Биотехнические основы содержания камчатского краба Paralithodes camtschaticus и американского омара Homarus americanus в установках с замкнутым водоиспользованием тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 00.00.00, кандидат наук Тырин, Дмитрий Владимирович

• Тырин, Дмитрий Владимирович
• кандидат наук
• 2011

Оглавление диссертации кандидат наук Тырин, Дмитрий Владимирович

ОГЛАВЛЕНИЕ

Введение

Глава I. Материалы и методы исследований

1.1. Общая схема и объём исследований

1. 2. Определение уровней выделения аммония и потребления кислорода

холодноводными морскими ракообразными

1.3. Создание системы биологической очистки воды в УЗВ

1. 4. Биотехнические исследования содержания камчатского краба

Глава II. Морские ракообразные отряда Оесарос1а как объекты марикультуры

2. 1. Биология и особенности содержания объектов исследования в УЗВ..39 2. 2. Биологическая очистка воды в морских холодноводных УЗВ

Глава III. Выделение аммония и потребление кислорода морскими

холодноводными ракообразными

3. 1. Выделение аммония камчатским крабом и американским омаром

3. 2. Потребление кислорода объектами исследования

Глава IV. Биологическая очистка воды в холодноводных морских УЗВ

4. 1. Продолжительность стартового периода без гидробионтов

4. 2. Продолжительность стартового периода с гидробионтами

Глава V. Биотехника содержания камчатского краба в УЗВ

Глава VI. Проектирование УЗВ для содержания объектов исследования..!

Выводы

Рекомендации производству

Благодарности. Список публикаций по теме диссертации

Список использованной литературы

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Биотехнические основы содержания камчатского краба Paralithodes camtschaticus и американского омара Homarus americanus в установках с замкнутым водоиспользованием»

ВВЕДЕНИЕ

В 2000-е годы аквакультура стала одним из наиболее развивающихся направлений получения пищевой продукции. В 2009 году производство продукции аквакультуры по данным FAO Yearbook 2010 возросло до 55,1 млн тонн, что составило 37,97% от объёма вылова гидробионтов (145,1 млн тонн без водных растений), из которых 20,1 млн тонн приходится- на марикультуру. Доля ракообразных в производстве мировой аквакультуры составила 23,1%, в том числе - 700000 тонн морских видов. В России, как во внутренних пресноводных водоёмах, так и в морях, в 2010 году было добыто 3499000 тонн гидробионтов, из которых 59000 тонн приходится на ракообразных.

Одним из перспективных направлений в аквакультуре является применение установок с замкнутым водоиспользованием (УЗВ) для содержания ракообразных перед поставкой потребителям в живом виде. Это связано с уменьшением расходов на транспортировку и её продолжительности, обеспечением круглогодичного предложения живых ракообразных, что в условиях мегаполисов может обеспечить только УЗВ.

Камчатский краб и американский омар круглогодично пользуются стабильным спросом у потребителей. Ажиотажный спрос наблюдается и на продукцию из мяса ракообразных, имеющего деликатесные свойства. Удовлетворение возрастающего спроса на эти объекты требует расширения работ по их содержанию и выращиванию в искусственных условиях. Важная роль камчатского краба в экономике рыбного хозяйства России и других государств определяет потребность в его культивировании с целью пополнения естественных запасов (выращивание до жизнестойкой молоди), повышения качества продукции (доращивание) и предпродажной передержки. Современные технологии содержания ракообразных в

искусственных условиях должны быть основаны на создании оптимальных условий, нарушенных или отсутствующих в природе. Интенсивная технология содержания ценных промысловых видов вне регионов их промысла предусматривает использование бассейновых комплексов с проточным или замкнутым циклом водоиспользования. Последняя технология является технически более сложной и финансово достаточно затратной, но обеспечивает:

- создание оптимальных условий содержания гидробионтов, полный контроль за ними и производством в целом;

- независимость производственного процесса от условий внешней среды;

- экономию воды и земельных ресурсов, то есть высокую концентрацию производства;

- возможность механизации и автоматизации производства;

- экологическую чистоту и контроль качества получаемой продукции и производственного процесса.

Важнейшая предпосылка для развития марикультуры ракообразных в России - депрессивное состояние природных популяций морских промысловых видов, требующее пополнения запасов искусственными методами (Кузьмин, 2000; Камчатский краб в Баренцевом море..., 2001; Клитин, 2003; Характеристика состояния водных биологических ресурсов...,2011).

Другой ценный и уже традиционный в мире объект промысла и марикультуры из отряда Бесароск - американский омар. Только в Канаде его ловят в 38 морских районах репеек, 2006). Вылов по данным Б АО увеличивался с 15000 тонн в 1972 году до 52000 тонн в 2002 году. Промысловый пресс на популяцию омара в последние годы и усиливающееся загрязнение прибрежных вод индустриально развитого атлантического побережья Канады и США определяют актуальность культивирования и этого вида отряда Бесарос1а, однако, с точки зрения

потребления в России, более актуально развитие технологии предпродажного содержания этого ценного вида в УЗВ.

В УЗВ возможно создание практически идентичной естественной среды обитания для гидробионтов. Основой любых УЗВ является система регенерации воды. Низкая температура и высокая солёность воды, необходимые для камчатского краба и американского омара, являются основным препятствием для переноса богатого опыта содержания пресноводных тепловодных гидробионтов, накопленного в мире, на их содержание. Объектами содержания в УЗВ являются и многие другие виды морских холодноводных ракообразных (рис. 1), причём некоторые из них -перспективные объекты культивирования.

А)

В)

Рис. 1. Некоторые морские декаподы (слева направо): А) крабоид Paralithodes brevipes и краб Cancer pagurus, Б) лангуст Panulirus

argus (http://www.naturfoto-cz.de/langusta-foto-2258.html) и лангустино Nephrops sp., В) европейский омар Homarus gammarus

Цель данной работы - установить основные биотехнические параметры содержания морских холодноводных ракообразных в условиях УЗВ. В соответствии с этим необходимо было решить следующие задачи.

1. Определить количество выделяемого общего аммония и потребляемого растворённого кислорода объектами исследования за единицу времени на 1 кг живой массы (ЖМ) при разной температуре воды.

2. Выявить особенности динамики содержания азотистых соединений (аммония, нитритов, нитратов) в воде при искусственном воспроизводстве камчатского краба.

3. Оценить влияние количества задаваемого камчатскому крабу корма на качество воды при разных температурах.

4. Изучить возможность интенсификации стартового периода биологической очистки воды и определить лучший наполнитель для биофильтров в условиях холодной морской воды.

5. На основе полученных данных сформулировать рекомендации по созданию УЗВ для содержания объектов исследования.

Положения, выносимые на защиту.

1. Определены параметры обмена веществ камчатского краба и американского омара и исследована динамика содержания азотистых соединений в воде при их содержании в УЗВ, что позволяет правильно спроектировать системы жизнеобеспечения.

2. Определён оптимальный наполнитель для биофильтра и установлено, что внесение источника азота в сочетании с постепенным понижением температуры воды обеспечивает интенсификацию стартового периода биологической очистки холодной морской воды.

Научная новизна. Определены величины выделения аммония и потребления кислорода у камчатского краба и американского омара при разной температуре воды. Впервые проведены комплексные исследования по изучению процессов биологической очистки холодной морской воды в УЗВ. Сформулированы основные биотехнические элементы содержания камчатского краба и американского омара в УЗВ.

ГЛАВА I. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ

1. Общая схема и объём исследований

Экспериментальные работы проводили в период с 2005 по 2010 годы в аквариальной лаборатории воспроизводства ракообразных ФГУП «ВНИРО» (с 2011 года - онтогенеза и методов восстановления численности ракообразных), в ООО «Водный Мир» и ООО «ЬаМагёе» (базы предпродажного содержания), в бассейновом комплексе в посёлке Ура-Губа (Мурманская область), а также в ООО «Морской аквариум» (Москва) (рис. 2). А)

В)

О

Г)

Рис. 2. Места проведения экспериментальных работ: А) аквариальная лаборатории, Б) бассейновый комплекс в п. Ура-Губа, В) ООО «Водный Мир», Г) ООО «ЬаМагёе»

Объектом исследований являлись камчатский краб (личинки, постличинки, молодь, взрослые особи) и американский омар (взрослые особи).

Проводили мониторинг водной среды: ежедневно или с интервалами в несколько суток. Измеряли следующие показатели: температура воды, солёность, концентрации растворённого кислорода и азотистых соединений, рН, скорость водообмена. Эти показатели регистрировали с помощью портативных мультипараметровых зондов YSI-85 и YSI-556 (содержание кислорода, солёность и рН, производство «Yellow Springs Instruments», США) и рН-211 (рН, производство «Наппа Instruments», США). Концентрации аммония, нитритов и нитратов определяли

колориметрированием проб на фотоэлектрическом фотометре КФК-3-01 (Россия) со спектральным диапазоном от 315 до 990 нм. Аммонийный азот определяли методом Solorzano, 1969 («Руководство по гидрохимическому анализу...», 2003). Оптическую плотность комплекса, образовавшегося при реакции аммонийного азота с гипохлоритом и фенолом, измеряли при длине волны 630 нм. Анализ воды на содержание нитритов проводили методом Bendschneider, Robinson (1952) с использованием сульфаниламида и N-(1-нафтил)-этилендиамин-дигидрохлорида; интенсивность окрашивания определяли при длине волны 543 нм. Нитраты восстанавливали до нитритов на омеднённых кадмиевых колонках с последующим определением нитритов тем же методом. Также использовали колориметрические аквариумные тесты на аммоний, нитриты и нитраты производства «Tetra» (ФРГ) и «Red Sea» (Израиль).

В экспериментах, проведённых в г. Москве, использовали искусственную 1\торскую воду, приготовленную путём разведения смеси морских солей «BioSea MarineMix» (AquaCrañ, США), «Corallife» (Energy Savers Unlimited, США) или «Морской Аквариум» (Россия-ФРГ) в водопроводной воде, пропущенной через мембранную установку обратноосмотической очистки воды «Осмо СМВ Рона-250» (Россия). Поддерживали солёность 30-35%о.

Схема исследований представлена на рисунке 3, объём работ - в таблице 1, а их характеристика - в таблице 2. Результаты исследований обработаны статистически: методом квадратов Пирсона, вычисления коэффициента Стьюдента и коэффициента корреляции.

Анализ биологии объектов исследования

І

Экспериментальные работы

|

Изучение параметров содержания гидробионтов

Камчатский краб

Выделение аммония

Потребление кислорода

Величина рациона кормления

Выращивание личинок и содержание молоди

Аліериканский омар

Выделение аммония

Потребление кислорода

Запуск системы биологической очистки воды

Без

гидробионтов

Влияние температуры воды

Влияние типа субстрата биофильтра

Разработка рекомендаций по созданию УЗВ для объектов _исследования_

Рис. 3. Общая схема исследований

гидробионтами

Без кормления

С кормлением

Таблица 1

Объём выполненных работ

Наименование работ Количество

Измерение Т,°С; 8,%о; рН; скорости водообмена; концентрации кислорода, раз 1025

Определение концентрации аммония, нитритов и нитратов, проб 395

Взвешивание взрослых гидробионтов, экз. 354

Измерение взрослых гидробионтов, экз. 281

Кормление гидробионтов, экз. 241 взрослых, около 150000 зоэа и 500 ювенальных особей

Утилизация погибших взрослых гидробионтов, экз. 165

Использовано, шт.: внешних биофильтров ёмкостей для гидробионтов 19 (с 4 типами наполнителя) 48 (9 типов)

Таблица 2

Характеристика экспериментальных работ

Эксперимент Место проведения Варианты Условия экспериментов и исследуемые параметры Количество и тип емкостей, шт. Количество и вид гидробионт ов, экз. Продол жительн ость, сутки

1 2 3 4 5 6 7

1. Определение уровней выделения аммония и потребления кислорода холодноводными морскими ракообразными

Выделение аммония камчатским крабом и американским омаром ООО «ЬаМагсе» Средние температуры воды: 6,5°С (оба вида), 9,2°С (камчатский краб) и 12,2°С (оба вида) Измеряли начальную и конечную концентрации аммония 1 акватрон без биофильтра 20 камчатских крабов, 20 американск их омаров 40

Потребление растворённого кислорода камчатским крабом и американским омаром ООО «ЬаМагёе» Средние температуры воды: б,4°С и 12,2°С (камчатский краб), в,ТС и 12,3°С (американский омар) Измеряли концентрацию кислорода в течение 2 часов каждые 10 минут 1 термоконтей нер 20 камчатских крабов, 20 американск их омаров 40

2. Создание системы биологической очистки воды в холодноводных морских УЗВ

Продолжительность стартового периода без гидробиоптов

Влияние понижения температуры воды при внесении химического источника азотистых соединений ООО «Морской аквариум» Снижение температуры воды с 21 до 12°С Субстрат - «биошары», температуру, вносили культуру бактерий «СогаШГе» и 10%-ный раствор аммиака. Измеряли концентрации азотистых соединений 1 акватрон нет 50

1 2 3 4 5 6 7

Влияние типа субстрата при понижении температуры воды и внесении органического источника азотистых соединений ФГУП «ВНИРО» Субстраты: «ЕНР1-МесЬ», «биошары», керамзит Температуру понижали с 19 до 6°С, вносили комбикорм «Tetra Wafer». Измеряли концентрации азотистых соединений 3 системы в термостатир ующей ёмкости нет 97

Влияние типа субстрата при постоянной температуре воды и внесении химического источника азотистых соединений ФГУП «ВНИРО» 9 вариантов + 3 контроля. Субстраты: «биошары», коралловая крошка, керамзит. Диапазоны температур воды: 6-7, 9-10,12-13°С Вносили культуру бактерий «Preis Aquaristik Baktoplan» и 10%-ный р-р аммиака. Измеряли концентрации азотистых соединений 12 установок вЗ термостатир ующих емкостях нет 108

Продолжительность стартового периода с гидробиошпами

Влияние наличия гидробионтов и их кормления Бассейнов ый комплекс в п.У ра-Губа Постоянная температура воды 6-7°С. Субстрат - «биошары», культура бактерий - «Hagen Cykle». Измеряли концентрации азотистых соединений. Корм - сельдь 14 бассейнов (2м3) 212 камчатских крабов 44

Влияние наличия гидробионтов ООО «Водный Мир» Вариант 1. Посадка 50% гидробионтов сразу и 50% - на 2 этапе Вариант 2. Посадка 100% гидробионтов на 2 этапе Субстрат - коралловая крошка. Постоянная температура воды 69°С. Измеряли концентрации азотистых соединений 2 бассейна (0,6м3) 33 американск их омаров 114

1 2 3 4 5 6 7

3. Биотехнические исследования содержания камчатского краба в УЗВ

Влияние величины рациона камчатского краба на уровень накопления аммонийного азота в воде ООО «Водный Мир» 0,5% и 1% от ЖМ Температура воды: 1 этап- 6,5 и 4,5°С, 2 этап -10,3 и 9,7 °С. Измеряли концентрации азотистых соединений. Корм - кальмар 2 бассейна (0,6м3) 4 камчатских краба 22

Содержание самцов и самок при искусственном воспроизводстве ФГУП «ВНИРО» Содержание икряных самок и самцов Измеряли концентрации азотистых соединений. Корм - кальмар или рыба 3 бассейна (0,6 м3), 2 акватрона, рыбоводный лоток 25 190

Выращивание и содержание личинок и молоди камчатского краба при искусственном воспроизводстве ФГУП «ВНИРО» Плотность посадки зоэа: 50 и 75 экз., ювенильные стадии - мелкими группами и индивидуально Измеряли концентрации азотистых соединений. Корм - науплии артемии 4 акватрона для зоэа, аквариум с субстратами для глаукотоэ, 2 акватрона с индивидуаль ными емкостями с субстратом для молоди Около 150000 зоэа, 2000 глаукотое, 500 ювенальных особей 252

2. Определение уровней выделения аммония и потребления кислорода холодноводными морскими ракообразными

2. 1. Выделение аммония камчатским крабом и американским омаром

Работу проводили на базе предпродажной передержки ООО «ЬаМагёе» (Москва). Для эксперимента отобрали 30 самцов камчатского краба и 20 американских омаров (по 10 экз. на этап). Исследования проводили при 3 средних температурах воды: 6,5°С, 9,2°С и 12,2°С. До посадки в экспериментальный акватрон гидробионтов содержали в общей

о

рециркуляционной установке с плотностью посадки 50-60 кг/м камчатского краба и 60-75 кг/м3 - американского омара (рис. 3). Продолжительность содержания камчатских крабов и американских омаров в общей УЗВ после вылова из естественной среды обитания и транспортировки составляла не менее 2 суток.

Рис. 3. Установка, используемая ООО «ЬаМагёе» для предпродажного

содержания гидробионтов

Исследования проводили в акватроне (рис. 4) без блока очистки воды, с проточным холодильником и циркуляционным насосом (средний расход воды - 410,3 л/ч). Акватрон перед посадкой каждой особи промывали пресной, а затем заполняли искусственной морской водой в объёме 150 л, приготовленной из водопроводной воды и сухой смеси солей производства ООО «Морской Аквариум». При этом отбирали пробу воды для определения исходного содержания аммония.

Рис. 4. Акватрон с объектами исследования

Каждую особь содержали в акватроне одни сутки без кормления. Перед посадкой гидробионтов взвешивали, а у камчатского краба также измеряли ширину карапакса. По истечении суток особь возвращали в общую рециркуляционную установку, отбирали пробу воды из акватрона, вновь заливали приготовленную искусственную морскую воду и сажали следующую особь.

Суточное удельное выделение общего аммония вычислялось путём умножения величины прироста концентрации общего аммония на объём воды и деления полученного результата на ЖМ животного.

2. 2. Потребление кислорода камчатским крабом и американским омаром

Эксперимент проводили на базе ООО «ЬаМагёе» (Москва). Для этого отобрали по 20 самцов каждого вида, которых содержали при средних температурах воды 6,4°С и 12,2°С для камчатского краба и 6,7°С и 12,3°С для американского омара. Содержание кислорода измеряли каждые 10 минут в течение 2 часов для каждой особи. До посадки в экспериментальную установку (термоконтейнер с циркуляционным насосом, рис. 5) гидробионтов содержали в общей рециркуляционной установке. Общая продолжительность содержания в УЗВ камчатского краба и американского омара после вылова из естественной среды составляла не менее 2 суток.

Рис. 5. Методика эксперимента (сверху) и гидробионты в установке (снизу)

Термоконтейнер заполняли 50 л искусственной морской воды солёностью 30-32%о, приготовленной из водопроводной воды и сухой смеси солей производства ООО «Морской Аквариум». На поверхность воды помещали полиэтиленовую плёнку во избежание диффузии кислорода.

3. Создание системы биологической очистки воды в УЗВ

В экспериментах по исследованию стартового периода биологической очистки в качестве источников азотистых соединений использовали следующие вещества.

1. 10%-ный водный раствор аммиака (нашатырный спирт).

2. Сухой комбикорм для аквариумных рыб и ракообразных «Tetra Wafer-Mix mit 1,5% Spirulina» (Германия) (табл. 3).

10%-ный водный раствор нашатырного спирта является более оптимальным химическим индикатором готовности нитрифицирующего биофильтра к повышенным нагрузкам по загрязнениям, чем соли аммония, так как более насыщен азотом (40% по молярной массе в форме NH4OH, сернокислый аммоний (NH4)2S04 - 21%, хлористый аммоний NH4CL - 26%) и не содержит углерод, используемый бактериями для денитрификации, как мочевина (NH^bCO (46% азота, но 20% углерода).

Таблица 3

Состав корма «Tetra Wafer-Mix»

Компонент Содержание, % Компонент Содержание*

Белки 45 Витамин Е 190 мг/кг

Жиры 6 Витамин А 28460 МЕ/кг

Углеводы 5 Витамин D3 3 500 МЕ/кг

Зола 11 Ь-аскорбил-2- 130 мг/кг

Спирулина 2 фосфат

Вода 9

* ME - международные единицы

Вносили препараты бактериальных культур «Hagen Cykle» (Германия), «Corallife ВАС-ЗООМ» (США) и совместного производства ООО «Морской аквариум» и «Preis Aquaristik» (Германия). В качестве наполнителей для биофильтров исследовали различные типы субстратов, представленные в таблице 4. Субстраты дезинфицировали гипохлоритом натрия, а затем промывали под проточной водопроводной водой в течение не менее 12 часов, кипятили и высушивали.

Таблица 4

Наполнители биофильтров, испытанные в ходе работ

Субстрат, производитель Описание Размеры частиц, мм Расчётная площадь поверхности на объём, м2/м3

«Биошары», Китай Пластиковые «ежи» 22x26 303,45

«ЕЬенп ЕНИ-МесИ», ФРГ Полый керамический цилиндр 12x11 699

Керамзит, Московская область Округлые или продолговатые гранулы 10-20 371,88 (форма принята за шар)

Коралловая крошка, ООО «Бионике» Остатки кораллов и моллюсков Не поддаётся подсчёту

3. 1. Влияние понижения температуры воды и внесения химического источника азотистых соединений на продолжительность стартового периода

Эксперимент проводился в ООО «Морской аквариум». Для проведения стартового периода биологической очистки использовали акватрон производства «Тесо» (Италия) объёмом 265 л (рис. 6). Объём очистного отсека составлял 22,3% от общего.

Механический фильтр _(синтепон)_

«Биошары»

Насос

Холодильник

Рис. 6. Общий вид (сверху) и схема акватрона (снизу, стрелками обозначен

ток воды)

Насыщение воды кислородом поддерживали на уровне 90-100%, окислительно-восстановительный потенциал - 350 мВ и рН 8,1.

Заполненный водопроводной водой акватрон оставили на 2 суток для отстаивания при включённой циркуляции. На 3 сутки в воду внесли смесь солей «СогаШГе» (США), а на следующие сутки - бактериальную культуру «Сога1^е ВАС-300М» (1 упаковка или 60 мл согласно инструкции производителя) и 13 мл 10%-го раствора аммиака (нашатырный спирт). Такая концентрация была выбрана для создания резерва окислительной мощности будущего биоценоза биофильтра. За период эксперимента этот реагент

вносили в том же количестве ещё 4 раза (на 23, 28, 35, 40 сутки) - при резком понижении концентрации аммония. Одновременно с этим производили плавное понижение температуры воды (с 21 до 12°С).

Ежедневно проводили контроль за содержанием аммония, нитритов и нитратов в воде с помощью капельных колориметрических тестов фирмы «Tetra» (США). Продолжительность эксперимента составила 50 суток.

3. 2. Влияние типа субстрата на продолжительность стартового периода при понижении температуры воды и внесении органического источника азотистых соединений

Эксперимент проводили в аквариальной лаборатории в течение 97 суток. Исследовали 3 типа наполнителя для биофильтра (рис. 7).

1

2

З

Рис. 7. Испытанные наполнители: 1 - керамические цилиндры «Eheim EHFI-

Mech», 2 - пластиковые «биошары», 3 - керамзит фракции 10-20 мм.

Запуск биофильтров производили с добавлением в качестве источника азотистых соединений сухого комбикорма для аквариумных рыб и ракообразных «Tetra Wafer Міх». Стартовый период биологической очистки воды изучали при двух концентрациях аммония в системах: 0,3 мг/л (установки № 1 и № 3) и 0,6 мг/л (установка № 2), что выше ПДК для длительного содержания взрослых особей камчатского краба. Этим обеспечивали имитацию посадки достаточно большой биомассы гидробионтов. Порции корма массой 1,5 г вносили по мере существенного снижения концентрации аммония в воде (в установку № 1 - на 7 и 55 сутки опыта; в установку № 2 - на 7, 55 и 87; в установку № 3 - на 7, 20, 30, 55 и 87 сутки).

Температуру воды понижали поэтапно с 19 до 6-8°С в течение 50 суток (рис. 8).

т-1-1-1-г

О 10 20 30 40 50 60

70

і-1-1

80 90 100

Продолжительность эксперимента, сутки

Рис. 8. Температура воды в установках

Экспериментальная система (рис. 9) состояла из холодильника «AquaMedic Titan-15 00» (ФРГ, на рисунке не показан), пластиковой ёмкости-термостата (1), трёх стеклянных аквариумов (2), трёх биофильтров из 5-литровых пластиковых емкостей с субстратами (3.1, 3.2, 3.3), четырёх помп: 3 - «Tunze 210.04» (Германия, находились в емкостях 3), 1 - «AquaClear 3000» (Италия, 4) и компрессора-аэратора «Techno Takatsuki Hiblow НР-80» (Япония, на рисунке не виден). Ёмкости с субстратами на время эксперимента накрывали полиэтиленовой плёнкой.

Рис. 9. Общий вид системы

Объём наполнителя во всех установках составлял 3 л, высота его слоя -6,5 см. Объём воды в установках: № 1 и № 3 - 4,5 л, № 2 - 9 л. Скорость водообмена в системах измеряли объёмным способом: в период эксперимента он составил 8,8-10,3 л/мин. Содержание растворённого кислорода в установках за период эксперимента составляло: № 1 - 11,13 мг/л, №2-11,56 мг/л, № 3 - 10,98 мг/л. рН воды колебался в диапазоне 7,78 - 8,14.

Регулярный мониторинг включал следующие операции: гидрохимический анализ воды; измерение массы вносимого корма; добавление воды с аналогичными исходными показателями для компенсации взятых на анализ проб и испарения.

3. 3. Влияние типа субстрата биофильтра на продолжительность стартового периода биологической очистки при постоянной температуре воды

Эксперимент проводили в аквариальной лаборатории. Опытная система представлена на рисунке 10.

1 2 3 10

4 $ 6 11

Рис. 10. Общий вид системы и схема эксперимента: 1, 4, 7 - «биошары»; 2, 5, 8 - коралловая крошка; 3, 6, 9 - керамзит; 10, 11, 12 -контроль; Н - насосы; XI-3 - проточные охладители

Исследовали 3 типа субстратов (рис. 11):

- пластиковые «биошары» - в установках № 1,4, 7;

- коралловую крошку фракции 10-20 мм - № 2, 5, 8;

- керамзит фракции 10-20 мм - № 3, 6, 9.

В контрольных установках (10-12) наполнителя не было, но в них проводили все аналогичные экспериментальным установкам процедуры.

В течение эксперимента поддерживалось 3 диапазона температур воды: 6-7°С, 9-10°С и 12-13°С. Продолжительность эксперимента составила 108 суток.

3

Рис. 11. Испытанные наполнители: 1 - пластиковые «биошары», 2 -

коралловая крошка, 3- керамзит

Каждая группа установок состояла из проточного охладителя «НаПеа НС-500ВН» (Китай), акрилового аквариума с пресной водой для термостатирования, четырёх пластиковых емкостей, насоса «ЕЬе1ш-2215» (Германия). Пластиковая ёмкость (рис. 12) с габаритами 280x220x510 мм (общий объём - 24,7 л) состояла из большого отсека и отсека для наполнителя. В большем отсеке была установлена циркуляционная помпа, которая качала воду из него в отсек для наполнителя через отверстие в разделяющей перегородке. Обратно вода поступала через верх перегородки, благодаря её меньшей по сравнению с общей высотой. Объём наполнителя во

всех емкостях составлял 5 л, объём воды - 22 л (на начало эксперимента). Ёмкости закрывали крышками из поликарбоната.

Рис. 12. Экспериментальная ёмкость (вид сверху и спереди)

Проточность в емкостях измеряли объёмным способом и поддерживали на уровне 480 л/ч. Содержание растворённого кислорода за период эксперимента колебалось в пределах 9-11 мг/л. Объём отбираемых 2 раза в неделю проб воды не превышал 200 мл.

Запуск биофильтров проводили с помощью внесения 10%-ного раствора аммиака (нашатырного спирта) на 2 сутки эксперимента в качестве источника азотистых соединений. Также на 1, 3 и 10 сутки (по инструкции производителя) была внесена культура бактерий «Preis Aquaristik Baktoplan» («Морской аквариум», Россия-Германия) в количестве 6,6 мл.

3. 4. Влияние наличия гидробионтов и их кормления на продолжительность стартового периода

Эксперимент проводили в бассейновом комплексе с замкнутой системой водоиспользования в п. Ура-Губа. В течение 44 суток наблюдали процессы нитрификации в УЗВ с новым биофильтром (наполнитель - «биошары») и с

212 камчатскими крабами общей живой массой 365,1 кг (средняя ширина карапакса - 146 мм, средняя масса - 1769 г, средняя наполненность конечностей - 86%). Крабов завозили 4 раза: на 5, 11, 14 и 17 сутки и

Список литературы диссертационного исследования кандидат наук Тырин, Дмитрий Владимирович, 2011 год

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1. Аболмасова Г.И., 1969; Интенсивность дыхания краба-водолюба. // Гидробиологический.журнал, т. 5, №4, с. 114-117.

2. Алекин O.A., 1966. Химия океана. Л.

3. Бардач Дж., Ритер Дж., Макларни У., 1978. Аквакультура: разведение и выращивание пресноводных и морских организмов. Перевод с англ. яз. М., Пищевая промышленность, с. 212-251.

4. Башкатов В.Ф., Максименко В.И., Морозов Г.Г., 1986. К вопросу выращивания рыб в установках с замкнутой системой, водоснабжения. // Технические средства марикультуры. М., ВНИРО.

5. Беренбойм Б.И., 2001. Состояние запасов и перспективы рационального использования промысловых беспозвоночных Баренцева моря; // Материалы отчётной сессии учёного совета ПИНРО, посвящённой 80-летию института. Мурманск, ПИНРО, с. 69-72.

6: Борисов P.P., Ковачева Н.П., 2005. Эксперименты по содержанию мальков камчатского краба в искусственных, условиях. // Материалы 2-й Международной конференции, «Морские: прибрежные- экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки». М., ВНИРО.

7. Борисов P.P., Эпельбаум А.Б., Кряхова Н.В;, Ковачева HJL, 2005. Каннибализм у камчатского краба на ранних стадиях развития при выращивании в искусственных условиях. // Материалы 2-й, Международной конференции «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки». М., ВНИРО.

8. Ведемейер Г.А., Мейер Ф.П., Смит Лц 1981. Стресс и болезни рыб. М;, «Лёгкая промышленность», 128 с.

9. Верещагин Г.В., 1990. Об ускорении созревания биофильтров в морском аквариуме с системой оборотного водоснабжения. // Сб. научн. тр.

ВНИРО «Актуальные проблемы рыбохозяйств. науки в творчестве молодых учёных». М.

10. Винберг Г.Г., 1950. Интенсивность обмена и размеры ракообразных. // Журнал общей биологии, изд-во АН СССР, M.-JL, том 11.

11. Виноградов Л.Г., 1941. Камчатский краб. Владивосток, ТИНРО.

12. Галкин Ю.И., 1982. Изменение гидрологического режима, естественное воспроизводство и культивирование камчатского краба у Западной Камчатки. // Сб. «Фауна и гидробиология шельфовых зон Тихого Океана». Материалы 14 Тихоокеанского научного конгресса, секция «Морская биология», вып. 4. Владивосток, с. 29-34.

13. Григорьева Н.И., Федосеев В.А., 2000. О воспроизводстве камчатского краба в южном Приморье. // Вестник ДВО РАН, № 1, с. 68-73.

14. Гусев Е.Е. Гипергалинная аквакультура. М., Агропромиздат, 1990.160 с.

15. Желтоножко О.В. и В.В., Левин B.C., 2000. Отработка технологии получения личинок для восстановления численности камчатского краба Paralithodes camtschaticus на шельфе восточной Камчатки. // Оптимизация использования морских биоресурсов и комплексное управление прибрежной зоной Баренцева моря. Тез. докладов регион. Семинара, посвящённого 45-летию Первой научной сессии Мурманской Биолог. Станции, 30.11.1999. Мурманск, с. 26-28.

16. Жигин A.B., 2004. Пути и методы интенсификации выращивания объектов аквакультуры в установках с замкнутым водоиспользованием (УЗВ). Диссертация на присвоение уч. степени д.с.-х.н., М., 331 с.

17. Жигин A.B., Ковачева Н.П., 2005. Перспективы создания технологии искусственного разведения камчатского краба. // Мат. науч.-практ. конф. «Зоокультура и биологические ресурсы». М., КМК.

18. Задоенко И.Н., Лейс O.A., 1980. Плотность посадки камчатского краба при перевозках с целью акклиматизации. // «Рыбное хозяйство», №6, стр. 44-46.

19. Зубкова. H.A., 1964. Опыт содержания камчатского^ краба в аквариуме. // Труды ММБИ," вып. 5(9), с. 105-113.

20. Калинин A.B., Паршин-Чудин A.B., Ковачева Н.П., Лебедев P.O., 2005. Установка с замкнутым циклом водоиспользованшг для культивирования камчатского краба. // Материалы 2-й международной конференции «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки». М., ВНИРО, с. 148-151.

21. Камчатский- краб в Баренцевом море (результаты исследований' ПИНРО в 1993-2000 гг.). Мурманск, ПИНРО, 2001, 198 с.

22. Карпевич А.Ф., 1998. Акклиматизация гидробионтов и научные основы аквакультуры. // Избранные труды, т. 2. М.1, ВНИРО, 870 с.

23. Киселёв А.Ю., 1999. Биологические основы и технологические принципы разведения и выращивания, объектов аквакультуры в установках с замкнутым циклом водообеспечения. Автореф. дисс. на присвоение уч. степени д.б.н. (03:00.10), М., 62 с.

24. Клитин А.К., 2003. Камчатский краб Paralithodes camtschaticus у берегов Сахалина и Курильских островов: биология, распределение и функциональная структура ареала. // Бюллетень журнала «Вопросы рыболовства», вып. 2, М., ФГУП «Нацрыбресурсы», 253 с.

25. Ковачева Н.П., 2000. Воспроизводство камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) с использованием искусственной морской воды в аппаратах типа «акватрон». // Аналит. и реферат, информ. ВНИЭРХ, сер. «Марикультура», вып. 4. М., с. 14-26.

26: Ковачева Н.П., Переладов М.В., 2000. Первые результаты воспроизводства камчатского краба Paralithodes Camtschaticus в искусственной морской воде. // «Марикультура Северо-Запада России».

Тезисы докладов научно-практич. конференции. Мурманск, ПИНРО, 2527.10.2000, с. 23-24.

27. Ковачева Н.П., Переладов М.В., 2001. Биотехнология искусственного воспроизводства камчатского краба Paralithodes camtschaticus в системе с замкнутым циклом водоснабжения. // Мат. международ, научно-практич. конф. «Прибрежное рыболовство XXI век». Южно-Сахалинск, Сахалинское издательство.

28. Ковачева Н.П., 2002. Биотехнология искусственного воспроизводства камчатского краба Paralithodes camtschaticus в системе с замкнутым циклом водоснабжения. // Материалы Международной конференции СахНИРО, Южно-Сахалинск, т. 3, с. 300-308.

29. Ковачева Н.П., Калинин A.B., Жигин A.B., 2002. Предварительные результаты исследований по очистке оборотной морской воды в установках с замкнутым циклом водоиспользования при воспроизводстве и выращивании камчатского краба в искусственных условиях. М., ВНИРО, 5 с.

30. Ковачева Н.П., Эпельбаум А.Б., 2003. Рост камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) на ранних стадиях онтогенеза- в искусственных условиях и в естественной среде. // Донные экосистемы Баренцева моря: труды ВНИРО. М., ВНИРО, т. 142, с. 135-143.

31. Ковачева Н.П., Борисов P.P., Жигин A.B., Калинин А.В, Эпельбаум А.Б., 2004. Опыт содержания производителей, получения потомства и подращивания молоди камчатского краба в замкнутых системах. // Матер. 2-ой Международ, науч.-практ. конф. «Человек и животные». Астрахань, ИД «Астраханский университет».

32. Ковачева Н.П., Эпельбаум А.Б., Калинин A.B., 2004. Личиночное развитие камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) при искусственном культивировании. // Докл. Международ, научн. семинара «Проблемы репродукции и раннего онтогенеза морских гидробионтов». Мурманск, ММБИ КНЦ РАН.

33. Ковачева Н.П., 2005. Камчатский краб как новый объект марикультуры. // Обзорная информация ВНИЭРХ «Прибрежное рыболовство и аквакультура». М., вып. 1, 32 с.

34. Ковачева Н.П., 2005. Этолого-физиологические особенности камчатского краба при содержании в искусственных условиях. // Изв. ТСХА, №2.

35. Ковачева Н.П., Калинин A.B., Эпельбаум А.Б., Борисов P.P., Лебедев P.O., 2005. Культивирование камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815). Часть 1. Особенности раннего онтогенеза. Бионормативы и рекомендации по искусственному воспроизводству. М., Изд-во ВНИРО, 76 с.

36. Ковачева Н.П., 2008. Аквакультура ракообразных отряда* Decapoda: камчатский краб Paralithodes camtschaticus и гигантская* пресноводная креветка Macrobrachiiim rosenbergii. M., ВНИРО.

37. Ковачева Н.П., Холодкевич C.B., Васильев P.M., Иванов A.B., Загорский И.А., Корниенко Е.Л., 2008. Оценка функционального состояния камчатского краба в режиме реального времени по его кардиоактивности. // «Вопросы рыболовства», т. 9, № 2 (34), М., с. 513-517.

38. Ковачева Н.П., Холодкевич C.B., Васильев^ P.M., Загорский И.А., Иванов A.B., Корниенко Е.Л., 2009. Оценка функционального состояния камчатского краба в условиях марикультуры методом неинвазивного контроля его кардиоактивности в реальном времени. // Владивосток, Известия ТИНРО, т. 157.

39. Кружалина Е.И., Лейс O.A., Овчинникова Т.И., 1984. Разработка методов транспортирования водных организмов. // «Рыбное хозяйство», №4, стр. 75-76.

40. Кузьмин С.А., 2000. Биология, распределение и динамика численности камчатского краба Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) в Баренцевом море. Автореферат диссертации на соискание учёной степени к. б. н., М., 24 с.

41. Куватани Ю., 1989. Культивирование камчатского краба и приморского гребешка в Японии. // Биология моря. М., № 1, с. 66-68, 71.

42. Лавровская Н.Ф., 1979. Выращивание водорослей и беспозвоночных в морских хозяйствах. М., Пищевая промышленность, с. 88-101, 108-111.

43. Левин B.C., 2001. Камчатский краб. Биология, промысел, воспроизводство. СПб, «Ижица».

44. Малютин B.C., Орлов Ю.И., 1965. О нормах посадок водных организмов в канны. Сборник работ по акклиматизации водных организмов. М.

45. Марковцев В.Г., Брегман Ю.Э, Пржеменецкая В.Ф. и др., 1987. Культивирование тихоокеанских беспозвоночных и водорослей. М., Агропромиздат, с. 100-115, 136-161, 166-182.

46. Масленников С.И., 1998. Технология крабового фермерства на акватории дальневосточных морей. // Дальний Восток России: экономика, инвестиции, конъюнктура, № 1, с. 34-38.

47. Матюшкин В.Б., Ушакова М.В., 2002. Особенности личиночного цикла камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) и рака-отшельника (Pagurus pubescens) в фьордовых водах западного Мурмана. // Сб. научных трудов ПИНРО «Биоресурсы и аквакультура в прибрежных районах Баренцева и Белого морей». Мурманск, изд-во ПИНРО, 206 с.

48. Моисеев П.А., Карпевич А.Ф., Романычев О.Д. и др., 1985. Морская аквакультура. Учебник для студентов ВУЗов. М., Агропромиздат, с. 122-126, 135-138, 224-228.

49. Накадзава К., 1912. Изучение камчатского краба о-ва Хоккайдо. // Зоол. журнал, т. 24, с. 1-13.

50. Наумова A.M., Ковачева Н.П., Цухлова А.Ю., Матвеева Е.И., 2005. Патогены и патологии камчатского краба при содержании в искусственных условиях. // Мат. Всеросс. практ. конференции-семинара

«Эпизоотологический мониторинг в аквакультуре: состояние и перспективы». М., ВНИРО.

51. Орлов Ю.И., 1962. О проблеме акклиматизации промысловых крабов в Баренцевом море. // Труды Всесоюзного гидробиологического общества, т. XII, с. 400-409.

52. Орлов Ю.И., 1965. Некоторые сведения о темпе роста молоди камчатского краба и содержании её в аквариумах. // Сб. работ по акклиматизации водных организмов. М., с. 57-67.

53. Орлов Ю.И., 1994. Акклиматизация промысловых крабов в СевероВосточной Атлантике: обоснование и первые результаты. // О. и. ВНИЭРХ, сер. «Аквакультура», вып. 1, с. 55.

54. Орлов Ю.И., 1995. Акклиматизация промысловых крабов: характеристика объектов вселения. // Рыбное хозяйство, сер. «Аквакультура: обзорная информация», вып. 4. М., с. 1-40.

55. Павлов В.Я., 2003. Жизнеописание краба камчатского РагаШкойез сатгзскаисш (ТПеБШЗ, 1885). М., «Москва», 110 с.

56. Проскуренко И.В., 2003. Замкнутые рыбоводные установки. М., Изд-во ВНИРО, 152 с.

57. Проссер Л., Браун Ф., 1967. Сравнительная физиология животных. М., «Мир».

58. Рубан Е.Л., 1961. Физиология и биохимия нитрифицирующих микроорганизмов. М., изд-во АН СССР, Институт микробиологии, 175 с.

59. Руководство по гидрохимическому анализу морских и пресных вод при экологическом мониторинге рыбохозяйственных водоёмов и перспективных для промысла районов Мирового Океана. М., ВНИРО, 2003.

60. Сандер М. Техническое оснащение аквариумов. М., «Астрель», 2004.

61. Спотт С., 1983. Содержание рыбы в замкнутых системах. Перевод с англ. яз. М., «Лёгкая промышленность», 192 с.

62. Степанов Д.Н., 1994. Морской аквариум дома. М., Экоцентр-ВНИРО.

63. Стикни Р., 1986. Принципы тепловодной аквакультуры. М., Агропромиздат, 288 с.

64. Супрунович A.B., 1988. Аквакультура беспозвоночных. Киев, «Наукова думка», с. 14-18, 25-30, 98-105, 118-120, 123-125.

65. Сущеня Л.М., 1972. Интенсивность дыхания ракообразных. Киев, «Наукова думка», 195 с.

66. Таривердиева М.И., 1976. Питание камчатского краба Paralithodes camtschatica, крабов-стригунов Chionoecetes opilio и Ch. bairdi в юго-восточной части Берингова моря. // Биология моря, № 1, с. 41-48.

67. Уитон Ф., 1985. Техническое обеспечение аквакультуры. Перевод с англ. языка. М., Агропромиздат, с. 163-166, 172-192, 352-460.

68. Федосеев В.Я., Григорьев Н.И., 2001. Воспроизводство камчатского краба на подвесных плантациях в заливе Посьета (Японское море). // Рыбное хозяйство. М., № 2, с. 35-36.

69. Федосеев В.Я., Григорьева Н.И., 2001. Способы выращивания крабов на искусственных сооружениях. // Тезисы докладов Международной научно-практической конференции «Прибрежное рыболовство - XXI век» 19-21 сентября, Южно-Сахалинск, с. 119-120.

70. Федосеев В.Я., Родин В.Е., 1986. Воспроизводство и формирование популяционной, структуры камчатского краба. // Динамика численности промысловых животных Дальневосточных морей, Владивосток, ТИНРО, с. 35-46.

71. Характеристика состояния водных биологических ресурсов, в отношении которых устанавливается общий допустимый улов, в морях Северо-Европейского бассейна, в Северной Атлантике, и западном секторе российской Арктики, в 2010 году и прогноз ОДУ на 2012 год. Мурманск, ПИНРО, 2011.

72. Чекунова В.И., 1969. Биология, распределение и промысел лан1устов в Мировом Океане. М., ВНИРО, с. 5-8.

73. Шакула JI.А., Ковачева Н.П., Назарцева М.Ю., Тимофеева Ю.В., 2008. Выделение аммонийного азота камчатским крабом Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) на различных этапах жизненного цикла при культивировании. // Тез. докладов Третьей Межд. науч.-практич. конференции «Морские прибрежные экосистемы. Водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки», Владивосток, ТИНРО-Центр, с. 271-272.

74. Эпельбаум А.Б., Ковачева Н.П., 2003. Исследование рационов личинок камчатского краба {Paralithodes camtschaticus) при культивировании в установках с замкнутым циклом водообеспечения. // Материалы междунар. симпоз. «Холодноводная аквакультура: старт в 21 . век».- М.: ФГНУ «Росинформагротех», с. 182-183.

75. Эпельбаум А.Б., Ковачева Н.П., Кряхова Н.В., 2005. Использование искусственных кормов при культивировании личинок камчатского краба. // Мат. 2-й Международ, конф. «Морские прибрежные экосистемы: водоросли, беспозвоночные и продукты их переработки». М., ВНИРО.

76. Яковлев С.В., Воронов Ю-В., 1975. Биологические фильтры. М., Стройиздат, 136 с.

77. Aiken D.E., Waddy S.L. Culture of the American lobster, Homarus americanus. // Cold-water aquaculture in Canada, Moncton, 1989, pp. 79-1221

78. Alcaraz M., Sarda K., 1981. Oxygen consumption by Nephrops norvegicus (Crustacea: Decapoda) in relationship with its moulting stage. I I J. Exp. Mar. Biol. Ecol.,'vol. 54, №2, pp. 113-118.

79. Armstrong D.A., Stephenson M.J., Knight A.W., 1976. Acute toxicity of nitrite to larvae of the giant Malaysian prawn.

80. Blau S.F., Byersdorfer S.C., 1994. Sausage-shaped artificial collector developed in Alaska to study young-of-the year red king crabs. // Bull. Mar. Sci., vol. 55, p. 113-118.

81. Chang E.S., Conklin D.E., 1993. Larval culture of the American lobster, Homariis americanus. II CRC Handbook of mariculture, v.l. Crustacean Aquaculture, USA, Boca Raton, pp. 489-495.

82. Collins M.T., Gratzek J.B., Dawe D.L., Nemetz T.G., 1976. Effect of antibacterial agents on nitrification in an aquatic recirculation system.

83. Conklin D.E., Chang E.S. Culture of juvenile lobsters {Homarus americanus), 1993. 11 CRC Handbook of mariculture, v.l. Crustacean Aquaculture, USA, Boca Raton, pp. 497-510.

84. Drengstic A., 2009. Innovations in land-based recirculating aquaculture systems to produce market sized European lobster in Norway. // Aquaculture Europe, vol. 34(4).

85. Epifanio C.E., Srna R.F., 1975. Toxicity of ammonia, nitrite ion, nitrate ion and orthophosphate to Mercenaria mercenaria and Crassostrea virginica.

86. Freese L.J., Babcock M.M., 1989. The utility of artificial substrate collection devices to determine time and location of red king crab (Paralithodes camtschatica) glaucothoe settling in Auke Bay, Alaska. // Proceedings- of the International Symposium on King and Tanner Crabs. Anchorage, Alaska, USA, p. 119-131.

87. Fromm P.O., Gillette J.R., 1968. Effect of ambient ammonia on blood ammonia and nitrogen excretion of rainbow trout (Salmo gairdneri).

88. Gross A., Nemirovsky A., Zilberg D., Nejidat A., 2006. Soil nitrifying enrichments for enhancement of biofiltration systems in intensive recirculating saline water aquaculture. // World Aquaculture, vol. 37, № 2, pp. 12-15.

89. Hampson B.L., 1976. Ammonia concentration in relation to ammonia toxicity during a rainbow trout rearing experiment in a closed freshwater and seawater system.

90. Hanecom N.M., Baird D., 1987. Oxygen consumption of Calianassa kraussi Stebbing (Decapoda, Crustacea) in relation to various environmental conditions. // S. Afr. J. Zool., vol. 22, №3, pp. 183-189.

91. Hirayama K., 1970. Studies of water by control by filtration through sand bed in a marine aquarium with closed circulating system.

92. Ismael D., Moreira G.S., 1996. Effect of temperature and salinity on respiration rate and development of early larval stages of Macrobrachium acanthurus (Wiegmann, 1836) (Decapoda, Palaemonidae). // Comp. Biochem. Physiol., A, vol. 118A, №3, pp. 871-876.

93. Kawai A., Yoshida Y., Kimata M., 1965. Biochemical studies of the bacteria in aquarium with circulating system.

94. Kawai T., 1940. Culture of young-crab stages of the king crab Paralithodes camtschaticus. II Ten-day report of Hokkaido Fisheries Experiment Station, vol. 469, p. 143-144.

t

95. Kittaka J., Stevens B.G., Teshima S., Ishikawa M., 2002. Larval culture of the king crabs Paralithodes camtschaticus and P. brevipes. II Crabs in cold water regions: biology, management, and economics. Ed. A. J. Paul et al., Fairbanks, Alaska, University of Alaska Sea Grant., 876 p.

96. Knepp G.W., Arkin G.F., 1973. Ammonia toxicity levels and nitrate tolerance of channel catfish.

97. Kormanik G., Cameron J., 1981. Ammonia excretion in the seawater Blue Crab (Callinectes sapidus) occurs by diffusion, and not Na+/NH4+ exchange. // Journal of Comparative Physiology, v. 141, pp. 457-462.

98. Kuhl H., Mann H., 1962. Modellversuche zum Stoffhausalt in Aquarien bei verschieden Salzgehalt. // Kiel Meeresforsch, № 18, s. 89-92.

99. Kurata H., 1959-1961. Studies on the larva and postlarvae of Paralithodes camtschatica.

a. Rearing of the larvae, with special reference to the food of the zoea. // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., 1959, vol. 20, p. 76-83.

b. Feeding habits of the zoea. // 1960, vol. 21, p. 1-8.

c. The influence of temperature and salinity on the survival and growth of the larvae. // 1960, vol. 21, p. 9-14.

d. Growth of the larvae and postlarvae. // 1961, vol. 1, p. 1-9.

100. Levine G., Meade T.L., 1976. The effects of disease treatment on nitrification in closed system aquaculture.

101. Liao P.B., Mayo R.D., 1972. Salmonid hatchery water reuse systems. // Aquaculture, vol. 1, № 3, p. 317-335.

102. Marukawa H., 1933. Biological and fishery research on Japanese king crab, Paralithodes camtschatica (Tilesius). // Journal Imp. Fish. Exp. Stat. Tokyo, vol. 37, №4, 152 p.

103. McMahon B.R., Wilkens J.L., 1975. Respiratory and circulatory responses to hypoxia in the lobster Homarus americanus. II J. exp. Biol., № 6a, p. 637-655.

104. Mortensen A., Damsgard B., 1995. Growth, mortality and food' preference in laboratory-reared juvenile king crab (Paralithodes camtschatica). // High Latitude Crabs: Biology, Management and Economics. Proc. Internat. Symp. of Crabs from high latitude habitats, Anchorage, Univ. of Alaska Sea Grant College program report № 96-02, USA, October 11-13, p. 665-674.

105. Nakanishi T., 1987. Rearing conditions of eggs, larvae, and post-larvae of king crab Paralithodes camtschaticus. II Bull. Japan Sea Nat. Fish. Res. Inst., vol. 37, p. 57-161.

106. Nakanishi T., Naryu M., 1981. Some aspects of large-scale rearing of larvae and post-larvae of the king crab {Paralithodes camtschatica). // Bull. Japan Sea Reg. Fish.Res. Lab., vol. 32, p. 39-47.

107. Omi H., Mizushima T., 1980. Research on the culture of the king crab Paralithodes camtschaticus. II Report on the experiments to develop aquaculture techniques for Paralithodes camtschaticus. Hokkaido, p. 1-64.

108. Phillips, 2006. Lobsters: biology, aquaculture and fisheries. Australia, 506 p.

109. Romero M.C., Tapella F., Stevens B., Buck C.L., 2010. Effects of Reproductive Stage and Temperature on Rates of Oxygen Consumption

in Paralithodes platypus (Decapoda: Anomura) // Journal of Crustacean Biology, vol. 30(3), p. 393-400.

110. Saeki A., 1958. Studies of fish culture in filtered closed-circulation aquaria.

111. Sato S., 1958. Studies on larval development and fishery biology of king crab, Paralithodes camtschatica (Tilesius). II Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., № 17, p. 102.

112. Sato S., Tanaka S., 1949. Study on the larval stage of Paralithodes camtschatica (Tilesius). 1. About morphological research. // Hokkaido Fish. Exp. Stat. Res. Rep. № 1, vol. 1, p. 7-24.

113. Shi Y., Hu X., Wang J., 2005. Characteristics of sewage treatment by moving-bed biofilm reactor. // Research on environmental science (Huanjing Kexue Yanjiu), vol. 18, № 5, pp. 49-51, 55.

114. Shimizu J., 1939. Outline of the rearing experiment on king crab zoea. // Hokkaido Prefectural Fisheries Experimental Station, ten-day report № 327, 408 p.

115. Shirley S.M., Shirley T.C., 1989. Interannual variability in density, timing and survival of Alaskan red king crab Paralithodes camtschaticus larvae. // Mar. Ecol. Prog. Ser., № 54, p. 51-59.

116. Speece R.E., 1973. Trout metabolism characteristics and the rational design of nitrification facilities for water reuse in hatcheries. // «Transactions of the American Fisheries Society», vol. 102, № 2, p. 323-334.

117. Srna R.F., Baggaley A., 1975. Kinetic response of perturbed marine nitrification systems.

118. Steneck R.S., 2006. Is the American lobster overfished? A review of overfishing with an ecologically based perspective. // Bulletin of marine science, vol. 78, №3.

119. Stevens B.G., Kittaka J., 1998. Postlarval settling behavior, substrate preference and time to metamorphosis for red king crab Paralithodes camtschaticus. II Mar. Ecol. Prog. Ser., vol. 167, p. 197-206.

120. Summerfelt S.T., Wilton G., Roberts D., Rimmer T., Fonkalsrud K., 2004. Developments in recirculating systems for Arctic char culture in North America. // Aquacultural Engineering, vol. 30, p. 31-71.

121. Takeuchi I., 1962. On the distribution of zoea larvae of king crab, Paralithodes camtschatica, in the southeastern Bering Sea in 1960. // Bull. Hokkaido Reg. Fish. Res. Lab., № 24, p. 163-170.

122. Thomas H. J., 1953. The oxygen uptake of the lobster (Homarus vulgaris, Edw.). // J. exp. Biol., Vol. 31, p. 228-251.

123. Tomlinson T.G., Boon A.G., Trotman G.N.A., 1966. Inhibition of nitrification in the activated sludge process of sewage disposal.

124. Weihrauch D., Ziegler A., Siebers D., Towle D., 2002. Active ammonia excretion across the gills of the green shore crab {Carcinus maenas): participation of Na+/K+-ATPase, V-type H+-ATPase and functional microtubules. // The Journal of Experimental Biology, v. 205, pp. 2765-2775.

125. Westin D.T., 1974. Nitrate and nitrite toxicity to salmonid fishes.

126. Winkler P. Effects of handling on the in situ oxygen consumption of the American lobster {Homarus Americanus) // Comparative Biochemistry and Physiology, Part A: Physiology,vol. 87, Issue 1, 1987, P. 69-71.

127. Yoshida Y., 1967. Studies of the marine nitrifying bacteria: with special reference to characteristics and nitrite formation of marine nitrite formes.

128. Zhou S., Shirley T.C., Kruse G.H., 1998. Feeding and growth of red king crab {Paralithodes camtschaticus) under laboratory conditions. // J. Crustacean Biology, v. 18(2), p. 337-345.

129. ZoBell C.E., Michener H.D., 1938. A paradox in the adaptation of marine bacteria to hypertonic solutions.