schneider A., Alonso S., Biben Ch., Buckingham M. E. Embryonic and fetal myogenic programs act through separate enhancers at the MLC1F/3F locus// Dev. Biol. 1997. V. 187. Is. 2. P. 183199.

107. Kojima S., Takagi A., Watanabe T. Effect of prednisolone on apoptosis and cellular infiltration in mdx mouse muscle // Rinsho Shinkeigaku. 1999. V. 39 № 11. P.l 109-1113

108. Kordylewski L. Differentiation of tail and trunk musculature in the tadpole of Xenopus laevis II Z. Mikrosk. Anat. Forsch. (Leipz.). 1986. V. 100. P. 777-789.

109. Kovalenko E.E. The compound sacrum in individual variability of common platanna (Xenopus laevis) II Rus. J. Herpetol. 1994. V. 1. № 2. P. 172-178.

110. Kovalenko E.E. On some sacral anomalies in laboratorial common plattana Xenopus laevis (Anura, Pipidae) // Rus. J. Herpetol. 1995. V. 2. № 2. P. 170173.

111. Kovalenko E.E. and Danilevskaya S.E. On unique forms of anomalous sacral structure in tailless amphibians // Rus. J. Herpetol. 1994. V. 1. № 1. P. 30-36.

112. Kovalenko E.E., Kovalenko Ju.I. Certain pelvic and sacral anomalies in Anura // Russ. J. Herpetol. 1996. V.3. № 2. P. 172-177.

113. Kovalenko E. E. and Kruzhkova Yu. I. The structure of postcranial skeleton in Xenopus laevis (Anura: Pipidae) at underdevelopment of pelvic girdle // Russ. J. Herpetol. 2006. V. 13. № 3. P. 181 186.

114. Kovalenko E. E., Malashichev Y. B. Zakres potencjalnej zmiennosci krzyzowej kregoslupa u prymitywnych i wyzej rozwinietych przedsta wicieli Anura // Abstract IY Ogolnopolska Konferencja Herpetologiczna. Krakow. 1996. P. 50-51.

115. Lamb K. J., Lewthwaite J. C., Bastow E. R.s Pitsillides A. A. Defining boundaries during joint cavity formation: going out on a limb // International Journal of Experimental Pathology 2003. V. 84. P. 55-67.

116. Lelkes G. Experiments in vitro on the role of movement in the development of joints // J. Embryol. Exp. Morphol. 1958. V. 6. No. 2. P. 183-186.

117. Lim J. H., Kim D. Y., Bang M. S. Effects of exercise and steroid on skeletal muscle apoptosis in the mdx mouse // Muscle & Nerve. 2004. V. 30. P. 456462.

118. Littlejohn M. J., Roberts J. D., Watson G. F., Davies M. Family Myobatrachidae P. 1-41 in Fauna of Australia. V. 2A. Amphibia and Reptilia, (eds. Glasby C. J., Ross G. J. B., Beesley P. L.). AGPS Press Publication: Canberra. 1993.

119. Lynch J.D. Evlutionary relationships, osteology and zoogeography of leptodactiloid frogs // Univ. Kansas Mus. Nat. Hist. Miscel. Publ. 1971. № 53. P. 1-238.

120. Lynch J. D. The transition from archaic to advanced frogs. P. 133-182 in: Vial J. L. (ed.) Evolutionary biology of the anurans: contemporary research on major problems. University of Missouri Press: Columbia. 1973.

121. Madej Z. Variations in the sacral region of the spine in Bombina bombina (Linnaeus, 1758) and Bombina variegata (Linnaeus, 1758) (Salientia, Discoglossidae) // Fcta. Biol. Cracoviensia. 1965. V. 8. № 2. P. 185-197.

122. Malashichev Y.B., Borkhvardt V.G. On sacral myomeres in embryos of reptiles with fully developed and reduced limbs. Pp. 305-307 in: C.Miaude and R.Guyetant (eds.): Current Studies in Herpetology. Le Bourget du Lac (SEH). 1999.

123. Malashichev Y.B., Borkhvardt V.G. Hypaxial muscles degeneration in the formation of the sacroiliac complex of Amniota // Develop. Growth Differ. 2001. V. 43 (Suppl.). P. S46.

124. Manzano A. S., Barg M. The iliosacral articulation in pseudinae (Anura: Hylidae) //Herpetologica. 2005. V. 61. № 3. P. 259-267.

125. Marsh-Armstrong N., Cai L., Brown D.D. Thyroid hormone controls the development of connections between the spinal cord and limbs during Xenopus laevis metamorphosis I I Dev. Biol. 2004. V. 101. № 1. P. 165-170.

126. Moffat L. A., 1974. The development and adult structure of the vertebral column in the Leiopelma (Amphibia: Anura) // Proc. Linn. Soc. N. S. W. V. 98. №3. P. 142-174.

127. Mookerjee H.K. On the morphology of the vertebral column of Rhacophorus maximus II Curr. Sci. 1932. V. 1. № 6. P. 165-166.

128. Mora O. A, Simoes M. J., Sasso W. S. Ultrastructural aspects of the skeletal striated muscle, macrophages and fibroblasts during the regression of tadpole tails // Rev. Bras. Biol. 1989. V. 49. № 1. P. 285-290.

129. Morgan G.L. Abnormalities in the vertebral column of the common frog // Nature. 1886. V. 35. P. 53.

130. Murray P. D. F., Drachman D. B. The role of movement in the development of joints and related structures: the head and neck in the chick embryo // J. Embryol. Exp. Morphol. 1969. V. 22. № 3. P. 349-371.

131. Myers C. W., Ford L. S. On Atopophrynus a recently described frog wrongly assigned to the Dendrobatidae // American Museum of Natural History. 1986. №2843. P. 1-15.

132. Nakajima K., Yaoita Y. Dual mechanisms governing muscle cell death in tadpole tail during amphibian metamorphosis // Dev. Dyn. 2003. V. 227. № 2. P. 246-255.

133. Nakanishi K., Sudo T., Morishima N. Endoplasmic reticulum stress signaling transmitted by ATF6 mediates apoptosis during muscle development // J. Cell Biol. 2005. V. 169. № 4. P. 555-560

134. Nevo E. Pipid frogs from the early cretaceous of Israel and pipid evolution // Bull. Mus. Comp. Zool. 1968. V. 136. № 8. P. 255-318.

135. Nishikawa A. Induction of cell differentiation and programmed cell death in amphibian metamorphosis // Hum Cell. 1997. V. 10. № 3. P. 167-174. A

136. Nishikawa A, Hayashi H. Isoform transition of contractile protein related to muscle remodeling with an axial gradient during metamorphosis in Xenopus laevis II Dev. Biol. 1994. V. 165. P. 86-94.

137. Nishikawa A, Hayashi H. Spatial, temporal and hormonal regulation of programmed muscle cell death during metamorphosis of the frog Xenopus laevis II Differentiation. 1995. V. 59. № 4. P. 207-214.

138. Nishikawa A., Miyamoto S. Hormonal regulation of larval-to-adult muscle conversion during metamorphosis of Xenopus laevis II Development, Growth and Differentiation. 2001. V. 43. P. 149.

139. Nishikawa A., Murata E., Akita M., Kaneko K., Moriya O., Tomita M., Hayashi H. Roles of macrophages in programmed cell death and remodeling of tail and body muscle of Xenopus laevis during metamorphosis // Histochem. Cell Biol. 1998. V. 109. P. 11-17.

140. Noble G. K. The pectoral girdle of the brachycephalid frogs // Amer. Mus. Novit. 1926. V. 230. P. 1-14.

141. Noble G.K. The biology of the Amphibia. New York-London. 1931. 577 p.

142. O'Reilly J. C., Summers A. P., Ritter D. A. The evolution of the functional role of trunk muscles during locomotion in adult Amphibians // Amer. Zool. 2000. V. 40. P. 123-135.

143. Pawlowska-Indyk A. The effect of temperature during the embryonic development on the morphogenesis of the axial skeleton of Bombina variegata L. // Zool. Polon. 1978. V. 27. fasc. 1. P. 91-107.

144. Pitsillides A. A. Early effects of embryonic movement: 'a shot out of the dark'// J. Anat. 2006. V. 208. P. 417-431.

145. Pretty R., Naitoh T., Wassersug R. J. Metamorphic shortening of the alimentary tract in anuran larvae {Rana catesbeiana) I I Anat. Rec. 1995. V. 242. №3. P. 417-423.

146. Pramuk J. B. Phylogeny of South American Bufo (Anura: Bufonidae) inferred from combined evidence // Zool. J. Linn. Soc. 2006. V. 146. P. 407-452.

147. Pugener L. A, Maglia A. M., Trueb L. Revisiting the contribution of larval characters to ananalysis of phylogenetic relationships of basal anurans. Zoological Journal of the Linnean Society. 2003. V. 139. P. 129-155.

148. Rainer G. Two new treefrog species of the genus Litoria (Anura: Hylidae) from the west of New Guinea // Zoologische Abhandlungen (Dresden) 2004. V. 54. P. 163-175.

149. Ramaswami L.S. The vertebral column of some South Indian frogs // Curr. Sci. 1933. V. l.P. 306-309.

150. Ridewood W.G. On the development of the vertebral column in Pipa and Xenopus II Anat. Anz. 1897. Bd. 13. № 13. P. 359-376.

151. Ridewood W.G. Abnormal sacra in the edible frog {Rana esculenta) and in the common frog {R.temporaria) II Proc. Linn. Soc. London. 1901. V. 114. P. 46-47.

152. Ritland R.M. Studies on the post-cranial morphology of Ascaphus truei. I. Skeleton and spinal nerves // J. Morphol. 1955. V. 97. № 1. P. 119-177.

153. Rocek Z. Taxonomy and distribution of tertiary discoglossids (Anura) of the genus Latonia v. Meyer, 1843 I I Geobios. 1994. V. 27. № 6. P. 717-751.

154. Rocek Z. Larval development in Oligocene palaeobatrachid frogs // Acta Palaeontologica Polonica. 2003. V. 48. № 4. P. 595-607.

155. Rochkova H. and Rocek Z. Development of the pelvis and posterior part of the vertebral column in the Anura // J. Anat. 2005. V. 206. P. 17-35.

156. Rot-Nikcevic I. and Wassersug R. J. Tissue sensitivity to thyroid hormone in athyroid Xenopus laevis larvae // Develop. Growth Differ. 2003. V. 45. P. 321-325.

157. Rot-Nikcevic I. and Wassersug R. J. Arrested development in Xenopus laevis tadpoles: how size constrains metamorphosis // J. Exp. Biol. 2004. V. 207. P. 2133-2145.

158. Rowe I, Coen L, Le Blay K, Le Mevel S, Demeneix BA. Autonomous regulation of muscle fibre fate during metamorphosis in Xenopus tropicalis II Dev. Dyn. 2002. V. 224. № 4. P. 381-390.

159. Ruiz-Carranza P.M., Hernander-Camacho J.I. Osornophryne, genero nuevo de Anfibios Bufonidos de Colombia y Ecuador // Caldasia. 1976. V. 11. № 54. P. 93-148.

160. Ryke R.A.J. The ontogenic development of the somatic musculature of the trunk of the aglossal anuran Xenopus laevis (Daudin) // Acta Zool. 1953. V. 34. P. 1-70.

161. Sahin M., Balcan E. The glycoconjugate changes of apoptotic skeletal muscle tissues in regressing eurasian green toad, Bufo viridis (Amphibia: Anura) tadpole tail II J. Biol. Sc. 2006. V. 6. № 2. P. 294-300.

162. Sasaki F., Watanabe K. Tail muscle hydrolases during metamorphosis of the anuran tadpole. I. Histochemical studies // Histochemistry. 1983. V. 78. № l.P. 11-20.

163. Schreiber A. M., Das B., Huang H., Marsh-Armstrong N., Brown D. D. Diverse developmental programs of Xenopus laevis metamorphosis are

164. Rocek Z. Taxonomy and distribution of tertiary discoglossids (Anura) of the genus Latoniav. Meyer, 1843 // Geobios. 1994. V. 27. № 6. P. 717-751.

165. Rocek Z. Larval development in Oligocene palaeobatrachid frogs // Acta Palaeontologica Polonica. 2003. V. 48. № 4. P. 595-607.

166. Rochkova H. and Rocek Z. Development of the pelvis and posterior part of the vertebral column in the Anura // J. Anat. 2005. V. 206. P. 17-35.

167. Rot-Nikcevic I. and Wassersug R. J. Tissue sensitivity to thyroid hormone in athyroid Xenopus laevis larvae // Develop. Growth Differ. 2003. V. 45. P. 321-325.

168. Rot-Nikcevic I. and Wassersug R. J. Arrested development in Xenopus laevis tadpoles: how size constrains metamorphosis // J. Exp. Biol. 2004. V. 207. P. 2133-2145.

169. Rowe I, Goen L, Le Blay K, Le Mevel S, Demeneix BA. Autonomous regulation of muscle fibre fate during metamorphosis in Xenopus tropicalis II Dev. Dyn. 2002. V. 224. № 4. P. 381-390.

170. Ruiz-Carranza P.M., Hernander-Camacho J.I. Osornophryne, genero nuevo de Anfibios Bufonidos de Colombia y Ecuador // Caldasia. 1976. V. 11. № 54. P. 93-148.

171. Ryke R.A.J. The ontogenic development of the somatic musculature of the trunk of the aglossal anuran Xenopus laevis (Daudin) // Acta Zool. 1953. V. 34. P. 1-70.

172. Sahin M., Balcan E. The glycoconjugate changes of apoptotic skeletal muscle tissues in regressing eurasian green toad, Bufo viridis (Amphibia: Anura) tadpole tail // J. Biol. Sc. 2006. V. 6. № 2. P. 294-300.

173. Sasaki F., Watanabe K. Tail muscle hydrolases during metamorphosis of theanuran tadpole. I. Histochemical studies // Histochemistry. 1983. V. 78. №l.P. 11-20.

174. Schreiber A. M., Das B., Huang H., Marsh-Armstrong N., Brown D. D. Diverse developmental programs of Xenopus laevis metamorphosis areinhibited by a dominant negative thyroid hormone receptor // Dev. Biol. 2001. V. 98. №19. P. 10739-10744.

175. Scott E. A phylogeny of ranid frogs (Anura: Ranoidea: Ranidae), based on a simultaneous analysis of morphological and molecular data // Cladistics. 2005. V. 21. P. 507-574.

176. Sedra PPI. D., Shokralla N. Seven interesting abnormal urostyles of Bufo regularis Reuss // Ceskolov. Morfol. 1958. V. 6. № 1. P. 1-6.

177. Shimizu-Nishikawa K., Shibota Y., Takei A., Kuroda M., Nishikawa A. regulation of specific developmental fates of larval- and adult-type muscles during metamorphosis of the frog Xenopus II Dev. Biol. 2002. V. 251. P. 91-104.

178. Silverstone Ph. A. A revision of the poison-arrow frogs of the genus Dendrobates Wagler II Sci. Bull. Nat. Hist. Mus. Los Angeles Cty. 1975. V. 21. P. 1-55.

179. Smirnov S. V. and Vassilieva A. B. The role of thyroid hormones in skull bone development in the ribbed newt Pleurodeles waltl (Urodela: Salamandridae) II Dokl. Akad. Nauk. 2001. V. 379. № 5. P. 715-717.

180. Smirnov S. V. and Vassilieva A. B. The bony skull of the Siberian salamander Salamandrella keyserlingi (Amphibia: Urodela: Hynobiidae)and the role of thyroid hormones in its development // Dokl. Biol. Sci. 2002. V. 385. P. 387-389.

181. Smirnov S. V. and Vassilieva A. B. Skeletal and dental ontogeny in the smooth newt, Triturus vulgaris (Urodela: Salamandridae): role of thyroid hormone in its regulation // Russ. J. Herpet. 2003. V. 10. № 2. P. 93 110.

182. Smith T. H. and Miller J. B. Distinct myogenic programs of embryonic and fetal mouse muscle cells: expression of the perinatal myosin heavy chain isoform in vitro // Dev. Biol. 1992. V. 149. P. 16-26.

183. Spinar Z.V. Tertiary Frogs from Central Europe. Academia. Prague and D.W. Junk Publ. The Hague. 1972. 286 p.

184. Sullivan G. E. Skeletal abnormalities in chick embryos paralised with decamethonium. // Aus. J. Zool. 1974. V. 22. No. 4. P. 429-438.

185. Tamori Y. and Wakahara M. Conversion of red blood cells (RBCs) from the larval to the adult type during metamorphosis in Xenopus: specific removal of mature larval-type RBCs by apoptosis // Int. J. Dev. Biol. 2000. V. 44. P. 373-380

186. Taylor E.H. Extinct toads and frogs from the Upper Pliocene deposits of Meade County, Kansas // Univ. Kansas Sci. Bull. 1942. V. 28. Is. 2. № 10. P. 199-236.

187. Thirumalachar B., Pillai T.S. On certain abnormalities in the sacrum of Rana hexadactyla II Curr. Sci. 1936. V. 5. P. 304-305.

188. Tihen Y.A. An interesting vertebral anomaly in a toad Bufo cognatus II Herpetologica. 1959. V. 15. № 1. P. 29-30.

189. Trueb L. Phylogenetic relationships of certain neotropical toads with the description of new genus (Anura: Bufonidae) // Contr. Sci. 1971. № 216. P. 1-40.

190. Trueb L. Bones, frogs and evolution // Evolutionary bioligy of the Anurans. Columbia, Missouri. 1973. P. 65-132.

191. Trueb L. Systematic relationships of Neotropical Horned Frogs, genus Hemiphractus (Anura: Hylidae) // Occas. pap. of the Mus. of Nat. Hist. Univ. of Kansas. 1974. № 29. P. 1-60.

192. Trueb L. Osteology and anuran systematics: intrpopulation variation in Hyla lanciformes II System. Zool. 1977. V. 26. № 2. P. 165-184.

193. Trueb L. Leptodactilid frogs of the genus Telmatobius in Ecuador with the description of a new species // Copeia. 1979. V. 4. P. 714-733.

194. Trueb L. Historical constraints and morphological novelties in the evolution of the skeletal system of pipid frogs (Anura:Pipidae) // In: The biology of Xenopus (Edit. Tinsley R.C. and Kobel H.R). London-Oxford. 1996. P. 349377.

195. Trueb L., Henken J., Skeletal development in Xenopus laevis (Anura: Pipidae) II J. Morphol. 1992. № 214. P. 1-41.

196. Trueb L., Massemin D. The osteology and relationships of Pipa aspera (Amphibia: Anura: Pipidae), with notes on its natural history in French Guiana//Amphibia-Reptilia. 2000. V. 22. P. 33-54.

197. Trueb L., Pugener L. A., Maglia A. M. Ontogeny of the bizarre: an osteological description of Pipa pipa (Anura: Pipidae), with an account of skeletal development in the species // J. Morphol. 2000. V. 243. P. 75-104.

198. Tyler M.I., Davies M., Martin A.A. Biology, morphology and distribution of the Australian Fossprial frog Cyclorana eriptotis (Anura: Hylidae) // Copeia. 1982. №2. P. 260-264.

199. Van Dijk D. E. On the cloacal region of Anura in particular of larval Ascaphus //Ann. Univ. Stell. 1959. V. 35. Sec. A. № 4. P. 169-249.

200. Walker J. M. Musculoskeletal development: a rewiew // Phys. Ther. 1991. V. 71. P. 878-889.

201. Wang Q., Green R. P., Zhao G., Ornitz D. M. Differential regulation of endochondral bone growth and joint development by FGFR1 and FGFR3 tyrosine kinase domains // Development. 2001. V. 128. P. 3867-3876.

202. Wassersug R. J. A. Procedure for differential staining of cartilage and bone in whole formalin-fixed vertebrates // Stain Techn. 1976. V. 51. № 2. P. 131-134.

203. Watanabe K, Horiguchi T, Sasaki F. Scanning electron microscopy of macrophages in the tail musculature of the metamorphosing anuran tadpole, Ranajaponica II Cell Tissue Res. 1985. V. 241. № 3. P. 545-550.

204. Wiens I.I. Ontogeny of the skeleton of Spea bombifrons (Anura: Pelobatidae) //J. Morphol. 1989. V. 202. № 1. P. 29-51.

205. Yoshizato K. Biochemistry and cell biology of amphibian metamorphosis with a special emphasis on the mechanism of removal of larval organs // Int. Rev. Cytol. 1989. V. 119. P. 97-149

206. Yoshizato K. Death and Transformation of Larval Cells during Metamorphosis of Anura // Develop. Growth & Differ. 1992. V. 34. № 6. P. 607-612.

207. Yuan W., Keqin G., Xing X. Early evolution of discoglossid frogs: new evidence from the Mesozoic of China // Naturwissenschaften. 2000. V. 87. P. 417—420.

208. Zweifel R.G. Two pelobatid frogs from the tertiary of North America and their relationships to fossil and resent forms // Amer. Mus. Novitates. 1956. V. 1762. P. 1-45.