Ассоциированная формолвакцина против колибактериоза и стафилококкоза птиц: Антигенные и иммуногенные свойства тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 16.00.03, кандидат ветеринарных наук Салимов, Точиддин Мухиддинович

• Салимов, Точиддин Мухиддинович
• кандидат ветеринарных наук
• 1999

Оглавление диссертации кандидат ветеринарных наук Салимов, Точиддин Мухиддинович

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ

Глава 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ

Глава 2. СОБСТВЕННЫЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

2.1. Материалы и методы исследований

2.2. Результаты исследований

2.2.1. Распространение колибактериоза и стафилококкоза птиц в птицеводческих хозяйствах Республики Таджикистан

2.2.2. Подбор штаммов эшерихия коли и стафилококкус ауреус с высокими иммуногенными свойствами

2.2.3. Приготовление ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц

2.2.4. Изучение иммуногенной активности ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц

2.2.5.Иммунологические показатели цыплят, привитых ассоциированной формолвакциной против колибактериоза и стафилококкоза

2.2.6. Испытание ассоциированной формолвакцины против колибактериоза

и стафилококкоза птиц в производственных условиях

ОБСУЖДЕНИЕ РЕЗУЛЬТАТОВ ИССЛЕДОВАНИЯ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

ВЫВОДЫ

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

ПРИЛОЖЕНИЕ

ПЕРЕЧЕНЬ СОКРАЩЕНИЙ, ПРИНЯТЫХ В РАБОТЕ

РА - Реакция агглютинации

МПА - Мясопептонный агар

МПБ - Мясопептонный бульон •

МППБ - Мясопептонный печеночный бульон

ВФА - Ворфель-Фергюсона

НТД - Нормативно-техническая документация

ГУВ - Главное управление ветеринарии

ЛД50 - Пятидесятипроцентная летальная доза

КИЭзо - Пятидесятипроцентный коэффициент иммунологической эффективности

М.К. - Микробная клетка

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Ассоциированная формолвакцина против колибактериоза и стафилококкоза птиц: Антигенные и иммуногенные свойства»

ВВЕДЕНИЕ

Актуальность темы. Одной из важнейших отраслей сельского хозяйства Республики Таджикистан является птицеводство. Уровень производства продуктов птицеводства оказывает большое влияние на экономическом состоянии населения, а животные и птицы являются национальным богатством нашей страны.

Ветеринарная наука и практика ставят своей целью сохранение и увеличение поголовья птиц, повышение их продуктивности и выпуск полноценных продуктов питания и сырья для промышленности. Однако успешному развитию отрасли птицеводства в республике в значительной мере препятствуют желудочно-кишечные и респираторные болезни, наносящие огромный ущерб хозяйствам. Среди указанных болезней в птицеводческих комплексах большой удельный вес имеют колибактериоз и стафилококкоз, которые, часто протекая в ассоциации, вызывают массовую гибель эмбрионов, цыплят разного возраста и взрослых кур.

Значительные исследования по изучению вопросов колибактериоза и стафилококкоза проведены А.Байдавлятовым, Л.Белицкой [14], С.А.Артемьевой [3], Л.А.Ольковичем [71], И.А.Рахманиной, Г.А.Грошевой [88], А.К.Борисенковой с соавторами [25]. Т.В.Крыловой [56], Т.Н.Мальцевой [61], Н.А.Радчук, Н.С.Якубовой [108] и др.

Для специфической профилактики колибактериоза и стафилококкоза разработаны моновакцины, включающие местные штаммы эшерихии коли и стафилококкус ауреус (Х.К.Бурханова [27], Н.А.Радчук [80] и Т.В.Крылова [57]).

В борьбе же со смешанными инфекциями птиц, вызываемыми эшери-хией коли и стафилококкус ауреус, наиболее эффективными могут быть ассоциированные вакцины.

Однако в этом направлении исследования малочисленны. В этой связи разработка ассоциированной вакцины против колибактериоза и стафило-

коккоза из местных штаммов микроорганизмов является весьма актуальной. Применение таких вакцин дает возможность сократить сроки создания иммунных групп птиц, повысить производительность труда ветеринарных работников, уменьшить затраты на проведение противоэпизооти-ческих мероприятий. В птицеводческих хозяйствах Республики Таджикистан исследования по изучению распространения колибактериоза и стафи-лококкозу птиц не проводились и не разработаны средства специфической профилактики указанных инфекций;

Цель и задачи исследования. Целью настоящей работы явилась разработка и изучение антигенной и иммуногенной эффективности ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц. Для достижения этой цели были поставлены следующие задачи:

1. Изучить распространение колибактериоза и стафилококкоза птиц в хозяйствах Республики Таджикистан.

2. Подобрать штаммы эшерихии коли и стафилококкус ауреус с высокими иммуногенными свойствами и изготовить ассоциированную фор-молвакцину против колибактериоза и стафилококкоза птиц.

3. Изучить иммунологические показатели организма цыплят, привитых ассоциированной формолвакциной.

4. Изучить антигенную и иммуногенную эффективность ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц в лабораторных и производственных условиях.

Научная новизна. Изучено распространение колибактериоза и стафилококкоза птиц в хозяйствах Республики Таджикистан. Подобраны штаммы эшерихии коли и стафилококкус ауреус с высокими иммуногенными свойствами и отработана технология изготовления ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц.

Определены оптимальные условия выращивания микробной массы на модифицированной среде Ворфель-Фергюсона для изготовления вакцины.

Изучены показатели гуморального иммунитета и неспецифических факторов резистентности организма у вакцинированных цыплят. Установлена корреляция между серологическими показателями иммунитета, содержанием общего белка и белковых фракций в сыворотке крови иммунизированных цыплят.

Изучена антигенность и иммунологическая эффективность вакцины, определены оптимальная доза и схема вакцинации цыплят.

Практическая ценность. На основании проведенных исследований разработаны:

- «Временное наставление по применению ассоциированной формол-вакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц, приготовленной на среде Ворфель-Фергюсона (ВФА)» (Утв. ГУВМСХ РТ, 1996 г.).

- Нормативно-техническая документация (инструкции по изготовлению и контролю, технические условия, наставление по применению) на ассоциированную вакцину против колибактериоза и стафилококкоза птиц (Утв. ГУ В МСХ РТ, 30.01.99 г.).

- Рационализаторское предложение (удостоверение №1 Утв. Тадж-НИВИ 04.03 1996 г.).

Основные положения диссертационной работы, выносимые на защиту:

- данные изучения распространения колибактериоза и стафилококкоза птиц в хозяйствах Республики Таджикистан;

- подбор штаммов эшерихии коли и стафилококкус ауреус с высокими иммуногенными свойствами;

- результаты определения показателей естественного иммунитета организма у вакцинированных цыплят;

- антигенная и иммуногенная эффективность ассоциированной фор-молвакцины п рота в колибактериоза и стафилококкоза птиц в экспериментальных и производственных условиях.

Апробация работы. Основные положения диссертационной работы доложены и обсуждены на заседаниях Ученого Совета Таджикского НИВИ в 1994-1998 гг.; на республиканских и областных семинарах и совещаниях (1994-1997); конференции в честь 70-легия УзНИВИ (Самарканд, 1996); заседании научного совета по животноводству и ветеринарии Таджикской академии сельскохозяйственных наук (1996-1997); заседании научно-технического совета Министерства сельского хозяйства Республики Таджикистан (1996).

Публикации. По теме диссертации опубликованы 3 научные работы.

Объем и структура диссертации. Диссертация изложена на 110 страницах машинописного текста и включает введение, обзор литературы, собственные исследования, обсуждение результатов, выводы, практические предложения и список использованной литературы. Работа иллюстрирована 12 таблицами и 7 рисунками. Список литературы включает 150 источников.

Глава 1 ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ Краткая историческая справка

Колибактериоз (колисептицемия, колиинфекция, эшерихиоз, колиэн-терит, колиперитонит) - энзоотическая септическая болезнь различных видов птиц, вызываемая патогенными типами эшерихий различных сероти-пов.

Кишечная палочка впервые была выделена в 1885 году профессором клиники детских болезней в Граце Т.ЕзсЬепсЬ.

В дальнейшем выяснилось, что среди кишечной палочки имеется большое число разновидностей, отличающихся между собой по ферментативным и серологическим свойствам, по степени антагонистической активности и патогенности.

С момента открытия и до настоящего времени кишечная палочка как болезнетворный фактор привлекает к себе внимание многих исследователей, и были опубликованы работы, подтверждающие этиологическую и патогенетическую роли кишечной палочки в возникновении желудочно-кишечных болезней.

В СНГ колибактериоз у птиц впервые выделили в 1940 году И.Н.До-рошко, З.А.Кучеренко [41].

Несмотря на значительное количество исследований [11, 43, 90, 105, 148, 149], проведенных в последние годы, проблема колибактериоза кур продолжает оставаться весьма актуальной.

Стафилококкоз - инфекционная болезнь птиц, вызываемая патогенными стафилококками и проявляющая артритами, синовитами, дерматитами, воспалением подглазничных синусов и сережек, а также клоацитами [62].

Проблема стафилококковой инфекции уже на протяжении более 36 лет является одной из наиболее важных и интересных для ветеринарной медицины. Ей посвящено огромное количество публикаций в зарубежной

литературе.

Изучением стафилококков впервые в 1965-1967 год занимались Н.Б.Мордвинова, Т.Б.Выгодчиков, Г.В.Бахлачева [66], Э.А.Нечаева, И.И.Панышева [73], \V.Meyer [140] и др.

Ряд исследователей [15, 100, 129, 130, 150] изучили свойства штаммов стафилококков, изолированных от кур. При этом наблюдали колонии типа А/В на среде с кристаллическим фиолетовым, продукция фибринолизина и а-гемолизина, отсутствие в-гемолизина, устойчивость к фагам наборов «и» «крс.».

1.К.Тошрвоп [147] и др., проводя фаготипирование штаммов, выделенных от кур в 7 странах, обратили внимание на то, что культуры фаго-группы А в отличие от штаммов фагогрупны В1 редко образовывали ДНК азу и коагулировали плазму крови коровы. Таким образом, штаммы фаго-группы А соответствовали варианту galinal, а культуры фагогруппы В2 отличались от него, и авторы пришли к заключению о возможном существовании двух разных биотипов среди штаммов стафилококкус ауреус, обитающих у кур. Штаммы, выделенные от кур, росли при 45 градусах значительно реже, чем золотистые стафилококки другого происхождения (соответственно 33% и 95-100% штаммов). Авторы предложили метод био-типирования куриных штаммов, основанный на оценке гемолитической активности, образования ацегоина, окисления лактозы, галактозы и ман-нита. Штаммы биотипов (наиболее многочисленного) и 4 не росли при 45 градусах, а биотипов 2 и 3 в этих условиях росли хорошо.

Основное внимание исследователей при проведении биологического типирования стафилококкус ауреус концентрировалось на штаммах, выделенных от домашних животных и птиц.

За период, как стало известно о заболевании птиц стафилококкозом, достигнуты определенные успехи. Были изучены биология возбудителя болезни и его свойства, эпизоотология и патогенез заболевания, его клиническая и патологоанатомическая картина, диагностика и дифференциальная

диагностика стафилококкоза от других болезней со сходными клиническими признаками, иммунитет и лечение при стафилококкозе, за рубежом разработаны специфические средства профилактики и методы их применения [1, 9, 14, 38, 39, 40, 54]. Безусловно, что все это явилось огромным вкладом, как в науку, так и в производство и дало положительные результаты в борьбе с этой инфекцией.

В нашей республике к изучению стафилококкоза птиц приступили недавно, многие вопросы эпизоотологии, терапии и специфической профилактики этой болезни неизучены, уровень заболевания пгиц стафилокок-козом пока еще остается сравнительно высоким и оно занимает одно из ведущих мест в инфекционной патологии птиц и наносит большой экономический ущерб птицеводству.

Эпизоотология колибактериоза и стафилококкоза птиц

В условиях перевода птицеводческих хозяйств на промышленную основу и в связи с существенными изменениями в технологии выращивания молодняка увеличилось распространение колибактериоза и стафилококкоза птиц.

Согласно сообщению С.А.Артемьевой [5], колибакгериоз распространен повсеместно с той лишь разницей, что в одних птицехозяйствах это заболевание регистрируется спорадически, в других протекает с массовым охватом птиц разного возраста.

О колибактериозе птиц сообщали в Болгарии - Д.Савов [96], в Канаде [126], в США [121], в России [41], в Узбекистане [27, 87], в Казахстане [58], в Таджикистане [61, 77].

Исследования колибактериоза у птиц [107], проведенные в 1985 году показали, что оно занимает второе место в Марокко (28 % случаев) после Ньюкаслской болезни. Он может быть распространен в индивидуальном секторе птицеводства самостоятельно и несвязан с нарушением санитарных и технологических режимов.

Колибактериозная инфекция наносит большой экономический ущерб птицеводческой промышленности. Она начинается с генерализованной формы, и после септицемии поражает и респираторные органы [63, 116, 131, 141, 146]. Это заболевание сопровождается снижением яйценоскости взрослого поголовья и выводимости утят, а также приводит к гибели птицы [7, 69, 111, 123,139, 144].

Смертность среди заболевших стафилококкозом птиц составляет 3-15 %, выбраковка кур - 8-10 %, а петухов - более 50 % [71, 116]. Стафилококкоз часто протекает в ассоциации с пастереллезом, колибактериозом и стреп-тококкозом [22, 58, 84].

Стафилококкоз снижает общую резистентность организма цыплят, трудно поддается лечению [131]. По данным Е.Harry [126] падеж цыплят может достигать 40 %.

H.Lensing [137] сообщил о массовых заболеваниях кур-несушек на четырех фермах, где погибло 15 % птиц. J.Karacov [133] зарегистрировал 100 %-ную гибель заболевших куропаток:

А.Байдавлятов, Л.Белицкая [14] наблюдали респираторную форму стафилококковой инфекции.

Г.А.Грошевой [36] в опытах выявлена патогенетическая связь между процессами вызванными E.Coli и М.Голиссептикум. Установлено, что комбинированное инфицирование указанными возбудителями обусловливает наиболее высокую заболеваемость птиц. Так, если при неосложнен-ной микоплазменной инфекции смертность цыплят составляет 9,4 %, то при смешанной она достигает 42,7 %.

Сезонность в заболевании цыплят колибактериозом имеет определенные закономерности. С.Г.Покровский [68] установил, что наибольшее количество энтеропатогенных серотипов кишечной палочки выделяется в первом и четвертом кварталах, особенно в марте и октябре. В эти же сроки резко возрастает заболеваемость среди молодняка.

А.У.Хашимов, Б.И.Рафиев [104], изучая эпизоотологическое состоя-

ние, определили, что колибактериоз среди птиц разного возраста распространяется в осенне-зимнее и летнее время.

Восприимчивость цыплят к колибактериозу и стафилококкозу зависит от периода их роста. Заболевание чаще возникает у 1-10 дневных цыплят. Развитие эпизоотии происходит в течение 20-суток. У цыплят в возрасте от 20 до 30 дней количество новых случаев заболевания уменьшается, в дальнейшем наблюдаются только спорадические случаи [45, 49, 134].

Исследованиями Г.А.Грошевой и др. [39] установлено, что наибольшая восприимчивость к колибактериозу отмечается у цыплят 1-3 месячного возраста. Среди взрослых кур заболевание отмечается спорадически.

Б.Белицкая и И.Паникар [19] наблюдали колибактериоз бройлеров 675 дневного возраста в птицехозяйствах Украины. Заболеванию в септической форме наиболее подвержены цыплята раннего возраста, у взрослых кур-несушек и петухов 6-10 месячного возраста стафилококкоз может протекать атипично (респираторный синдром) [25, 133].

Колибактериоз сопровождается большим отходом цыплят в возрасте 45-80 дней. Падеж увеличивается, если он ассоциируется с инфекционным бронхитом, болезнью Марека, пуллороз-тифом и пастереллезом [26, 32, 34, 58,60, 104].

П.М.Сопиков [98] сообщает о заболевании цыплят, индюшат, утят, а также взрослых птиц, отмечая повышение восприимчивости птицы при инвазии гельминтами, содержании на неполноценных кормах и в неудовлетворительных санитарно-гигиенических условиях.

Основным источником инфекции является кал больной птицы, а также корм, вода и предметы, загрязненные испражнениями. Имеются сообщения, что источником инфекции могут быть дикие птицы, грызуны, клещи и клопы.

Клопы (ЬесШГапш) являются естественными носителями и резервен-тами патогенных сальмонелл и эшерихий в неблагополучных птичниках и, следовательно, имеют определенное эпизоотологическое значение при со-

ответствующих болезнях птиц [32].

И.А.Рахманин, А.С.Серебряков [91] в результате проведенных исследований выяснили, что у кур, экспериментально зараженных эшерихией коли, органы яйцеобразования могут быть инфицированы в 20-40 % случаев и в 8 % у переболевших колиинфекцией в раннем возрасте.

Зараженность эшерихией коли скорлупы яиц птицы из неблагополучных по колисептицемии хозяйств высокая (80-100 %). В го же время при бактериологическом исследовании желтка и белка яиц от экспериментально зараженных кур посевы оказались стерильными (культура эшерихия коли) выделена из желтка в одном случае из 500 (0,7 %) [90, 92, 114].

С.А.Артемьевым и др. [7] установлено, что у 4-5 % яиц, полученных от экспериментально зараженных колибактериозом кур, инфицирован желток.

О.М.Леесмент [59] одной из предполагаемых причин вспышки коли-бактериоза на Таллиннской птицефабрике считает поступление в хозяйство инфицированной эшерихией коли мясокостной муки.

И.С.Загаевский [44] сообщил о массовом инфицировании цыплят колибактериозом в возрасте 5-6 недель. Причиной было молоко и творог, полученные из хозяйств, неблагополучных по маститу, обусловленному эшерихией коли.

R.Deb, E.Harry [119] сообщили, что штаммы эшерихии коли, выделенные от человека и кур обладали высокой пагогенностью для уток.

В.Исаевым [49] от погибших утиных эмбрионов были выделены патогенные для утят (в эксперименте) эшерихии коли серогрупп 08, 05, 011

R.P.Singh [142] установил, что в воздухе птичников и инкубаторов содержание стафилококка составляет 44,3 % от всей остальной микрофлоры.

Характеристика эшерихии коли и стафилококкус ауреус

Классификация. В основу систематики эшерихии коли положены разные принципы, в связи с чем эти бактерии были названы неодинаково.

Первая международная классификации эшерихий была принята в 1951 г.

Род Escherichia был разделен на 2 вида: Е. Coli и E.Frendi.

С 1958 г. по предложению Международного комитета по Escherichia tetiaceal в составе рода Escherichia стали рассматривать только один вид Escherichia coli, подразделенный на множество сероферментативных типов.

В последнем издании определителя бактерий Берджи род Escherichia представлен также одним видом. Типовой род Enterobaccticene включает два вида - E.coli, E.Beattac, а также малоизученный с неустановленным систематическим положением - Е adecarboxibale. Сведения о выделении E.sbatiale и E.adecarboxilate от теплокровных отсутствуют.

A.C.Baird-Parcer [112] приводит краткую историческую справку об эволюции классификационного положения стафилококков. Американское общество бактериологии и классификации бактерий в 1947 г. разделило грамположительные кокки на два семейства: Micrococcaclac и Streptococcaceal Род Stafilococcus был включен во второе. В 7-м издании Берджи род Siaßlococcus был разделен на два вида Si аут em и St. epidermias, что офи--шально признано Международным подкомитетом по таксономии стафилококков и микрококков в 1965 г. По современной классификации их более 20 видов.

Морфология. Бактерии группы кишечной палочки полиморфные. Размеры отдельных из них колеблются в длин}7 от 0.5 до 4, в ширину - от 0,4 до 0.6 мкм. Спор не образуют, отдельные представители рода имеют капсулу. Окрашиваются всеми анилиновыми красками, по Граму красятся отрицательно [13,35].

По данным многих авторов [24. 53] форма стафилококков шарообразная. Диаметр кокков 05-1,5 мкм, капсул, жгутиков и спор эти микробы не образуют. Окрашиваются грамположктельно. При микроскопии можно обнаружить как большие шаровидные S-формы, так и очень мелкие L-формы.

Кулыпуральные свойства. Эшеркхия коли хорошо растут на простых

питательных средах при температуре 37-38°С, рН 7,2-7,4 в аэробных и анаэробных условиях [37, 97, 99].

Есть сообщения [42] о том, что эшерихия коли способна размножаться и физиологическом растворе хлористого натрия.

Стафилококки культивируются на обычных питательных средах при температуре 35-37°С, рН 7,2-7,4 в аэробных и анаэробных условиях. Солевой кровяной агар - лучшая среда для выделения стафилококков из патологического материала, в этой среде их колонии окружены зоной гемолиза, Для дифференциации стафилококка и других видов микроорганизмов применяются 16 %-ый раствор хлорида натрия, так как последние в этой среде не растут [53].

Биохимические свойства. Возбудитель колибактериоза разлагает глюкозу, мальтозу, лактозу, арабинозу, маннит, сорбит, галактозу с образованием кислоты и газа, свертывает молоко, не изменяет адонит и инозит, не разжижает желатин, восстанавливает нитраты и нитриты [3].

Стафилококки ферментируют с образованием кислоты, без газа глюкозу, фруктозу, сахарозу, мальтозу, ксилозу, глицерин, маннит, не разлагают салицин, дульцит, инулин, раффинозу, продуцируют уреазу, каталазу, сероводород, восстанавливают нитраты в нитриты, не разлагают крахмал, инсулин, не образуют индол, разжижают желатин и свернутую кровяную сыворотку [86].

Патогенные стафилококки обладают ДНК-азной активностью [66, 73].

Серологические свойства. По данным ряда исследований [67, 70, 78, 117] серологическая классификация эшерихий основана на анализе О-, К- и Н-антигенов: О-антигены соматические, К-антигены оболочечные, состоящие из трех антигенов (В и А), а Н-антигены жгутиковые. В настоящее время известно 159 серологических групп О-ангигена, обозначенных номерами с 1 по 164, 100 К-антигенов и 53 Н-антигенов кишечной палочки.

Основной антигенно-диагностической схемой эшерихий является раз-

деление их по О-антигену. Наиболее часто при заболевании колибактерио-зом выделяют эшерихия коли серогрупп 02, 078, 01, 011, 08, 09, 076, 0111, 0115, 0127, 0138,0141,0119, 055, 018, 035 [7, 104, 105, 106, 138].

Колибактериоз, являясь вторичной инфекцией, имеет более существенное значение, чем такие респираторные болезни как инфекционный бронхит, болезнь Ньюкасла, микоплазменная инфекция или стрессы, реакции на вакцинации или сероводород. Наиболее часто встречаемые сероти-пы в порядке значимости являются: 078, 01, К1 и02аК1 [108, 132, 135].

С.А.Артемьева и др. [4] установили, что превалирующей серогруппой эшерихии коли, которая циркулирует в птицехозяйствах страны, является 02. Так, из 62 типированных культур кишечной палочки 24 (39 %) отнесено к сер о группе 02.

Серотипирование, проведенное [128] по K-антигену, показало, что определенные О-серотипы имеют один и тот же вид K-антигена. Так, для эшерихии коли серотип 078 характерен K-антиген (К-80). Однако, как указывает автор [128, 145], кишечная палочка серотипа 0141, выделенная от канарейки, содержит антиген К-58, а выделенная от свиньи этого же серотипа - совершенной другой, К-антиген.

Стафилококки имеют характерный для патогенных кокков полисаха-ридный антиген А и для непатогенных стафилококков полисахаридный В, а также специальный полисахаридный антиген С.

Энтеротоксины стафилококков по антигенному строению подразделяются на сероварианты А, В, Ci, (С2): Д и Е [98, 143]. Известно около 30 типоспецифических агглютиногенов стафилококкус ауреус.

По данным ряда авторов [129] агглютиногены 1, 2, 3, 7,9, 10, 11, 14, и факторы а, в, с, е, и h, i, n 263-1, 263-2 являются белками, агглютиногены 6, 15, и факторы Иг, Ki, - полисахаридами.

Типоспецифические агглютиногены выявлены у St. epidermidis и предполагаются у St. Saprofitidis, однако, их число и химическая природа неизвестны [133].

Патогенность. Патогенность эшерихии коли (как возбудителя заболевания птиц) установлена еще в прошлом веке. Позднее значение кишечной палочки как инфекционного агента было многократно подтверждено исследователями различных стран [11, 42, 44, 48 90, 91, 104, 109, 136].

В настоящее время на основании результатов исследований многочисленных авторов установлено, что колибактериоз протекает как самостоятельное заболевание, а также осложняет течение многих бактериальных и вирусных инфекций [7, 60, 83, 88]. •

Выявлено, что колибактериоз птиц вызывается патогенными эшери-хиями определенных серологических групп. Наиболее частым возбудителем заболевания являются эшерихии серологических вариантов 02, 01, 078, 0111,0115, [9, 11,90, 109, 124].

Патогенность стафилококков обусловлена продуцируемым экзотоксином различной токсической функции: гемотоксин лизирует эритроциты, лейкоцидин разрушает лейкоциты [57].

Стафилококки основные возбуди гели нагноений. К стафилококковой инфекции наиболее резистентны птицы [51]. Заболевание способны вызвать только высокопатогенные стафилококки [25].

Клинические признаки и патолого-анатомические изменения при колибактериозе и етафилококкозе птиц

По сообщениям ряда исследователей [3, 16, 30, 38, 74, 78, 113, 115] клиническая картина колибактериоза разнообразна: от бессимптомных и легких, форм до тяжелого септического и токсико-септического состояния. При остром течении болезни характерно наличие нервных явлений - тремор мышц, парезы и параличи конечностей, искривление шеи, запрокидывание головы назад.

Смерть обычно наступает в первые три дня. При заболевании цыплят старше 80-дневного возраста, колибактериоз протекает с такими же симптомами,, но медленнее: гибель наступает на 7-10-й дни после заболевания.

Летальность достигает 70 % и более.

У птиц старше 150-дневного возраста колибактериоз протекает чаще подостро и хронически. Переболевшая птица отстает в росте и становится носителем инфекции. Болезнь длится месяцами, часто всю жизнь и протекает в скрытой форме. Но в период ее обострения появляется понос, отучается повышенная жажда, гребень бледнеет или синеет. Птица погибает от желточного пери тонита, хронического сальпингита и общего сепсиса.

Для цыплят, погибших в первые дни жизни, характерным является большой нерассосавшийся желток. Печень увеличена, красно-желтого цвета, фибринозный перикардит, серозно-фибринозный аэросакулит, геморрагический энтерит, у цыплят старшего возраста подкожная клетчатка в области подгрудника инфильтрована.

Сердце увеличено, сердечная сорочка тусклая с пленками фибрина. Стенка брюшной полости покрыта серо-белыми пленками фибрина. Легкие отечны, ярко-красные, сосуды кишечника и брыжейки наполнены кровью. У кур-несушек часто обнаруживается желточный перитонит или ка-тарально-фибринозный сальпингит, в просвете яйцевода фибринозные массы, а также желточные фолликулы деформированы. Часто отмечают атрофию яичника и яйцевода, застойное полнокровие внутренних органов и кожи, иногда воспаление суставов.

Клинические признаки колибактериоза уток совпадают с описанными большинством авторов по другим видам птиц [20, 58, 121].

Заболевание у уток характеризуется повышением температуры до 44°С, быстро прогрессирующей общей слабостью, отказом от корма, жаждой, поносом, конъюнктивитом [21, 72, 78, 118]. По данным Б.У.Бессара-бова [22] у цыплят, утят, индюшат, заболевших в первые дни жизни, отмечают омфалит.

Установлено [31, 33], что при искусственном заражении продолжительность инкубационного периода различна: наиболее короткий (1-2 суток) - при введении культуры эшерихии коли интраназально, в воздухо-

носные мешки или в брюшную полость, наиболее продолжительный (до 20 дней) - при аэрозольном заражении.

Проявления стафилококковой инфекции весьма разнообразны. К их числу относятся септицемия, пиемия, септикопиемия, пиодермия, стафилококковые поражения дыхательных путей и т. д. Ряд авторов [15, 52, 71, 75, 120, 122] при клиническом осмотре у больных стафилококком птиц отмечали опухание лицевой части головы, межчелюстного пространства, сережек, иногда верхней греги шеи.

Колибактериоз в ассоциации с пуллорозом-гифом диагностируется у цыплят 1-10-дневного возраста [87]. К клиническим признакам заболевания относятся угнетение общего состояния, сильная жажда, профузный понос с беловато-коричневым содержанием. Гибель цыплят достигает 1525, иногда 40 % [56]. Тяжелое течение стафилококкоза обусловлено не только патогенными и вирулентными свойствами возбудителей инфекции, но и аллергической перестройкой организма - сенсибилизацией к стафилококку и продуктами его жизнедеятельности [86].

В.П.Голубничем, Б.Я.Бирман [33] проведены исследования при экспериментальном заражении цыплят смесью вируса гриппа и пастерелл, вируса гриппа и кишечной палочки. Контролем служили группы птиц, инфицированные монокультурами перечисленных выше микроорганизмов. Заражение цыплят смесью вирусной и бактериальной культур вызывало более выраженные клинические явления заболевания по сравнению с таковыми при заражении монокультурами.

А.Н.Борисенкова и др. [25] уточняли роль стафилококков в развитии клинического синдрома артрита бройлеров. Было проведено заражение суточных и 20-дневных цыплят культурой стафилококка, выделенной из сережек и синусов бройлеров с клиникой артритов. Все выделенные культуры стафилококков были вирулентными для суточных цыплят: 100 % - гибель их отмечали на 2-е сутки. Патологоанатомические изменения были характерны для острого сепсиса. Гибель 20-дневных цыплят составляла 70-80 %.

При патологоанотомическом вскрытии цыплят, павших от колибак-териоза, как указывает А.Е.Картушина [51], наблюдаются следующие макроскопические изменения: посинение гребня, сережек, застойное полнокровие кожи и внутренних органов: наличие наложений фибринозного экссудата на серозных оболочках сердца, печени, воздухоносных мешков и реже кишечника.

По данным С.Т.Африкантова [11] патологический процесс у цыплят при искусственном заражении эшерихией коли начинает развиваться в течение первых часов и проявляется перикардитом.

У индюшат поражения сходны с наблюдаемыми у цыплят и кроме того у них обнаруживается геморрагическое воспаление слизистой оболочки слепой кишки. [64].

Р.К.Минеева [61] при гистологических исследованиях цыплят, убитых и павших в различные сроки после заражения местными штаммами возбудителя колибактериоза, установлена, что эта инфекция протекала у них в виде септико-токсического процесса, характеризующегося тяжелыми дистрофически-некротическими изменениями паренхиматозных органов и сосудистыми расстройствами.

А.Л.Бутаков [30], проводя бактериологические исследования 173 эмбрионов кур, погибших во время инфекции на ИПС, и 424 трупов цыплят, павших в основном до трехнедельного возраста, пришел к выводу, что штаммы кишечных палочек, выделенные из крови, паренхиматозных органов и трубчатых костей, обладали патогенными свойствами в 72 %, а из погибших эмбрионов - 38,4 %, случаев.

С.А.Артемьева [3] наблюдала ассоциированное течение стафилокок-коза и колибактериоза. Из костного мозга павших цыплят 15-20-дневного возраста были выделены культуры белого стафилококка и кишечной палочки. Патологоанатомическим вскрытием птиц были установлены следующие изменения: опухания суставов, катарально-геморрагический энтерит, подагрический нефрит.

Специфическая профилактика колибактериоза и стафилококкоза птиц

Для специфической профилактики колибактериоза и стафилококкоза птиц используется различные инактивированные вакцины. В Ленинградском ветеринарном институте [80, 82] приготовлены инактивированные корпускулярные вакцины против колибактериоза. В производственных условиях был поставлен опыт на 500 тыс. цыплятах, его результаты свидетельствуют о выработке достаточно стойкого иммунитета.

H.R.Hallaran [127] для профилактики колибактериоза испытывал масляную эмульсин-вакцину, содержащую штаммы серотипов 01, 02, 078. Иммунизация такой вакциной цыплят и индюшат в суточном возрасте приводила к формированию достаточно напряженного иммунитета.

Эффективность вакцины во многом обусловливает способом ее применения. В зависимости от него различны сроки проявления, степень напряженности и длительность поствакцинального иммунитета. Кроме того, способ применения вакцины влияет на возможность контактной иммунизации непривитой птицы, находящейся с вакцинированной.

Н.А.Радчук и др. [81] аэрозольно вакцинировали кур против колибактериоза формолквасцовой вакциной (концентрация 8 млрд. м.т. 4 мл).

Напряженность иммунитета сохранялась до 3 месяцев. Сохранность цыплят в подопытных группах составляла 97,5-98 %. Деловой выход молодняка в вакцинированных группах птиц был на 7 % выше, чем в контрольной.

B.Е.Михайлова [65] показала, что однократная аэрозольная иммунизация цыплят поливалентной формолвакциной против колибактериоза формирует напряженный иммунитет сроком до 2 месяцев.

З.В.Попова и др. [17, 77] установили, что иммунитет формируется в течение двух недель после введения вакцины, сохраняется на протяжении 3,5 месяцев, иммунологическая эффективность вакцины составляет 70-80 %.

C.А.Артемьева, И.В.Соколов [8] показали, что применение формол-вакцины из серотипов 07:К1 внутрь и в аэрозоле является надежным средством профилактики колибактериоза. Более эффективна индивидуальная

вакцинация птицы (подкожно), но она трудоемкая и поэтому практически не применяется.

С.А.Артемьева [6] провела опыт по испытанию формолвакцины из се-ротипов 078:К80 в хозяйстве, неблагополучном по колибактериозу уток (33634 гол. в опытной и 18600 гол. в контрольной группах). При применении 15-дневным утятам формолвакцины с питьевой водой в дозе 20 млрд. м.к. на птицу дважды с интервалом в 7 дней падеж в течение 40 дней составил 4,1 % против 12,1 % в контроле.'

В.В.Рудаков [95] в проведенных исследованиях на большом поголовье молодняка кур установил, что двукратная аэрозольная вакцинация предупреждает заболевание, повышает сохранность молодняка.

На Ташкентском госплемзаводе вакцинации было подвергнуто 6000 кур-несушек и 672 петуха 12-13-месячного возраста. Шесть тысяч кур и петухов были оставлены в качестве контроля. В течение 5 месяцев и 20 дней от подопытных кур-несушек получено в среднем по 85,5 яиц, а от контрольных - по 74,3 яйца. Сохранность вакцинированных кур-несушек за период проведения опыта составляла 99, 9 %, контрольных - 97, 6 % [28, 29].

}.ЬаГои1 [136] показал, что вакцинация эффективна в случаях, если штаммы вызывающие заболевание, гомологичны вакцинным или идентичны с ними по серотипам.

Н.Радчук [80, 81] в течение нескольких лет изучал эффективности, иммунологические свойства формолвакцины из патогенных штаммов 02, 078 и 01. На птицефабриках при эпизоотических вспышках колибактериоза количество павших птиц составило более 30 % от общего падежа. Вакцинация цыплят была проведена двукратно с интервалом в 6 дней. В результате проведенного комплекса ветеринарно-санитарных мероприятий с применением инактивированной вакцины против колибактериоза, заболевание диагностировали среди иммунизированного поголовья только спорадически. Сохранность молодняка повысилась в среднем на 1,7 % его выбраковка в период выращивания уменьшилась на 4,6% деловой выход

увеличился на 10 %.

И.Рахманиной и Г.А.Грошевой [88, 89] в сравнительном аспекте изучалась эффективность аэрозольной иммунизации птиц против колибакте-риоза. В опыте использовали 204 цыпленка 15-20-дневного возраста, применяли вакцину из культуры возбудителя колибактериоза птиц серогруп-пы 02. Исследовали различные методы введения вакцины и контрольным заражением птиц проверяли выработку поствакцинального иммунитета. Установлено, что аэрозольная двукратная иммунизация птиц против колибактериоза по сравнению с другими методами обеспечивает наиболее высокую невосприимчивость их к возбудителю болезни при интратрахе-альном заражении, кроме того, он наиболее экономичный. При проверке поствакционального иммунитета у птиц к патогенной эшерихией коли выяснилось, что интратрахеальный метод более других соответствует их естественному заражению колибактериозом.

B.П.Урбан и Н.А.Радчук [102] показали, что применение вакцины в комплексе с ветеринарно-санитарными и зоотехническими мероприятиями способствовало резкому снижению заболеваемости цыплят колибактериозом и смертности по этой причине. Деловой выход молодняка в вакцинированных партиях был на 7-18 % выше, чем среди цыплят, при выращивании которых с целью профилактики колибактериоза применяли различные антибактериальные препараты.

C.А.Артемьевой [4] была испытана на бройлерной птицефабрике фор-молвакцина из серотипов 02:К1. Иммунизации было подвергнуто 11 тыс. клинически здоровых цыплят 10-дневного возраста. Установлено, что фор-молвакцина, примененная однократно с питьевой водой из расчета 20 млрд. м.к. гол, способствует формированию иммунитета к колибактериозу.

Имеются сообщения [2, 23, 36] о более эффективном аэрозольном применении вакцины с интервалом в 6 дней, чем пероральной вакцинацией.

По данным М.Черных [107] применение экспериментальных серий инактивированной вакцины в производственных условиях разных природ-

но-климатических зон оказалось весьма перспективным при ликвидации колибактериозной инфекции. Установлено, также, что вакцинация эффективна при наличии в хозяйстве смешанной инфекции колибактериоза и сальмонеллеза.

Г.И.Кандиков [50] изготовил формолквасцовую вакцину из местных патогенных штаммов против колибактериоза и пуллороза кур. В лабораторных условиях он иммунизировал кур в дозе 1,0 и 2,0 мл с интервалом в 3 дйя. Тигр агглютининов к 15-му дню после вакцинации составил 1:24, к 30-му - 1:320 и к 60-му - 1:960. Спустя 3 месяца он снизился до 1:110. У цыплят, выведенных из яиц ог иммунных против колибактериоза кур-несушек, в сыворотках крови были обнаружены специфические антитела.

Т.В.Крылова и А.В.Соколов [56] получили 9 анатоксинов (по три из каждого штамма - нативных, сорбированных и концентрированных), которые по своим защитным свойства не отличались друг от друга.

Анатоксины оказались безвредными для куриных эмбрионов, цыплят и белых мышей. Результаты опытов свидетельствовали о достаточно высокой активности всех приготовленных анатоксинов.

При заражении цыплят культурами стафилококка выживаемость среди иммунизированных составила 90-100 %, тогда как в контрольной группе на 3-4-е сутки пали все цыплята.

Ряд исследователей [46] полагает, что одним из методов профилактики стафилококковых инфекций в медицине является иммунизация стафилококковым анатоксином.

Е.В.Ратгауз [86] установили, что стафилококки выделяют токсин в стадии активного роста уже через 2-3 часа (в зависимости от величины посевной дозы) от момента засева.

По сведениям А.П.Кот и др. [55] субклиническая форма колибактериоза не оказывает отрицательного влияния на формирование иммунитета к Ныокаслской болезни и инфекционному ларинготрахеиту при ассоциированном аэрогенном применении вирусвакцив.

И.А.Рахманина и Г.А.Грошева [88] установили, что одновременная иммунизация против Ньюкаслской болезни и колибактериоза способствует повышению титров антигемагглютининов и активизирует деятельность иммунокомпетентных органов. Кроме того, стимулирует образование антител к возбудителю колибактериоза.

J.E.Ceysman и C.Hall [123] иммунизировали свободных от патогенной микрофролы цыплят в 5-и и 7-и недельном возрасте дважды подкожно по 0,5 мл эмульсин-вакциной-бактерином in штамма эшерихии коли серотипа 01.

Через 2 недели после заключительной иммунизации птиц заражали культурой эшерихии серотипов 02 и 078. Параллельно инфицировали не-иммунизированных цыплят. За птицами вели ежедневное клиническое наблюдение. После заражения их убивали и оценивали развитие патологических процессов в печени, сердце и воздухоносных мешках. Установлено, что у иммунизированных цыплят патологические процессы после заражения эшерихиями были выражены несколько меньше, чем у контрольных. Однако в целом моновалентная эмульсин-вакцина-бактерин (из серотипа 01) не формирует у цыплят иммунитета к заражению другими серотипами.

J.H.Deb, E.C.Harry [119, 126] проводили опыты с вакциной, приготовленной из штамма E.Coli серотипа 02:К1, как с полным, так и неполным адъювантом Фрейнда. Оба вида препарата, примененные подкожно, оказались высокоэффективными против заражения вакцинным штаммом на протяжении 3 - 4 недель после иммунизации птицы в возрасте 2-3 недель. Уровень напряженности иммунитета был выше к вакцин с полным адъювантом. Эффективность испытуемых препаратов сохранилась при сочетании с инактивированной вакциной с масляным адъювантом против Ньюкаслской болезни, что позволяет рекомендовать комбинированный способ вакцинации против данной патологии.

Г.И.Кандиков [50], изучая возможность получения невосприимчивого к пуллорозу-тифу и колибактериозу потомства путем вакцинации птиц маточного стада, пришел к выводу, что двукратная с трехдневным интерва-

лом внутримышечная прививка кур-несушек формолквасцовой вакциной против этих инфекций в дозах 1 и 2 мл обеспечивает появление пуллорных антител в сыворотке крови на 5-е сутки после второй вакцинации: титр антител достигает максимума (1:960) на 45-й день, сохраняется на высоком (1:320) уровне на 60-е сутки и снижается до 1:60 на 120-й день после вакцинации.

Т.В.Крыловой [56] установлено, что двукратное введение стафилококкового анатоксина приводит и подавлению развития последующего экспериментального инфекционного процесса. Ингаляционное применение стафилококкового анатоксина в дозе 1 мл на 1 м3 помещения в птицехозяй-ствах, неблагополучных по стафилококкозу, является эффективным средством в общей системе мер по профилактике и лечению этого заболевания.

Заключение диссертации по теме «Ветеринарная эпизоотология, микология с микотоксикологией и иммунология», Салимов, Точиддин Мухиддинович

ВЫВОДЫ

1. Бактериологическими исследованиями установлено, что колибактери-оз и стафилококкоз птиц в птицеводческих хозяйствах Республики Таджикистан распространены и причиняют значительный экономический ущерб. Колибактериоз и стафилококкоз у птиц диагностирован как в отдельности (5,3 и 9,4 %, так и в ассоциации (3,9 %).

2. Установлено, что в возникновении колибактериоза у цыплят большую роль играют следующие патогенные серотипы эшерихии коли: 0115,078, 02, 011, 082, 0119, 026, 0111, 086, 0126, 0137. Показано, что большинство исследованных штаммов эшерихии имеет адгезивные антигены К88 ас и К99.

В процентном отношении больше всего диагностируются серотипы 02, 0115, 078. 086. 0119 (10.2 - 36.8 %).

3. Из 11 изученных эпизоотических штаммов эшерихии коли и стафило-коккус ауреус наиболее иммуногенным оказались штаммы эшерихии коли 381, 408, 701 (КИЭ 96,4 %) и штамм стафилококкус ауреус №3 (КИЭ 92,6%), которые были использованы для изготовления ассоциированной формолвакцины.

4. Определены оптимальные условия вырашивания микробной массы на среде ВФА для изготовления ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц.

5. Отработана технология приготовления и контроля ассоциированной вакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц. Препарат оказался слабореактогенным и иммунологически эффективным. Оптимальная иммунизирующая доза вакцины для цыплят при двукратном аэрозольном применении составила 1,5 мл/м3 помещения с экспозицией 30 мин, при двукратном применении с интервалом 30 дней.

6. У иммунизированных цыплят установлено формирование гуморального иммунитета, что подтверждается одновременным увеличением количества общего белка, бета- и гамма-глобулинов и нарастанием титров специфических антител к эшерихии коли до 8,5±0,34 и к стафилококкус ауреус до 7,8±0,30 1о§2.

7. Применение опытных серий ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц в производственных условиях позволило повысить сохранность цыплят на 4,4 %, деловой выход молодки на 6 % и сократить летальность от этих болезней в 8 раз.

ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРЕДЛОЖЕНИЯ

3. Наставление по применению ассоциированной формолвакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц, изготовленной на среде ВФА (Утв. ГУВ МСХ Республики Таджикистан, 1996).

4. Нормативно-техническая документация на изготовление, контроль и применение ассоциированной вакцины против колибактериоза и стафилококкоза птиц (Утв. ГУВ МСХ Республики Таджикистан 30.01.99).

Выражаю глубокую благодарность научному руководителю членкоре. ТАСХН, доктору ветеринарных наук Изатуло Табаровичу Сатторо-ву за систематическое руководство исследованиями. Благодарен кандидатам ветеринарных наук Бакаеву А.Э., Мальцевой Т.Н. и Асельдерову А.Г. за повседневную помощь и полезные советы при проведении работы, а также всем сотрудникам лаборатории по изучению болезней птиц за их большую помощь и доброе отношение.

Искренне благодарен дирекции и общественным организациям Таджикского научно-исследовательского ветеринарного института за представленную возможность прохождения аспирантуры и выполнение диссертационной работы.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Инфекционная патология продолжает оставаться основным объектом внимания ветеринарных специалистов, занятых как в сфере сельскохозяйственного производства и организации ветеринарной службы, так и в области необходимых научных разработок. Только правильное толкование инфекционной патологии на основе всестороннего изучения отдельных болезней как биологических явлений и их роли в естественном порядке вещей может позволить с полной эффективностью осуществлять прошвоэпи-зоотические мероприятия и прогнозировать возможные их последствия.

В настоящее время изучены биология возбудителей стафилококкоза и колибактериоза и их свойства, вопросы эпизоотология, диагностики и терапии больных птиц. Разработаны специфические средства профилактики колибактериоза и стафилококкоза в отдельности и методы их применения. Сделаны определенные разработки и в противоэпизоотических мероприятиях. Все это явилось огромным вкладом в науку и дало положительные результаты в борьбе с этими инфекциями в птицеводческих хозяйствах.

Успехи, достигнутые в изучении этих болезней, позволили значительно сократить заболеваемость птиц колибактериозом и стафилококкозом, однако их уровень еще остается сравнительно высоким.

Колибактериоз и стафилококкоз пшц по-прежнему занимают одно из ведущих мест в инфекционной патологии и наносят значительный экономический ущерб птицеводству. Поэтому необходимы дальнейшие совершенствования знаний об этих заболеваний и активизация проводимых профилактических мероприятий, при смешанной инфекции птиц.

Пока еще остается открытым вопрос о патогенезе колибактериоза и стафилококкоза птиц при ассоциированном течении.

Заслуживает внимания разработки ассоциированных вакцин создающих напряженный иммунитет более 3 месяцев. Большой практический интерес представляет разработка иммуномодуляторов и применение их для стимуляции иммуногенеза при применении ассоциированных вакцин против колибактериоза и стафилококкоза.

Для активизации проведения профилактических, ветеринарно-санитарных, противоэпизоотических мероприятий необходимо проводить работу в направлении совершенствования методов и приемов оздоровления внешней среды от эшерихии коли и стафилококка путем повышения эффективности дезинфекционных мер; соблюдения строгого выполнения ветеринарно-санитарных требований при комплектовании племенного ядра сборным поголовьем: создания для птиц оптимальных условий содержания и кормления, не допускающих понижения естественной резистентности организма птиц.

Исходя из вышеизложенного, можно сделать вывод, что успешная борьба с колибактериозом и стафилококкозом птиц возможна только при тесном взаимодействии науки и практики.

Список литературы диссертационного исследования кандидат ветеринарных наук Салимов, Точиддин Мухиддинович, 1999 год

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

1. Акатов А.К., Зуева B.C. Стафилококки. М. 1983. С. 40-123.

2. Алиев А.Д. Эффективность аэрозольной вакцинации цыплят бройлеров против колибактериоза // Дагестанский ЦНТИ. Информационный листок. №3. 1992. С. 4.

3. Артемьева С А. Колибактериоз птиц. Л.: Колос, 1977. 25 с.

4. Артемьева С.А. Опыт применения формолвакцины 02.К на бройлерной фабрике // РЖ «Ветеринария». 1985. № 6. С. 20-23.

5. Артемьева С.А. // Тез. Научно-прокзвод. конференции. Ленинград, 1982. С. 12-14.

6. Артемьева С.А. Эффективность формолвакцины при колибактериозе уток // РЖ «Птицеводство». 1983. № 6. С. 31-32.

7. Артемьева С.А., Новикова А.Ф., Петрова И.В. // Птицеводство, 1973. № 5. С. 48.

8. Артемьева С.А., Соколов В., Дорофеев Г. ВНИВИП Способы применения формолвакцины //РЖ «Птицеводство». 1987. № 8. С. 37-38.

9. Артемичев М.А. Рецептурный справочник по болезням птиц. М.: Колос, 1972. С. 53-100.

10. Асатиани B.C. Новые методы биохимической фотометрии. М.: Наука, 1965. С. 495-510

11. Африкантова С.Г. Эпизоотические особенности и патогенез колиин-фекции птиц в хозяйствах промышленного типа // Автореф. дис. канд. вет. наук. М., 1977. С. 17.

12. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Медгиз, 1962. С. 85-87.

13. Ахмедова А.Г. Биология бактерий группы кишечной палочки, выделенной от птиц // Автореф. дис. канд. вет. наук. Баку, 1968. 16 с.

14. Байдавлятов А.Б., Белицкая О. О респираторной форме стафилококковой инфекции у кур // Птицеводство, 1973. № 7. С. 47.

15. Байзалов Д., Григорьева М., Коруков Г. Върху някон особенности на патогенните стафилококки изолирони от селкостепенски животни // Вет. мед. науки (София), 1973. № 10. С. 13-19.

16. Байдавлятов А.Б., Ольхович Л.А. Методические рекомендации по стафилококкозу. Харьков, 1975. С. 52-54.

17. Бакаев А.Е., Мальцева Т.Н., Евдокимова НЛ. Рекомендация по комплексу мероприятий по борьбе с опасными заразными болезнями птиц

' в Таджикистане. Душанбе, 1988. 1. С. 3-15.

18. Бакулов И.А., Юрков Т.Г. Рекомендация по методике эпизоотологического исследования. Покров, 1975. С. 73.

19. Белицкий Б., Паникар И. // Ветеринария, 1969. № 12. С. 25-26.

20. Белицкий Б., Паникар М. // Птицеводство, 1969. № 12. С. 42.

21. Бесарабов Б.Ф. Болезни сельскохозяйственной птицы (инфекционные болезни). М.: Колос, 1970. С. 184-190.

22. Бесарабов В.Ф. Ветеринарно-санитарные мероприятия по профилактике болезней птиц // Ветеринария, 1980. С. 36.

23. Билик В.В. Биохимическое оценка естественной резистентности кур при аэрозольной вакцинации их против колибактериоза // Автореф. дис. канд. биол. наук. Л., 1987. С. 10-18.

24. Борисенкова А.Н. Стафилококкоз. В кн.: Справочник ветеринарного врача птицеводческого предприятия, 1982. С. 130-132.

25. Борисенкова А.Н,, Гинзбург В.ВМ Соколов В.Д. и др..Рекомендация по диагностике, профилактике и мерам борьбы со стафилококкозом птиц. Л., 1982. С. 81-86.

26. Бобохидзе Т.Н. Особенности смешанной инфекции колибактериоза и инфекционного ларинготрахеита кур // Бюл. ВИЭВ, 1982. 48. С. 52-55.

27. Бурханова Х.К. Колибактериоз птиц в Узбекистане // Науч. тр. Самаркандского СХН, 1979. Т. 39. С. 37-44.

28. Бурханова А.Г. Совершенствование способов общей профилактики ко-лисептицемии птицы // Автореф. дис. док. вет. наук. М., 1981. С. 3-32.

29. Бурханова Х.К., Кубаева С.А. Результаты исследований по разработке мер борьбе с колибактериозом птиц. М.: Колос, 1978. С. 2-3.

30. Бутаков A.JI. Роль кишечных палочек в патологии цыплят // Тр. Благовещенского СХЙ, 1963. Т. 3. С. 34.

31. Векслер И.Г. Некоторые экспериментальные данные о влиянии высокой температуры среды на иммунобиологические свойства организма // Врачебное дело, 1957. 9. С. 965.

32. Глухов В.Д., Новиков В.Г., Кравцов В.А. Переносчики возбудителей сальмонеллеза и колибактериоза птиц // Ветеринария, 1982. С. 57-59.

33. Голубева И.В. Микробиология кишечной колиинфекции // Автореф. дис. докт. мед. наук. М.. 1967. С. 5-28.

34. Горева И.П., Мальцева Т.Н, Попова З.В. Ассоциированное течение ко-лисептицемия и болезни Марека // Труды ТаджНИВИ, 1979. С. 57-58.

35. Горева М.П., Пустовал Л.Ф., Мальцева Т.Н. Свойства культур Е. coli, выделенных от домашних и диких птиц в Таджикистане И Труды ТаджНИВИ, 1979. С. 58-60.

36. Горьковая А.Г. Совершенствование способов общей профилактики ко-лисептицемии птицы //Автореф. дис.. .канд. .вет.наук. М., 1979. С. 3-18.

37. Трошева Г. А. Коли септицемия. Болезни птиц. М., 1971. С. 118-130.

38. Грошева Г.А. // Труды Всесоюзного института экспериментальной ветеринарии, 1977. Т. 59. С. 166-171.

39. Грошева Г.А., Рахманина И.А., Резвих А.Г., Горьковая А.Г. Колибак-териоз и меры борьбы с ним в птицеводческих хозяйствах промышленного типа//Тр. ВИЭВ, 1979. Т. 49. С. 123-133.

40. Дианов В.В. П Тезисы докладов Всесоюзного научно-технического семинара «Опыт использования зоогигиенических приемов в промышленном животноводстве», 1982. С. 195-197.

41. Дорошко И.Н., Кучеренко З.А. Науков прц, 1940. Т. Д. С. 163-173.

42. Елин В.Л. Культуральные свойства Е. coli И Микробиология, 1957. № 1.С. 32-54.

43. Жумаев Н.С. Биологические свойства культур кишечной палочки, выделенных от телят, больных желудочно-кишечными заболеваниями // Тр. ТаджНИВИ, 1987. С. 45-48.

44. Загаевский И.С. Пищевые отравления микробной этиологии. Белая Церковь, 1967.

45. Загаевский И.С. // Птицеводство, 1970. № 7. С. 42-43.

46. Зайцева С.Ю., Ратгауз Г.Л., Акатов А.К. и др. Динамика показателей 'клеточного и гуморального иммунитета у больных хронической стафилококковой пиодермией в процессе терапии стафилококковым анатоксином // ЖМЭИ, 1984. № 3. С. 119.

47. Зон Г.А., Фотина Т.И. Эшерихиоз индеек // Птицеводство, 1990. № 1. С.57-59.

48. Ибрагимов A.A., Осколков B.C., Гольд Я.Р. Патогенез и диагностика смешанной респираторной инфекции птиц // Ветеринария, 1985. № 12.

С*» л —

49. Исаев Ю.В. Значение Е. coli в патологии эмбрионов и утят в первые дни выращивания //Автореф.дис....канд. вет. наук. М., 1965. 14 с.

50. Кандиков Г.И. Вакцинация кур-несушек против колибактериоза и пуллороза с целью получения иммунных эмбрионов и цыплят и некоторые их иммунобиологические показатели // Автореф. дис. канд. вет. наук. Фрунзе, 1972. С. 4-18.

51. Картушина А.Е. Патморфология колисептицимия цыплят // Автореф. Дис. канд. вет. наук. М., 1971. С. 4-13.

52. Контримовичус. Л.М. Стафилококкоз. Болезни птиц. М., 1962. С. 64.

53. Костенко Т.О., Скаршевский Е.Й., Гительсон С.О. Ферментативные свойства стафилококков // Практикум по ветеринарной микробиологии. М., 1989. С. 145-150.

54. Кот А.П., Голубничий В.П., Бирман Б.Я. Влияние субклинического колибактериоза на формирование иммунитета у цыплят, привитых аэ-розольно против псевдочумы и инфекционного ларинготрахеита // Тр.

Белорусского НИИЭВ, 1983. Вып. 20. С. 53-56.

55. Кот А.П., Малиновская Г.В. Влияние смешанных бактериально-вирусных инфекций на течение колибактериоза у птиц // Микроорганизмы в сельском хозяйстве. № 83. С. 83.

56. Крылова Т.В. Стафилококкоз птиц // Автореф. дис. канд. вет. наук-Тарту, 1988. С. 10-15.

57. Крылова Т.В, Соколов A.B. Получение и изучение свойств стафилококковых анатоксинов // Сб. научных трудов. Часть I. Ленинград, 1988. С. 80-85.

58. Ларин С.А. Колиперитонит уток в Алма-Атинской области. Автореф. дис. канд. вет. назтс. Фрунзе, 1968. С. 14-17.

59. ЛеесментО.М. Предупреждение заболеваний птицы. М.: Колос, 1970. С 7-П1

V » / i х .

60. Мальцева Т.Н. Ассоциированное течение хронического пастереллеза и стафилококкоза птиц // Сборник научных трудов ТаджНИВИ, 1986. С. 31-34.

61. Мальцева Т.Н., Бакаев А.Е., Шутемова Н.Т. Эффективность комплексных диагностических исследований /7 Труды ТаджНИВИ, 1987. С. 61-66.

62. Мальцева Т.Н., Попова З.Н., Горева И.П., Пустовой И.Ф. О диагностике стафилококковой инфекции кур. Профилактика инфекционных болезней животных. Душанбе: Дониш, 1982. С. 80-84.

63. Мерзляков И.В. Распространение колибактериоза в птицеводствах Республики Таджикистан // Сб. науч. тр. ТаджНИВИ. Душанбе, 1992. С. 28.

64. Минеева Р.К. Патоморфологические изменения органов цыплят, больных колибактериозом // Тр. Благовещенского СХИ, 1971. Т. 5. Вып. 2. С. 34-35.

65. Михайлова В.Е. // Сб. научных работ ЛВИ, 1982. С. 72-79, 89.

66. Мордвинова Н.Б., Выгодчиков Г.В.. Баклагова A.M. и др. Определение ДНК-азной активности у стафилококков // ЖМЭИ, 1967. № 10. С.

37-427.

67. Мунтяну K.K. Факторы, обуславливающие колибактериоз птиц и пути их устранения. Резервы повышения эффективности интенсивного птицеводства. Кишинев, 1987. С. 60-62.

68. Ыарожный П.А. Колибактериоз молодняка сельскохозяйственных животных и птиц. Киев, 1995. С. 144-180.

69. Ниезов Ф.А., Курбанов Р.Т., Марков С.И. Парандалар колибактериоз касылличи кузготувчисининг зарарлантириш хусусиятлари // Тр. Уз-НИИВ. Самарканд, 1996. С. 108.

70. Нитензон Б.Н., Бессарабов Б.Ф. Интенсификация промышленного птицеводства в Молдавии, 182. С. 130-138.

71. Ольхович Л.А. Стафилококкоз. Справочник по болезням с.-х. птиц. Киев. 1980. С. 86-87.

72. Осидзе Д.Ф. Инфекционные болезни животных. Справочник. М.: Аг-ропромиздат, 1987. С. 203-210.

73. Панышев И.И., Станкевич Л.А., Морозова М.Ф. ДНК-азная активность стафилококков // ЖМЭИ. 1967. № 10. С. 49-52.

74. Перехрест Н.Ф., Воронянский В.П. Клинико-морфологические признаки колисептицемии уток и меры борьбы с ней. Повышение эффективности птицеводства в хозяйствах Ростоской обл. 1987. С. 40-44.

75. Плеханов Б.П., Грязев Н.С., Солоншшн Я.И. Оздоровление птицефабрики от стафилококкоза птиц // Инф. лист., Курский ЦНТИ, 1990. №6. С. 1-2.

76. Покровский С.Т. Диагностика и профилактика болезней птиц // Тезисы докладов на Всесоюз. совещ. М., 1973. С. 85-86.

77. Попова З.В., Мальцева Т.Н., Горева И.П. и др. Применение формол-вакцины против колисептицемии цыплят из местных штаммов. Рекомендация по борьбе с болезнями сельскохозяйственных животных и птиц в Таджикской ССР. Душанбе, 1982. С. 32-34.

78. Радчук H.A. Колибактериоз птиц. Л., 1990. С 8-52.

79. Радчук H.A. Профилактика колибактериоза птид // Тезисы докладов на Всесоюзном совещании. М., 1973. С. 87-88.

80. Радчук H.A. Эффективность специфической профилактики в неблагополучных по колибактериозу птицехозяйствах // РЖ Птицеводство, 1983. №97. С. 31.

81. Радчутс H.A., Бикорюков A.A., Бишк В.В. и др. Опыт оздоровления птицеводства от колибактериоза. Л., 1985, С. 46-48.

82. Радчук H.A., Бикорюков A.A., Ледовских Н.П. и др. Эффективность специфической профилактики колибактериоза, микоплазмоза и инфекционного бронхита // РЖ Птицеводство, 1986. № 10. С.13.

83. Радчук H.A., Бикорюков A.A. Ледовских Н.П. и др. Смешанная инфекция колибактериоза с микоплазмом и инфекционным бронхитом. Л., 1985. С. 51-53.

84. Радчук H.A.. Ледовских Н.П., Михайлова В.Е. Меры борьбы с коли-бактериозом птиц // Сб. Научных работ ЛВИ, 1984. С. 80.

85. Раздобулько М.А. Влияние низких и высоких температур внешней среды на иммунобиологическую активность организма животных // Гигиена труда и профзаболеваний, 1958. 4. С. 23.

86. Ратгауз Е.В. Изучение сенсибилизирующих свойств стафилококка. Токсин //ЖМЭИ, 1970. №4. С. 77-81.

87. Рафиев Б.И. Распространение пуллороза-тифа и колибактериоза птиц в Узбекистане // Труды УзНИВИ, 1990. С. 34-36.

88. Рахманина И А., Грошева ГА. Одновременная иммунизация птиц против колибактериоза и болезни Ньюкасла // ВНИ ВИП Тезисы докладов к научно-производственной конференции. Л., 1985. № 1. С. 57.

89. Рахманина И А., Грошева ГА. К разработке способа специфической профилактики колибактериоза птиц // Тр. ВИЭВ, 1980. 51. С. 102-105.

90. Рахманина И.А., Грошева ГА., Шубин В.А. Меры профилактики и борьбы с колисептимией птиц // Тр. ВИЭВ, 1977. С. 147.

91. Рахманина И А. Серебряков A.C. // (ВИЭВ) Тезисы докладов на Все-

союзном совещании. М., 1973. С. 89-90.

92. Рахманина И.А. Серебряков A.C. К вопросу трансовариальной передачи Е. Coli у кур // Бюллетень научно-технической информации IV. Душанбе, 1973. С. 33-37.

93. Родин Ю.В. Диагностика колисептицемии цыплят и разработка групповых методов ее химиопрофилактики // Автореф. дис.... канд. вет. наук. Витебск, 1919. С. 3-13.

94. Русакова Е.В. Изучение сенсибилизирующих свойств стафилококкового А-токсина // ЖМЭИ, 1970. № 4 С. 77-81.

95. Рудаков В.В., Радчук Н.К., Билик В.В. Биохимия сельскохозяйственных животных и продовольственная программа, 1986. С. 119.

96. Савов Д. Колисептицемия. Болезни по птицете. София: Земиздат, 1967. С. 63-64.

97. Сафаров Ю.Б., Джульфаев С.А. Особенности колисептицемии птиц // Ветеринария, 1968. № 4. С. 92. С. 80-85.

98. Сапиков П.М. Болезни птиц // М.-П.: Сельхозгиз, 1953. 136 с.

99. Сидоров М.А., Скородушов Д.И. Определитель зоопатогенных микроорганизмов. М.: Колос, 1995. С. 53-60.

100. Трошин A.A. Метод определения ДНК-азной активности стафилококков // Тр. Ленингр. 10, 1991. С. 36-38.

101. Урбан В.П., Шутов Э.Е., Колишен Н.В. и др. Методические рекомендации по определению экономической эффективности ветеринарных мероприятий. Л., 1988. С. 20-58.

102. Урбан В.П., Радчук H.A. Специфическая профилактика колибакте-риоза кур // Материал к заседанию научно-технического совета МЕХ СССР.М., 1978. С. 10.

103. Феоктистов П.И. Массовые стафилококки (рукопись), 1958. С. 64.

104. Хашимов А.У., Рафиев Б.И. Колибактериоз птиц в Узбекистане //Тр. УзНИВИ. Ташкент, 1986. С. 67-70.

105. Чебуров К.П. Стафилококки// В кн.: Ветмикробиология, М.: Колос,

1982. С. 36-40.

106. Черкашина Л.И. // Сб. науч. трз'дов Западносибирской зональной опытной станции по птицеводству, 1981. С. 66-68.

107. Черных М. Специфическая профилактика колибактериоза // Птицеводство, 1996. № 1.С. 38-39.

108. Якубова М.С. Ассоциированное течение пастереллеза и колибактериоза птиц // Тез. респуб. науч. конференции. Душанбе, 1987. С. 114-115.

109. Якубова М.С. Изучение вирулентных свойств эшерихий, выделенных от птиц // Сб. науч. тр. ТаджНИВИ. Душанбе, 1991. С. 48.

110. Якубова М.С. Морфологические и культурно-биохимические свойства эшерихий и пастерелл // Сб. науч. трудов ТаджНИВИ. Душанбе, 1992. С. 17.

111. Amara A., Ziani Z., Bouroubaa К. Antibioresistene of E. Coli strains isolated in Morokko from chickens with colibacillosis // Veterinary Microbiology, 1995. 43. P. 325-330.

112. Baird-Parcer A.C. The classification of staphylococci and micrococci from

A m*

wold-wide sources // 1965. Vol. 38. P. 363-387.

i 13. Bourombaa K.. Monahid M., Amara A. et al. Les dominantes pa-thologignes en aviculture an Maroc // Maghreb Veterinäre, 1989. 4. P. 1518.

114. Bhouwmik M.K. Staphylococcal septicaemia in ducklings // Karela in Veter. Sc., 1987. 18. l.P. 43.

115. Clond S.S., Rosenberger J.K., Fries P.A. Invitio and in vivo characterization of avian E. Coli. J. Serotypes, metabolic activity and antibiotic sensitivity // Avian is., 1985. 29. P. 192-196.

116. Chalmers W.S., Kewley Dr. Bacterial flora of clinically normal conjunctivae in the domestic duckling // Avian Pathol., 1985. 14. P. 64-74.

117. Dhillan A.S., Jack O.K. Two outbreaks of colibacillosis in commercial cased lavers//Avian Dis., 1996. Vol. 40. № 3. P. 742-746.

118. Droual P., Chin R.P., Rervani M. Sinovitis, osteomyelitis, and green liver

in turkeys associated with Echerichia coli // Avian Dis., 1996. Vol. 40, № 2. p. 417-424.

119. Deb J.R., Harn7 E.G. Laboratory' trials with inactivated vaccines against Escherichia coli (02: k) infection in fowls II Res. Vet. Sei., 1978. 24. № 3. P. 308-313.

120. Filali E., Bell J.G., El. Hauadfi M., Huggins M.B. Antibiotic resistance of E.coli stiains isolated from chickens with colisepticaemia in Moroco // Comp. Inmun. Microbiol. Infect. Dis., 1988. 11(2). P. 121-124.

121. Gross W.B.. 1991. Coiibacterioses in: M.S. Hofstad, HJ. Bornes B.W., Colnex C.F. et al. Disease of Poultry jowl state University press, Ames Iowa. P. 138-144.

122. Gensing H.H. Stafilokokken jnfectle ba j legnennen Dierg. 91.16. 1966. P. 38-40.

123. Giiman J.E., Panigrahi b, Hall C.F. Immunogenic^ of an oil - emulsified escherichia coli bacte II Avian dis. 2. 58, 1985. P. 12-13.

124. Hummel R., Jung S. Naturliche und experimentelle infektiouen mit staphilokokken bei . Enter Charakteristika der stamme // Arch. Exper. Vater. Med., 1982. 36. 6. P. 933-942.

125. Harry E.N. A stud}- of 119 Outbreaks of colisepticaemia in broiler flocks // Vet. Res., 1964. V. 76. № 16. P. 16-17.

126. Harr}' E.V. Some characteristic of st. Ayreus isolated from the skin and Respiratory Tract of Domesticated and weld birds // Res. Veterin. Sei. 84, 1967. P. 23-26.

127.Halloran H.R. Reddens respond to yolk color discussion // Feedsfuffs, 1984. 56.6. P. 10-11.

128. Ibragim A.A., Shahafa M.A. Some observations on colisepticaemia of lagging chickens //Asiut uefer. Med. J., 1985. 14. 27. P. 235-241.

129. Jordanesch S. Recombination plasmid obtained from two different compatible staphylococcal piasmids II J. Bact., 1975. Vol. 124. P. 597-601.

130. Jensen M.M., Meyers C.M. Bacterial interference as a possible method of

preventing staphylococcus in furkas, 1984. 22-23.

131. Kibenge F.S.B., Wilcox G.E. Jenosynovitis in chickens // Vet. Bull., 1983. Vol. 53. № 5. P. 441-444.

132. Kibenge F.S., Wilcox G.E., Pass D.A. Pathogenicifi of four strains of staphylococci isolated from chickens with clinical tenosinovitis // Zootech. Intern., 1984. № 6. P. 44-47.

133. Karacov J. Stafilokokkasa poireaicte //Vet. Sbirca., 1967. 64. 2. P.64-67. 134..Kauffmann F.R. The bacteriology of enterobacteriaceas. Copenhagen:

Mun-Kagaara, 1966. 657 p.

135. Kauffmann F.R. Edward F.R. Classification and nomenclature of Entero-bacteriuce // Jnt. Bull. Bact. Not. Tax., 1952. Vol. 2. P. 2-8.

136. Lafout J.P. Esterichia coli vers aes movchs // Courrier avicole. 1985. 40. 851.38-39.

137. Lensing H.H. Stafilokokken infectie bi j lehenntn // Diery., 1966. 91. 16. P. 43-48.

138. Loper. M.G., Sarfati M.D. La Colibacilosis, problema mundial // Sintesis Avicoia, 1988. 6. 4. P. 42-43.

139. Murry C.J. Lvsobates of salmonella and E.Cola serotyped et the salmonella refereuze laboratory in 1984 from veterinary and human sources // Aust. Vet. J., 1986.63. 192. 196.

140. Meyer W. Differenrierungsessehema fur standort - varianten von staphylococcus aureus // Zbe. Bact., Abt. Orig.. 1966. Bd. 201. 3. 465-481.

141. Page R.K. Sinuvitis: a big problem for pullet grovers // Poultri Dig., 1982. 1.360-361.

142. Sing R.P. Incidence of staphylococcus spp in poultry fams and Hatcheries and their patogeniciti // Indian. Veteran J., 1966. 43. 12. P. 336-338.

143. Snoegenbos G.H. Competitive exclusion in enteripathogens // Proceeding of 32 ng western poultry di disease conference. Davis. Calif., 1983. P. 1-3.

144. Sperber W.H. The identification of staphylococcus in clinical and food microbiology laboratories - CRC li Crit. Rev. Clin. Lab. Sci, 1976. Vol. 7. P.

121-14.

145. Stipcovits L. Ar Escherichia coli serepe es jelentosege a harityuk megbeteg-edeseiben. Dudapest, 1968. P. 46-48.

146. Tesouro Valejo M., Valiente Botiga E. Colibacilosis in proseso patologico de gran mpotancia economica para las infigrasiones de broilers // An. Inst Investig. Vater. Magrid., 1979. 25. P. 47-67.

147.1.K. Tompson , I.T. Patterson, P.A. The use of a new phage set for typing poultry strains of staphylococcus aureus obtained from seven countries // Brit. Poultry Sei., 1980. Vol. 21. P. 95-102.

148. Van Ness. Staphylococcus cifreus in the fowl // Poulfry Sei, 1946. P. 16.

149. Woolery R.E., Gibbs P.S., Dickersou H.W. Analysis of plasmids cloned from a virulent avian Escherichia coli and transformed info Escherichia coli pH 5 alpha // Avian Dis., 1996. Vol. 40. № 3. P. 533-535.

150. Witte W., Hummel R., Meyer W. et al. Ecology- of staphylococcus aureus. Characterization of strains from chicken // Z. Allg. Mikrobiol, 1977. Bd. 17. P. 639.