Адвентивное почкообразование и каллусогенез у сибирских видов хвойных в культуре in vitro тема диссертации и автореферата по ВАК РФ 03.01.05, кандидат биологических наук Филиппова, Ирина Панфиловна

• Филиппова, Ирина Панфиловна
• кандидат биологических наук
• 2010

Оглавление диссертации кандидат биологических наук Филиппова, Ирина Панфиловна

ВВЕДЕНИЕ

ГЛАВА 1. Обзор литературы.

1.1. Компоненты питательных сред.

1.2. Каллуспые культуры.

1.3.Адвентивное почкообразование у хвойных в культуре in vitro.

ГЛАВА 2. Объекты и методы исследования.

ГЛАВА 3. Каллусные культуры ели сибирской, сосны обыкновенной и лиственницы сибирской.

ГЛАВА 4. Адвентивное почкообразование у ели сибирской, лиственницы сибирской и сосны обыкновенной и гистологический контроль эксплантов видов хвойных на средах с цитокининами.

4.1. Адвентивное почкообразование.

4.1.1. Экспланты - почки деревьев.

4.1.2. Экспланты - зрелые зиготические зародыши.

4.2. Гистологический анализ эксплантов (зрелых зиготических зародышей) растущих на среде с 6-БАП.

4.2.1. Гистологический анализ эксплантов ели сибирской (0-35 суток in vitro) культивируемых на средах '/2 MS-0 и Vi MS+6-БАП.

4.2.2. Дифференцирование трахеид в эксплантах исследуемых видов хвойных на ранних сроках культуры in vitro.

4.2.3. Гистологический анализ эксплантов ели сибирской культивируемых 60 суток в культуре in vitro.

4.2.4. Гистологический анализ адвентивного почкообразования у эксплантов лиственницы сибирской и сосны обыкновенной.

4.2.5. Гистологический анализ адвентивных растений.

ГЛАВА 5. Адвентивное почкообразование у эксплантов видов хвойных с использованием импульсной обработки цитокинином.

5.1. Экспланты - зрелые зиготические зародыши хвойных.

5.2. Экспланты - семядоли проростков семян хвойных.

ВЫВОДЫ.

Введение диссертации (часть автореферата) на тему «Адвентивное почкообразование и каллусогенез у сибирских видов хвойных в культуре in vitro»

Термин "культура тканей растений" охватывает многие типы стерильно выращиваемых культур. Это каллусные культуры, культуры изолированных меристем, зародышей, пыльников, корней, суспензионные культуры клеток и тканей. Методы in vitro позволяют создавать в строго контролируемых условиях модельные системы, что облегчает возможность слежения за изменениями строения и физиологии растительных объектов. В культуре изолированных тканей и клеток отчетливо появляется свойство тотипотентности растительной клетки, в основе которого лежит реализация различной наследственной информации в конкретных условиях, складывающихся в клетке под влиянием внешних и внутренних факторов (Бутенко, 1964).

Методы культуры растений in vitro находят все большее применение в фундаментальных и прикладных исследованиях в области физиологии, генетики, эмбриологии растений и целом в биологии развития растений. Достижения в области культуры клеток и тканей привели к созданию принципиально новых методов вегетативного размножения, таких как микрочеренкование, адвентивное почкообразование и соматический эмбриогенез (Биотехнология растений, 1989). Использование этих методов, разработанных на покрытосеменных растениях, представляет значительный интерес для микроклонального размножения хвойных видов.

Культура тканей хвойных in vitro может играть важную роль в генетико-селекционных программах лесовосстановления древесных видов, так как репродуктивный потенциал этих видов снижается (Третьякова, Бажина, 1996). Однако, в исследованиях, которые проводятся с культурами in vitro органов, тканей и клеток растений одной из наиболее актуальных проблем является индукция морфогенеза. Особенно остро эта проблема стоит перед исследователями, работающими с древесными в том числе и хвойными растениями, поскольку известно, что морфогенетические процессы в условиях in vitro индуцируются у них с большим трудом, характеризуются 3 нестабильностью и трудной воспроизводимостью (Савельев и др., 2008). В то же время открытие у хвойных соматического эмбриогенеза (Hakman et al., 1985; Chalupa, 1985) и адвентивного почкообразования (Хмара, Катаева, 1993; Arnold, 1982; Lapp et al., 1995; Gonzales et al., 1998; Renau-Morata et al., 2005 и др.) в культуре in vitro свидетельствует о множественности реализации морфогенетических программ у данного класса растений в контролируемых условиях и способности хвойных видов к массовому размножению через методы культуры тканей.

Цель исследования: изучение закономерностей адвентивного почкообразования и каллусогенеза у ели сибирской {Picea obovata Ledeb.), лиственницы сибирской (Larix sibirica Ledeb.) и сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.) в культуре in vitro.

В задачи исследований входило:

-выбор эксплантов и подбор оптимальных условий культуры in vitro для каллусогенеза;

-установление оптимальных концентраций цитокининов в питательной среде для адвентивного почкообразования;

-проведение гистологического контроля на разных сроках культуры in vitro у эксплантов в условиях направленного органогенеза;

-оценка эффективности индуцирующего действия «импульсной» обработки эксплантов высокими концентрациями цитокинина (6-БАП) на образование адвентивных почек.

Научная новизна. Выявлены общие закономерности и специфические особенности культивирования эксплантов сибирских видов хвойных in vitro. Впервые проведен гистологический анализ образования адвентивных почек у зародышей ели сибирской, сосны обыкновенной и лиственницы сибирской. Впервые к эксплантам сибирских видов хвойных (зрелым зиготическим зародышам и семядольным хвоинкам проростков) была применена методика импульсной обработки высокими концентрациями цитокинина, в результате чего происходило активное адвентивное почкообразование в условиях культуры in vitro.

Теоретическая и практическая значимость. Полученные данные о закономерностях адвентивного почкообразования и каллусогенеза у ели сибирской, лиственницы сибирской и сосны обыкновенной расширяют информацию о роли фитогормонов в регуляции процессов онтогенеза растительного организма. Результаты исследований могут быть использованы в генетико-селекционных программах лесовостановления лесных древесных видов, а также могут быть включены в учебную программу подготовки специалистов по направлению Биология.

Положения, выносимые на защиту:

1. Цитокинины стимулируют образование адвентивных почек у хвойных в культуре in vitro.

2. Формирование адвентивных почек идет по типу развития апикальных меристем.

Структура и объем диссертации. Диссертационная работа изложена на 145 страницах и состоит из введения, пяти глав, выводов, списка использованной литературы (246 источников, в том числе 149 иностранных) и включает 17 таблиц, и 44 рисунка.

Заключение диссертации по теме «Физиология и биохимия растений», Филиппова, Ирина Панфиловна

выводы

1. Для каллусогенеза у ели сибирской, сосны обыкновенной и лиственницы сибирской можно рекомендовать в качестве эксплантов проростки и зрелые зиготические зародыши. Максимальный прирост биомассы каллусов отмечен на среде 14 MS с добавлением 2,4—Д (2 мг/л) и 6-БАП (1 мг/л). Для получения долгоживущих каллусных линий необходимо совместное присутствие в среде ауксинов (2,4-Д и НУК) и цитокинина (6-БАП). В ходе длительного культивирования каллусных линий хвойных прирост биомассы уменьшался. Клетки каллусных культур имели агранальный тип организации хлоропластов, с низким уровнем развития ФС II.

2. Адвентивные почки получены у ели сибирской, сосны обыкновенной и лиственницы сибирской на среде 14 MS с цитокининами. Почки взрослых деревьев имели слабый органогенный потенциал. Максимальное количество образовавшихся адвентивных почек зарегистрировано для почек взятых с деревьев в мае, и составляет в среднем 2,4 для лиственницы и 2,7 для ели. Наибольшее число почек de novo образовалось на зрелых зиготических зародышах после индукции на среде с 6-БАП в течение четырех недель. У ели сибирской сформировалось в среднем 15 адвентивных почек на эксплант, у лиственницы сибирской и сосны обыкновенной - 4.

3. Локализация клеток, реагирующих на цитокинин, у зрелых зиготических зародышей хвойных является видоспецифичным. У ели сибирской органогенные клетки находились во внешнем слое первичной коры гипокотиля, у сосны обыкновенной - в основной ткани кончика семядолей, у лиственницы сибирской - в основной ткани основания семядолей.

4. Применение импульсной обработки эксплантов раствором 6-БАП (56 мг/л) увеличило количество адвентивных почек de novo. При использовании в качестве эксплантов зрелых зиготических зародышей

119

Интенсивность органогенеза у зрелых зиготических зародышей достигала у сосны обыкновенной — в среднем 20, ели сибирской - 27 и лиственницы сибирской - 13 адвентивных почек на эксплант, у семядольных хвоинок этот показатель составил соответственно - 15, 11 и 12 адвентивных почки на эксплант.

5. Закономерности формирования и развития адвентивных почек в культуре in vitro на зиготических зародышах ели сибирской и сосны обыкновенной, укладываются в схему развития апикальных меристем.

Список литературы диссертационного исследования кандидат биологических наук Филиппова, Ирина Панфиловна, 2010 год

1. Аветисова J1. М., Марьяхина И. Я. Ультраструктура клеток каллуса капусты на средах с различными регуляторами роста // Физиология растений. 1987. Т. 34, № 5. С.1012-1024.

2. Антипова О. В., Швалева A. JI. Подготовка к прорастанию зародышей пшеницы в связи с поступлением воды // ДАН. 1999.

3. Ахметов Р. Р., Гилязетдинов Ш. Я., Вахитов В. А. Фитогормоны и активность хроматина / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 17.

4. Биотехнология растений: культура клеток / Пер. с англ. В. И. Негрука; с предисл. Р. Г. Бутенко. М.: Агропромиздат, 1989. 280 с.

5. Бутенко Р. Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнология на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 160 с.

6. Бутенко Р. Г. Культура тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. 272 с.

7. Валиева А. И., Румянцева II. И., Лозовая В. В. Динамика полисахаридного состава клеточных стенок каллусов татарской гречихи с различным морфогенным потенциалом в процессе роста и морфогенеза // Цитология. 1999. Т. 41, № 7. С. 598-604.

8. Василевска Л. Д., Вельгат Б., Янковски Я. М., Бральчик Е. Регуляция обмена растительных нуклеиновых кислот гиббереллином ГА3 / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 13.

9. Веселов С. Ю., Вальке 3. С., Ван Онкелен X., Кудоярова Г. Р. Содержание и локализация цитокининов в листьях исходных и трансгенных растений табака // Физиология растений. 1999. Т. 46, № 1. С. 34^40.

10. Власюк П. А., Жидков В. А., Ивченко В. И., Климовицкая 3. М., Охримепко М. Ф., Рудакова Э. В., Сидоршина Т. Н. Участие микроэлементовв обмене веществ растений / В кн.: Биологическая роль микроэлементов. М.: Наука, 1983. С. 97-104.

11. Вонсавичене В. Н., Новицкене Л. Л., Марчюкайтис А. С. Взаимодействие ИУК с медью и марганцем в процессе роста картофеля / В кн.: Регуляция роста и питания растений. Вильнюс.: Мокслас, 1980. С. 49—53.

12. Гаевский Н. А., Ладыгин В. Г., Гольд В. М. Новые данные о природе высокотемпературного подъема флуоресценции хлорофилла // Физиология растений. 1989. Т. 36, № 2. С. 274-277.

13. Гаевский Н. А., Сорокина Г. А., Гольд В. М., Ладыгин В. Г., Гехман А. В. Изучение природы термоиндуцированпых изменений флуоресценции хлорофилла с использованием мутантов СЫатуйотопаъ геткагсШ И Физиология растений. 1985. Т. 32, № 4. С. 674-680.

14. Гаевский Н. А., Сорокина Г. А. Гольд В. М., Миролюбская И. В. Сезонные изменения фотосинтетического аппарата древесных и кустарниковых растений // Физиология растений. 1991. Т. 38, № 4. С. 685692.

15. Галеева Е. И., Максютова Н. И., Тарчевский И. А., Зумянцева Н. И. Полипептидный состав каллусов гречихи татарской Fagopyrum (Шапсит (Ь.) с различным морфогенным потенциалом // ДАН. 2001. Т. 377. С. 116-118.

16. Гамбург К. 3., Рекославская Н. И., Швецов С. Г. Ауксины в культурах тканей и клеток растений. Новосибирск: Наука, 1990. 243 с.

17. Гольд В. М., Гаевский Н. А., Григорьев Ю. С., Гехман А. В., Попельницкий В. А. Теоретические основы и методы изучения флуоресценции хлорофилла. Красноярск: Изд-во КГУ. 1984. 84 с.

18. Гродзинский А. М., Гродзинский Д. М. Краткий справочник по физиологии растений. Киев: Наукова думка. 1973. 591 с.

19. Гудвин Т., Мерсер Э. Введение в биохимию растений. Т. 2. М.: Мир, 1986. 312 с.

20. Гуревич А. С., Якушина Н. И. Цитокинины как один из факторов влияния меди на фотосинтетический аппарат картофеля // Физиол. и биох. культ, раст. 1989. Т. 21, № 2. С. 156-161.

21. Гусаковская М. А., Блинцов А. Н., Баринова Ю. В., Ермаков И. П. Изменение содержания эндогенных цитокининов в завязях Triticum aestivum до и после оплодотворения // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 6. С. 865869.

22. Гусаковская М. А., Блинцов А. Н., Ермаков И. П. О гормональной регуляции развития завязи пшениц Triticum aestivum II ДАН. 2000. Т. 370, № 5. С. 689-692.

23. Дерфлинг Г. Гормоны растений: системный подход / Под ред. В. И. Кефели. М.: Мир, 1985. 303 с.

24. Джохадже Д. И., Гоглидзе Р. И., Гиголашвили Г. Г. О механизмах влияния фитогормонов на транскрипцию / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 25.

25. Дорогова Н. В., Шамина Н. В. Особенности цитокинеза в клетках, высших растений // Цитология. 1994. Т. 36, № 9. С. 899-915.

26. Еркеев М. И., Камалетдинов М. А., Гилязетдинов Ш. Я. Исследование состава новообразованных РНК в проростках разных линий кукурузы после действия фитогормонов / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 25—26.

27. Журавлев Ю. Н., Омелько А. М. Морфогенез у растений in vitro II Физиология растений. 2008. Т. 56, № 5. С. 643-664.

28. Загоскина Н. В., Гончарук Е. А., Алявина А. К. Изменения в образовании фенольных соединений при действии кадмия на каллусные культуры, инициированные из различных органов чайного растения // Физиология растений. 2007. Т. 54, № 2, С. 267-274.

29. Загоскина Н. В., Запрометов М. Н. Влияние 1-нафтилуксусной кислоты на рост и образование фенольных соединений в культуре ткани чайного растения // Физиология растений. 1979. Т. 26. С. 681-687.123

30. Запрометов М. Н., Субботина Г. А., Николаева Т. Н. Влияние кинетина на образование фенольных соединений и ультраструктурную организацию каллусных тканей чайного растения // Физиология растений. 1994. Т. 41, № 3. С. 354-358.

31. Зубо Я. О., Селиванкина С. Ю., Ямбуренко М. В., Зубкова Н. К., Кулаева О. Н., Кузнецов В. В. Цитокинины активируют транскрипцию хлоропластных генов // ДАН. 2005. Т. 400, № 3. С. 396-399.

32. Иванов В.Б. Активные красители в биологии. М.: Наука, 1982. 224 с.

33. Иванова А. Б., Анцыгина Л. Л., Ярин А. Ю. Современные аспекты изучения фитогмонов. Цитокинины // Цитология. 2001. Т. 43, № 6. С. 537543.

34. Иванова А. Б., Полыгалова О. О., Гордон Л. X. Ионы кальция в регуляции некоторых метаболических процессов растительной клетки // Цитология. 1997. Т. 39, № 4/5. С. 352-359.

35. Измайлов С. Ф. Азотный обмен в растениях. М.: Наука, 1986. 320 с.

36. Калашникова Е. А. Методы совершенствования технологии клонального микроразмножения сосны обыкновенной //Лесное хозяйство. 1994. №3. С. 36-38.

37. Калимова И. Б., Демченко Н. П., Демченко К. Н. Тканевая реакция корней проростков ТгШсит аеяйуит на действие избытка никеля в среде / Тез. докл. II Междунар. конфер. по анатомии и морфологии растений. С-Пб., 2002. С. 283.

38. Калинин Ф. Л., Сарнацкая В. В., Полищук В. Е. Методы культуры тканей в физиологии и биохимии растений. Киев: Наукова Думка, 1980. 488 с.

39. Карабаев М. К., Джардемалиев Ж. К. Культивируемые клетки пшеницы и кукурузы. Морфогенез и толерантность // Физиология растений. 1994. Т. 41, №6. С. 807-814.

40. Карначук Р. А., Гвоздева Е. С. Влияние света на баланс фитогормонов и морфогенез в культуре ткани зародышей пшеницы // Физиология растений.1998. Т. 45, №2. С. 289-295.

41. Карначук Р. Г., Головацкая И. Ф. Гормональный статус, рост и фотосинтез растений, выращенных на свету разного спектрального состава // Физиология растений. 1998. Т. 45, № 6. С. 925-934.

42. Катаева И. В., Аветисов Н. П. Клональное микроразмножение растений / В кн.: Культура клеток растений и биотехнология и биотехнология. Под ред. Р.Г. Бутенко. М.: Наука, 1986. С. 31-35.

43. Кефели В. И. Природные ингибиторы роста и фитогормоны. М.: Наука, 1974. 252с.

44. Ковелев А. Г., Обручева Н. В. Клеточный анализ S-образной кривой роста корня, особенности деления клеток в корнях конского каштана // Онтогенез. 1977. Т. 8. № 4. С. 397^02.

45. Котеева Н. К. Изменение структуры ядрышек в клетках апикальной меристемы побега и мезофилла хвои сосны обыкновенной в годичном цикле // Цитология. 1999. Т. 41, № 6. С. 480^184.

46. Кудоярова Г. Р., Докичева Р. А., Трапезникова В. К. Влияние 6-бензиламинопурина на рост и содержание эндогенных гормонов у растений пшеницы в зависимости от уровня минерального питания // Физиол. и биохим. культ, раст. 1991. Т. 23, № 6. С. 557-563.

47. Кунах В. А. Изменчивость растительного генома в процессе дифференцировки и каллусообразования in vitro II Физиология растений.1999. Т. 46, №6, С. 919-930.

48. Курсанов A. JI. Транспорт ассимилятов в растении. М.: Наука, 1976. 415 с.

49. Лакин Г. Ф. Биометрия: учебное пособие для вузов. М.: Высшая школа, 1990.351 с.

50. Ломин С. Н., Романов Г. А. Анализ гормон-рецепторного взаимодействия. Теоретические и практические аспекты // Физиология растений. 2008. Т. 55, № 2. С. 283-299.

51. Лыгин А. В., Иванова А. Б., Гордон Л. X. Особенности дыхания и липидного состава клеток каллуса гороха // Цитология. 1996. Т. 38, № 2. С. 219-220.

52. Лянгузова И. В. Влияние никеля и меди на прорастание семян и формирование проростков черники // Физиология растений. 1999. Т. 46, № 3. С. 500-502.

53. Марченко А. О. Реализация морфогенетического потенциала растительных организмов // Успехи современной биологии. 1996. Т. 116, №. 3. С. 306-319.

54. Митриченко А. Н., Фатхутдинов Р. Г., Теплова И. Р., Веселов С. Ю., Кудоярова Г. Р. Динамика и распределение цитокининов в проростках пшеницы при изменении температуры // Физиология растений. 1998. Т. 45, № З.С. 468-471.

55. Момот Т. С. Способность к органогенезу ели европейской и сосны обыкновенной в культуре in vitro II Цитология и генетика. 1977. Т. 9, № 6. С. 497-503.

56. Муромцев Г. С., Чкаников Д. И., Кулаева О. Н., Гамбург К. 3. Основы химической регуляции роста и продуктивности растений. М.: Агропромиздат, 1987. 383 с.

57. Нестеренко Т. В., Шихов В. Н., Тихомиров А. А. Термоидукция флуоресценции хлорофилла и возрастное состояние листьев высших сосудистых растений // Физиология растений. 2001. Т. 48, № 3. С. 282-290.

58. Николаева Б. А., Алексеева В. Я., Гордон Л. X. Влияние ионов лития на рост корней пшеницы и роль фосфоинозитидного цикла в регуляции ростовых процессов // Цитология. 2001. Т. 43, № 10. С. 969-974.

59. Николаева Т. Н., Загоскина Н. В., Запрометов М. Н. Образование фенольных соединений в каллусных культурах чайного растения под действием 2,4-Д и НУК // Физиология растений. 2009. Т. 56. № 1. С. 53-58.

60. Обручева Н. В., Антипова О. В. Запуск роста осевых органов и его подготовка при прорастании семян, находящихся в вынужденном покое. 2. Инициация "кислого роста" в осевых органах семян кормовых бобов // Физиология растений. 1994. Т. 41, № 3. С. 443-447.

61. Обручева Н. В., Антипова О. В. Общность физиологических механизмов подготовки к прорастанию у семян с разным типом покоя // Физиология растений. 1999. Т. 46, № 3. С. 426^131.

62. Озолина Н. В., Кузеванов В. 3., Саляев Р. К., Котова J1. Г. Электрофоретическое изучение белков морфогенных и неморфогенных каллусов яровой пшеницы // Физиология растений. 1995. Т. 27, № 4. С. 254258.

63. Паушева 3. П. Практикум по цитологии растений. М.: Агропромиздат, 1988. 271 с.

64. Плохинский H.A. Биометрия. М.: Изд-во МГУ, 1970. 365 с.

65. Полевой В. В., Саламатова Т. С. Физиология роста и развития растений. Л.: ЛГУ, 1991. 240 с.

66. Попов А. С., Волкова Л. А. Криосохранение и некоторые изменения культур клеток диоскореи на среде без витаминов // Физиология растений. 1994. Т. 41, № 4. С. 923-928.

67. Решетников В. Н., Ненадович Р. А. Особенности липидного состава ядерного матрикса каллусных тканей тритикале // ДАНБ. 1995. Т. 39, № 6. С. 68-71.

68. Рипецкий Р. Т., Кит Н. А., Матасов В. И. Влияние кинетина на образование хлоропластов в спорах лиственных мхов / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 38-39.

69. Романов Г. А. Как цитокинины действуют на клетку // Физиология растений. 2009. Т. 56, № 2. С. 295-319.127

70. Романов Г. А. Цитокинины и т-РНК: новый взгляд на старую проблему // Физиология растений. 1990. Т. 37, № 6. С. 1196-1210.

71. Романов Г. А., Медведев С. С. Ауксины и цитокинины в развитии растений // Физиология растений. 2006. Т. 53, № 2. С. 309-319.

72. Рощина В. Д., Рогцина В. В. Действие фитогормонов на быстрые светозависимые реакции растений / Регуляторы роста и развития растений. Тез. док. I Всесоюзной конфер. Москва, 1981. С. 40.

73. Румянцева Н. И., Валиева А. И., Самохвалова Н. А., Мухитов А. Р., Агеева М. В., Лозовая В. В. Особенности лигнификации клеточных стенок каллусов гречихи//Цитология. 1998. № 10. С. 836-843.

74. Румянцева Н. И., Валиева А. И., Федосеева Н. В., Самохвалова Н. А., Яблокова Е. В. Биохимические и цитоморфологические особенности культивируемых каллусов растений с разной способностью к морфогенезу // Цитология. 1996. Т. 38, № 2. С. 244-245.

75. Румянцева Н. И., Сальников В. В., Лебедева В. В. Изменение структуры клеточной поверхности каллуса Fagopyrum esculentum Moench. при индукции морфогенеза // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 3. С. 430— 437.

76. Руте Т. Н., Мауриня X. А. Клональное микроразмножение ели {Picea abies) // Физиология растений. 1989. Т. 36, №1. Р. 154-165.

77. Свинцова В. С., Буторина А. К. Характеристика ядрышковой активности клеток разных типов в раннем эмбриогенезе Pinns sylvestris L. // Цитология. 2002. Т. 44, № 12. С. 1199-1204.

78. Серегин И. В., Иванов В. Н. Является ли барьерная функция эндодермы единственной причиной устойчивости корней к солям тяжелых металлов // Физиология растений. 1997. Т. 44. № 6. С. 922-925.128

79. Силкин Ю. А., Коф Э. М. Изменение содержания эндогенных цитокининов в процессе зеленения проростков гороха / В кн.: Экологические аспекты регуляции роста и продуктивности растений: Матер. Науч. конф. Ярославль, 1991. С. 35.

80. Смирнова О. Ю., Мишина В. А., Зацепина О. В. Цитопатические эффекты воздействия ингибитора синтеза белка эметина на клетки и ядрышки культуры Hela II Цитология. 2003. Т. 45, № 12. С. 1179-1187.

81. Смоленская И. Н. Зоринянц С. Э., Смирнова Ю. Н., Носов А. В., Чайко А. Л., Носов А. М. Суспензионная культура клеток Panax japonicus var. repens. 1. Параметры роста и цитогенетические характеристики // Биотехнология. 2005. № 5. С. 21-28.

82. Смолов А. П., Опанасенко В. К. Аммонийный фактор в жизнедеятельности растительной клетки // Цитология. 2009. Т. 51, № 4. С. 358-365.

83. Суханова М. А., Бондарев Н. И., Горяева О. В., Андреева С. Е., Носов А. М. Ультраструктурная характеристика клеток растений и каллусных культур Stevia rebaudiana в связи с синтезом стевиол-гликозидов // Биотехнология. 2007. № 5. С. 51-59.

84. Теплова И. Р., Кудоярова Г. Р., Никитина В. С. Изменение эндогенного гормонального баланса под действием 6-бензиламинопурина: возможная связь с повышением устойчивости / В кн.: II съезд Всеросс. о-ва физиологов растений: тез. докл. М. 1992. С. 206.

85. Толочко В. В., Гамбург К. 3. Возможные функции мезоинозита в растениях // Успехи современной биологии. 1978. Т. 85, № 1. С. 50-61.

86. Тонкоштан JI. А. Анатомическое строение хвои основных древесных пород Красноярского края // Труды института Леса и древесины "Древесиноведение и защита древесины". М.: Изд-во Академии наук, 1963. С. 118-127.

87. Третьякова И. Н., Бажина Е. В. Семенная продуктивность макростробилов и качество семян пихты сибирской в нарушенных лесных экосистемах // Экология. 1996. Т. 27, № 6. С. 35^-2.

88. Уоринг Ф., Филлипс И. Рост растений и дифференцировка. М.: Мир, 1984. 512 с.

89. Хмара К. А., Катаева Н. В. Влияние генотипа материнского растения и веществ цитокининового типа действия на способность тканей зародыша ели обыкновенной {Picea abies L.) к органогенезу in vitro II Физиология растений. 1993. Т. 40, № 5. С. 802-805.

90. Хотылева А. В., Матвеенко С. Н., Рубан В. В., Калинская Л. Н. Особенности структуры цитоплазматических органелл в клетках каллуса и регенерантах табака // Цитология и генетика. 1995. Т. 29, № 1. С. 23—28.

91. Чавчавадзе Е. С. Древесина хвойных: морфологические особенности, диагностика, значение. М.: Наука, 1979. 192с.

92. Чережанова Л. В., Мелик-Саркисов О. С., Овчинникова В. Н. Цитогенетический эффект Сахаров // Генетика. 1991. Т. 27, № 8. С. 1372— 1378.

93. Чжань К. Г., Ли В., Мао И. Ф., Чжао Д. Л., Донь В., Гуо Г. К. Содержание гормонов в каллусах Scutellaria baicalensis, индуцированных тидиазуроном // Физиология растений. 2005. Т. 52, № 3. С. 392-398.

94. Шамина 3. Б., Савина Т. А., Осипова Е. А., Попов Ю. Г. Повышение продуктивности культуры клеток стефании гладкой — Stephania glabra (Roxb) Miers // Физиология растений. 1994. Т. 41, № 6. С. 885-890.

95. Школьник М. Я. Физиологическая роль бора у растений в свете новейших данных / В кн.: Физиологическая роль микроэлементов у растений. Л.: Наука. 1970. С. 45-56.

96. Abe H., Fucuda R., Ohtani J., Fukazawa K. Changes in the arrangement of microtubules and microfibrils in differentiating conifers tracheids during expansion of cells //Ann. Bot. 1995. Vol. 75. P. 305-310.

97. Afele J. C., Senaratha T., Saxena P. Somatic embryogenesis and plant regeneration from zygotic embryo culture Picea pungens II Plant Cell Reports. 1992. Vol. 11, № 5-6. P. 299-303.

98. Aloni R., Baum S.F., Peterson C.A. The role of cytokinin in sieve tube regeneration and callose production in wounded Coleus internodes II Plant Physiol. 1990. Vol. 93, № 3. P. 982-989.

99. Arnold von S: Factors influencing formation, development and adventitious shoots from embryos of Picea abies II Plant. Sci. Lett. 1982. Vol. 27. P. 275-287.

100. Arnold von S. Impotence of genotype on the potential for in vitro adventitious buds production of Picea abies II For. Sci. 1983. Vol. 30. P. 312-316.

101. Arnold von S., Eriksson T. Induction of adventitious buds on buds of Norway spruce {Picea abies) grown in vitro II Physiol. Plant. 1976. Vol. 45. P. 2934.

102. Arnold von S., Eriksson T. In vitro studies of adventitious shoot formation in Pinus contorta II Can. J. Bot. 1981. Vol. 59. P. 870-874.

103. Arnold von S., Eriksson T. Initial stages in the course of adventitious bud formation on embryos of Picea abies II Physiol. Plant. 1985. Vol. 64. P. 41-47.

104. Arnold von S., Hawes C. Differentiation of bud meristems and cataphylls during adventitious bud formation on embryos of Picea abies II Can. J. Bot. 1989. Vol. 67. P. 422-428.

105. Bassard N., Brissette L., Lord D., Laliberte S. Elongation, rooting and acclimatization of micropropagated shoots from mature material of hybrid larch // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1996. Vol. 44. P. 37-44.

106. Beinsberger S. I., Valske R. L., Deblaere R. Y., Clijster M. M., De Greef J. A., Van Onckelen H. A. Effects of the introdaction of Agrobacterium tumefaciens T-DNA ipt-gene in Nicotiniana tabaccum L. // Plant Cell Physiol. 1991. Vol. 79. P. 7-12.

107. Biesaga-Koscielniak J., Koscielniak J., Filek M., Janeczko A. Rapid production of wheat cell suspension cultures directly from immature embryos // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 2008. Vol. 94. p. 139-147.

108. Binns A. N. Cytokinin accumulation and action. Biochemical, genetic and molecular approaches // Annu. Rev. Plant Physiol, and Plant Mol. Biol. 1990. Vol. 45. P. 173-196.

109. Bogunia H., Przywara L. Rola cukrowcow w roslinnych kulturach in vitro II Wiad. Bot. 1999. Vol. 43, № 1-2. P. 25-36.

110. Bonga J. M. Organogenesis in vitro of tissues from matures conifers // In vitro. 1981. Vol. 17. P. 511-518.

111. Borkowska B., Opitowska M. Influence of BA and other cytokinins on proliferation and metabolic status of sour cherry cultures cultivated in vitro II Fruit Science Reports. 1988. Vol. 15, № 4. P. 147-156.

112. Bornman, C. H. Possibilities and constraints in the regeneration of trees from cotyledonary needles of Picea abies in vitro II Physiol. Plant. 1983. Vol. 57. P. 5-16.

113. Brand M. H. Influence of agar and ammonium nitrate on tissue nitrogen, culture growth, and vitrification // Hort. Science. 1993. Vol. 28. P. 546-591.

114. Budimir S., Vujicic R. Benzyladenine induction of buds and somatic embryogenesis in Picea omorica Purlc. // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1992. Vol. 31. P. 89-94.

115. C. Kevers, T. Franck, R. J. Strasser, J. Dommes, T. Gaspar. Hyperhydricity of micropropagated shoots: a typically stress-induced change of physiological state // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 2004. Vol. 77. P. 181-191.

116. Calixto F., Pais S. M. Adventitious shoots formation and plant regeneration from Pinus pinaster II In Vitro Cell. Develop. Biol. Plant. 1997. Vol. 33, № 2. P. 119-124.

117. Campbell R. A., Duran D. J. Induction of multiple buds and needles in tissue cultures of Picea glauca II Can. J. Bot. 1975. Vol. 53. P. 1652-1657.

118. Capuana M., Giannini R. Micropropagation of young and adult plants of cypress (Cupressus sempervirens L.) // J. Hort. Sci. 1997. Vol. 72. P. 453-460.

119. Carland F. M., Berg B. L., Fitzgerald J. N., Jinamornphongs S., Nelson T., Keith B. Genetic regulation of vascular tissue patterning in arabidopsis // The Plant Cell. 1999. Vol. 11,№ 11. P. 2123-2137.

120. Chalupa V. Development of isolated Norway spruce and Douglas fir buds in vitro II Comm. Inst. For Czech. 1977. Vol. 10. P. 79-87.

121. Chalupa V. Somatic embryogenesis and plantlet regeneration from cultured immature and mature embryos of Picea abies (L.) // Karst. Commun. Inst. For. Cech. 1985. Vol. 14. P. 57-63.

122. Chalupa V., Dursan D. Growth and development of resting buds of conifers in vitro II Can. J. For Res. 1973. № 3. P. 196-208.

123. Chandhry Z., Rashid H., Qurashi A. Analysis of protein and peroxidase from embriogenic and non-embriogenic cultures of Citrus reticulate II J. Sci. Ind. Res. 1993. Vol. 36, № l.P. 20-22.

124. Chang S. H., Ho C. K., Chen Z. Z., Tsay J.Y. Micropropagation of Taxus mairei from mature trees // Plant Cell Rep. 2001. Vol. 20. P. 496-502.

125. Cheah K.-T., Cheng T.-Y. Histological analysis of adventitious bud formation in cultured douglas fir cotyledon // Amer. J. Bot. 1978. Vol. 65. P. 845849.

126. Chin-Atkins A. N., Craig S., Hocart C. H., Dennis E. S., Chaudhury A. M. Increased endogenous cytokinin in the Arabidopsis amp 1 mutant corresponds with deetiolation responses // Planta. 1996. Vol. 198, № 4. P. 549-556.

127. Collett C. E., Harberd N. P., Leyser O. Hormonal interactions in the control of arabidopsis hypocotyl elongation II Plant Physiol. 2000. Vol. 124. P. 553-561.

128. Cortizo M., Diego de N., Moncalean P., Ordas R. J. Micropropagation of adult Stone Pine (Pinus pinea L.). // Trees. 2009. Vol. 23. P. 835-842.

129. David A., David H., Mateille T. In vitro adventitious budding on Pinus pinaster cotyledons and needles // Physiol. Plant. 1982. Vol. 56. P. 102-107.

130. Davies P. J. The plant hormones: their nature, occurrence, and functions / Plant hormones: physiology, biochemistry and molecular biology, (ed. P. J. Davies). The Netherlands: Kluwer academic publishers. 1995. P. 1—12.

131. De Loose M., Alliotte T., Bauw G., Vandekerckhove J., Van Montadu M., Inze D. Molecular analysis of auxin and cytokinin effects on Nicotiniana plnmbaginifolia cell suspensions // Arch. Int. Physiol, et Biochim. 1987. Vol. 95, №5. P. 189-195.

132. Drake P. M., Johm A., Power J. B., Davey M. R. Cytokinin pulse-mediated shoot organogenesis from cotyledons of Sitka spruce (Picea sitchensis) and high frequency in vitro rooting of shoots // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1997. Vol. 50. P. 147-151.

133. Dursan D., Chafe S., Lopushanski S. M. Effects of environmental changes on sugars, tannins and organized growth in cell suspension cultures of white spruce // Planta. 1973. Vol. 113. P. 241-249.

134. Ewald D., Siiss A. A system for repeatable formation of elongating adventitious buds in Norway spruce tissue cultures // For. Genet. 1993. Vol. 42, № 4-5. P. 169-175.

135. Ewald D., Kretzchmar U. Tissue culture of adult larch as a tool for breeding purposes / Larch genetics and breeding. IUFRO working party S2.02-07. Sweden, 1995. P. 153-163.

136. Fink S. The occurrence of adventitious and preventitious buds within the bark of some temperate and tropical trees // Am. J. Bot. 1983. Vol. 70, № 4. P. 532-542.

137. Flinn B. S., Webb D. T., Georgis W. In vitro control of caulogenesis by growth regulators and media components in embryonic explants of eastern white pine {Pinus strobus) II Can. J. Bot. 1986. Vol. 64. P. 1948-1956.

138. Flinn B. S., Webb D. T., Newcomb W. The role of cell clusters and promeristemoides in determination and competence for caulogenesis by Pinus strobus cotyledons in vitro II Can. J. Bot. 1988. Vol. 66, № 8. P. 1556-1565.

139. Flygh G., Cronroos R., Arnold von S. Induction, rooting, and capacity of adventitious shoots of Pinus contorta I I Can. J. For. Res. 1993. Vol. 23. P. 19071916.

140. Fukazawa J., Sakai T., Ishida S., Yamaguchi I., Kamiya Y., Takahashi Y. Repression of shoot growth, a bZIP transcriptional activator, regulates cell elongation by controlling the level of gibberellins // Plant Cell. 2000. Vol. 12. P. 901-915.

141. Fukuda H. Xylogenesis initiation, progression, and cell death // Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant. Mol. Biol. 1996. Vol. 47. P. 299-325.

142. Gan S., Amasino R. M. Inhibition of leaf senescence by autoregulated production of cytokinin // Science. 1995. Vol. 270, № 5244. P. 1986-1988.

143. Garcia-Ferriz L., Serrano L., Pardos J. A. In vitro shoot organogenesis from excised immature cotyledons and microcutting production in stone pine // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 1994. Vol. 36. P. 135-140.

144. Gendreau E., Traas J., Desnos T., Grandjean O., Caboche M., Hofte H. Cellular basis of hypocotyl growth in Arabidopsis thaliana II Plant Physiol. 1997. Vol. 114. P. 295-305.

145. Gonzales M. V., Rey M., Tavazza P., Malfa S. L., Cuozzo L., Ancora G. In vitro adventitious shoot on cotyledons of Pinus pinea II Hort. Sci. 1998. Vol. 33, № 4. P. 749-750.

146. Gregory R. A., Romberger J. A. The shoot apical ontogeny of the Picea abies seedling. I. Anatomy, apical done diameter, and plastochron duration // Amer. J. Bot. 1972. Vol. 59, № 6. P. 587-597.

147. Gupta D., Purohit M., Srivastana P. S. Adventitious buds from cotyledonary leaves of Pinus gerardiana Wall. // Beitrage zur Biologia der Pflanzen. 1994. Vol. 68. P. 291-296.

148. Hakman I., Fowke L. C., Arnold von S., Eriksson T. The development of somatic embryos in tissue cultures initiated from immature embryos of Picea abies II Plant. Sci. 1985. Vol. 38. P. 53-59.

149. Halos S. C., Go N. E. Micropropagation of Pinus caribaea Morelet. // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1993. Vol. 33, № 1. P. 47-53.

150. Harry I. S., Thorpe T. A. Regeneration of plantlets through organogenesis from mature embryos of jack pine // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 1994. Vol. 37. P. 159-164.

151. Hausman J. F., Kevers C., Gaspar T. Putrescine control of peroxidase activity in the inductive phase of rooting in poplar shoots in vitro, and the adversary effect of spermidine // J. Plant. Physiol. 1995. Vol. 146. P. 681-685.

152. Havel L, Scarano M. T, Durzan D. J. Xylogenesis in Cupressus callus involves apoptosis // Adv. Hort. Sci. 1997. Vol. 11. P. 37-40.

153. Hernandez J. J., Conzales R. H. In vitro morphogenesis of Pinus patula Schb. et Cham // Revista Chapingo. 1991. Vol. 15 (75). P. 7-17.

154. Horgan R. Present and future prospects for cytokine research // Physiol, and Biochem. of Cytokinins in Plants. 1990. P. 3-13. '

155. Hrib J., Vookova B., Kormutak A. Biochemical difference between normal callus and embryogenic suspensor mass of silver fir // Biol. Plant. 1997. Vol. 39. P. 507-513.

156. Jansson E., Bornman C. H. In vitro initiation of adventitious structures in relation the abscission zone in needle explants of Picea abies: anatomical considerations //Physiol. Plant. 1981. Vol. 53. P. 191-197.

157. Jansson E., Bornman C. H. Morphogenesis in dormant embryonic shoots of Picea abies: influence of the crown and cold treatment // Physiol. Plant. 1983. Vol. 59. P. 521-527.

158. Joy R. W., Bender L., Thorpe T. A. Nitrogen metabolism in cultured cotyledon explant of Pinus radiata during de novo organogenesis // Physiol. Plant. 1994. Vol. 92, № 4. P. 681-688.

159. Kaliamoorthy S., Krishnamurthy K. V. Secondary wall deposition in tracheary elements of cucumber grown in vitro II Biol. Plant. 1998. Vol. 41. P. 515-522.

160. Kaul K. Factors influencing in vitro micropropagation of Pinus strobus L. // Biologia Plantarum. 1990. Vol. 32. P. 266-272.

161. Kaya Z., Gokce F. In vitro regeneration of Anatolian black pine {Pinus nigra Arnold subsp. pallasiona (Lamb.) Holmboe) from excised embryos // Turkish J. of Bot. 1997. Vol. 27, № 4. P. 197-202.

162. Kevers C., Franck T., Strasser R. J., Dommes J., Gaspar T. Hyperhydricity of micropropagated shoots: a typically stress-induced change of physiological state // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 2004. Vol. 77. P. 181-191.

163. Kikuchi A., Satos S., Nakamura N. Differences in pectin polysaccharides between carrot embryogenic and non- embryogenic calli // Plant Cell Reports. 1995. Vol. 14. P. 279-284.

164. Kobayashi M!, Maton T., Sekiya H. Responses to boron deprivation in cultured tobacco cells // Plant and Cell Physiol. 1999. Vol. 40. P. 150-158.

165. Kong L., Yeung E. C. Effects of silver nitrate and polyethyleneglycol on white spruce (Picea glauca) somatic embryo development // Physiol. Plant. 1995. Vol. 93. P. 298-304.

166. Kretzchmar U. Improvement of larch micropropagation by induced short shoot elongation in vitro II Silva Genetica. 1993. Vol. 42, N 4-5. P. 163-169.

167. Kulchetscki L., Harry I. S., Yeung E. C., Thorpe T. In vitro regeneration of pacific silver fir (Abies amabilis) plantlets and histological analysis of shoot formation // Tree Physiology. 1995. Vol. 15, № 11. P. 727-738.

168. Lambardi M., Sharma K. K., Thorpe T. A. Optimization of in vitro bud induction and plantlet formation from mature embryos of aleppo pine (Pinus halepensis Mill.) // In Vitro Cell. Dev. Biol. 1993. Vol. 29. P. 189-199.

169. Lambardi M., Capuana M., Sozzi L., Giannini R. Factors affecting in vitro adventitious bud induction from excised embryos of Swiss stone pine {Pinus cembra L.) // For. Genet. 1995. Vol. 2, № 1. P. 46-57.

170. Lapp M. S., Malinek J., Coffey M. Microculture of western white pine {Pinus monticola) by induction of shoots on bud explants from 1-to 7-year-old trees // Tree Physiol. 1995. Vol. 16, № 4. P. 447-451.137

171. Legocka J., Dok Su Li, Schneider J. Cytokinin-mediated nucleic acid synthesis in the tissue culture of Diantus caryophyllus II Acta physiol. plant. 1990. Vol. 12, №2. P. 111-117.

172. Lemay J. F. Organogenese adventive sur des embryons matures de pin gris {Pinus banksiana Lamb.) in vitro. Rapport de maitrise, University du Quebec a Montreal. 1993. P. 123-135.

173. Leshem B., Sachs T. Vitrified Dianthus teratomata in vitro due to growth factor umbalans // Annals of Botany. 1985. Vol. 56. P. 613-617.

174. Lin Y. A., Wagner M. R., Heidmann L. J. In vitro formation of axillary buds by immature shoots of ponderosa pine // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1991. Vol. 26, N3. P. 161-166.

175. Lin X., Leung D. Culture of isolated zygotic embryos of Pinus radiata D. Don. Part I: factors influencing in vitro germination and growth of isolated embryos // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002. Vol. 38. P. 191-197.

176. Lin X., Leung D. Culture of isolated zygotic embryos of Pinus radiata D. Don. Part II: biochemical changes associated with the conversion of isolated embryos // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002. Vol. 38. P. 198-202.

177. Martinez P., Harry I. S., Thorpe T. A. Effect of various bud induction treatment on elongation and rooting of adventitious shoots of Canary Island pine {Pinus canadensis) // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 1994. Vol. 39, № 3. P. 225230.

178. Mathur G., Nadgauda R. In vitro plantlet regeneration from mature zygotic embryos of Pinus wallichiana A. B. Jacks // Plant Cell Reports. 1999. Vol. 19. P. 74-80.

179. Maton T., Matsuda A., Kobayashi M., Sekiya H. Localization of boron (B) in higher plants apoplast // Plant and Cell Physiol. 1999. Vol. 40. P. 149-156.

180. McCann M. C., Stacey N. J., Dahiya P., Milioni D., Sado P. E., Roberts K. Zinnia. Everybody Needs Good Neighbors // Plant Physiology. 2001. Vol. 127, № 12. P. 1380-1382.

181. Medford J. J., Horgan R., El-Sawi Z., Klee H. J. Alteration of endogenous cytokinins in transgenic plants using a chimers isopentenyl transferase gene // Plant Cell. 1989. Vol. l.P. 403-413.

182. Mench M., Morel J., Gurkert A. Metil binding properties of high moleculer weight soluble exudates from maise {Zea malus L.) roots // Biol. Fertil. Soils. 1987. Vol. 3. P. 165-169.

183. Mo L. H., Arnold von S. Origin and development embryonic cultures from seedling of Norway spruce // J. Plant. Physiol., 1991. Vol. 138, № 2. P. 223-230.

184. Möller R, McDonald A. G, Walter C., Harris P. J. Cell differentiation, secondary cell-wall formation and transformation of callus tissue of Pinus radiata D Don. // Planta. 2003. Vol. 217. P. 736-747.

185. Möller R., Ball R. D., Henderson A. R., Modzel G., Find J. Effect of light and activated charcoal on tracheary element differentiation in callus cultures of Pinus radiata D. Don // Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 2006. Vol. 85. P. 161171.

186. Morel J., Mench M., Gurkert A. Measurement of PI, cuand Cd binding with mucilage exudates from maise {Zea malus L.) roots // Biol. Fertil. Soils. 1986. Vol. 2. P. 29-34.

187. Mott R. L: Mehra-Palta A., Smeltzer R. H. An anatomical and cytological perspective on pine organogenesis in vitro // TAPPI Forest Biology Wood Chemistri Conference Papers, 1977. P. 9-14.

188. Murashige T., Scoog F. A. A revised medium for rapid growth and bioassay with tobacco tissue culture // Physiol. Plant. 1962. Vol. 15. P. 473^179.

189. Nadgauda R. S., Nagarwala N. N., Parasharam V. A., Mascarenhas A. F. Bud break and multiple shoot formation from tissues of mature trees of Pinus caribaea and Pinus kesiya // In Vitro Cell. Dev. Biol. 1993. V. 29. P. 131-134.

190. Nin S., Morosi E., Schiff S., Bennici A. Cullus culture of Artemisia absinthium L.: Innitiation, growth optimization and organogenesis // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1996. V. 45. P. 67-72.

191. Noh E. W., Minocha S. C., Riemenschneider D. E. Adventitious shoot formation from embryonic explants of red pine (.Pinus resinosa) II Physiol. Plant. 1988. Vol. 74, № 1. P. 119-124.

192. Norgaard J. V., Kogstrup P. Cytokinin induced somatic embryogenesis from immature embryos of Abies nordmaniana // Plant. Cell. Rep., 1991. Vol. 9, № 9. P. 509-513.

193. Owens J., Molder M. Bud development in Picea glauca. I. Annual growth cycle of vegetative buds and shoot elongation as they relate to date and temperature sums // Can. J. Bot. 1977. Vol. 55. P. 2728-2745.

194. Pasqualetto P. L., Zimmerman R. H., Fordham I. The influence of cation and gelling agent concentrations on vitrification of apple cultivars in vitro II Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 1988. Vol.14. P. 3140-3146.

195. Patel K. R., Thorpe A. T. In vitro regeneration of plantlets from embryonic and seedling explants of Engelmann spruce {Picea engelmannii Parry) // Tree Physiology. 1986. Vol. 1. P. 289-301.

196. Pelletier G., Laliberte S. Effect of embryo orientation on the developmental sequence of adventitions organogenesis in jack pine {Pinus banksiana Lamb.). // Can. J. Bot. 2000. Vol. 78. P. 1348-1360.

197. Perez-Frances J. F., Valdes F., Martin R. Callus induction and culture from explants of Erysimum scoparium in a growth regulator-free medium // Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 1995. Vol. 43. P. 223-228.

198. Potikha T. S., Collins C. C., Johnson D. I., Delmer D. P., Levine A. The involvement of hydrogen peroxide in the differentiation of secondary walls in cotton fibers // Plant Physiology. 1999. Vol. 199. P. 849-858.

199. Prehn D., Serrano C., Mercado A., Stange C., Barrales L., Arce-Johnson P. Regeneration of whole plants from apical meristems of Pinus radiata II Plant Cell, Tissue and Organ Culture. 2003. Vol. 73. P. 91-94.

200. Ramage C. M., Williams R. R. Mineral nutrition and plant morphogenesis // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2002. Vol. 38. P. 116-124.

201. Ramsden L, Northcote D. H. (1987) Tracheid formation in cultures of pine {Pinus sylvestris) //J. Cell. Sci. 1987. Vol. 88. P. 467^174.

202. Rashotte A. M., DeLong A., Muday G. K. Genetic and chemical reductions in protein phosphatase activity alter auxin transport, gravity response, and lateral root growth // The Plant Cell. 2001. Vol. 13, № 7. P. 1683-1697.

203. Renau-Morata B., Ollero J., Arrillaga I., Segura J. Factors influencing axillary shoot proliferation and adventitious budding in cedar // Tree Physiol. 2005. Vol. 25. P. 477-486.

204. Romeu-Moreno A., Mas A. Effects of copper exposure in tissue cultured Vitis vinifera I I Vitis. Viticulat. And Enol. Abstr. 2000. Vol. 39, № l2. P. 14-21.

205. Rosas M. M., Avila V. M. C., Boettler R. B. In vitro regeneration of plantlets from immature zygotic embryos of Picea chihuahuana martianez, an endemic mexican endangered species // In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant. 2001. Vol. 37. P. 73-78.

206. Rumary C., Patel K. R., Thorpe T. A. Plantlet formation in black and white spruce. II. Histological analysis of adventitious shoot formation in vitro II Can. J. Bot. 1986. Vol. 64. P. 997-1002.

207. Saborio F., Dvorak W. S., Donahue J. K., Thorpe T. A. In vitro regeneration of plantlets from mature embryos of Pinus ayacahuite II Tree Physiol. 1997. Vol. 17, № 12. P. 787-796.

208. Saenz L., Jones L. H. Endogenous isoprenoid and aromatic cytokinins in different plant parts of Cocos nucifera (L.) // Plant Growth Regul. 2003. Vol. 39. P. 205-215.

209. Salajova T. Adventitious bud development in vitro on mature zygotic embryos of Pinus nigra Arn // Biologia (Bratislava). 1993. Vol. 48, № 1. P. 105108.

210. Savidge R. A. In vitro wood formation in 'chips' from merchantable stem region of Larix laricina IIIAWA J. 1993. Vol. 14, № 1. P. 3-11.

211. Scaltsoyiannes A., Panetsos K., Economou A., Tsoulpha P. Micropropagation of the pine hybrid Pinus bruta (Ten.) x Pinus halepensis (Mill.)141by culturing fascide shoots // Annales des Sciences Forest. 1994. Vol. 51. P. 175— 182.

212. Schloupt R. M., Splittstoesser W. E., Skirvin R. M. 250 induction and avoidance of vitrification of micropropagated onion (Allium cepa L.) // Hort. Science. 1994. Vol. 29. P. 427-581.

213. Selavankina S., Moshkov I., Novikova G., Pereverseva I. Does protein kinase C-like protein from barley leaves participate in the cytokinin action? // Physiol. Plant. 1990. Vol. 79. P. 35^14.

214. Selby C., Watson S., Harvey B. M. R. Morphogenesis in Sitka spruce (Picea sitchensis (Bong.) Carr.) bud cultures -tree maturation and explants from epicormic shoots // Plant Cell, Tissue, Organ Cult. 2005. Vol. 83. P. 279-285.

215. Sen S., Magallanes-Cenedo M. E., Kamps R. H., McKinley C. R., Newton R.J. In vitro micropropagation of Afghan pine // Can. J. For. Res. 1994. Vol. 24, № 6. P. 1248-1252.

216. Shelp B.J., Marantes E., Kitheka A.M., Vevekanandan P. Boron mobility in plants // Physiol. Plant. 1995. Vol. 94, № 2. P. 356-361.

217. Singh S., Letham D.S., Palni L.M. Biosynthesis and metabolism of cytokiknins in relation to progressive leaf senescence in tobacco. In: 15th Int. Bot. Congr. Yokagama, Aug. 28-Sept. 3. 1993.: Abstr. Yokagama, 1993. P. 465.

218. Sinska I. Polyamines and proteins in flax regenerated in vitro // Biol. Plant. 1994. Vol. 36. P. 92-101.

219. Stirk W.A., Novak O. Cytokinins in macroalgae // Plant Growth Regul. 2003. Vol. 41. P. 13-24.

220. Stojicic D., Budimi S., Culafic L. Micropropagation of Pinus heldreichii II Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 1999. Vol. 59. P. 147-150.

221. Stojicic D., Budimir S. Cytokinin-mediated axillary shoot formation in Pinus heldreichii II Biolog. Plant. 2004. Vol. 48. P. 477-479.

222. Sul I.-W., Korban S. S. Effects of salt formulations, carbon sources, cytokinins, and auxin on shoot organogenesis from cotyledons of Pinus pinea L. // Plant Growth Regulation. 2004. Vol. 43. P. 197-205.142

223. Sul I.-W., Korban S. S. Direct shoot organogenesis from needles of three genotypes of Sequoia sempervirens II Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 2005. Vol. 80. P. 353-358.

224. Taji A. M., Williams R. R., Sheather W. H. Comparative anatomy of four rare australian plants grown in vitro II Botanic Gardens Micropropagation News. 1996. Vol. 2. P. 2-5.

225. Tang W., Ouyang F., Guo Z. Plant regeneration through organogenesis from callus induced from mature zygotic embryos of loblolly pine // Plant Cell Rep. 1998. Vol. 17. P. 557-560.

226. Tang W., Guo Z. In vitro propagation of loblolly pine via direct somatic organogenesis from mature cotyledons and hypocotyls // Plant Growth Regulation. 2001. Vol. 33. P. 25-31.

227. Tang W., Newton R. J. Plant regeneration from callus cultures derived from mature zygotic embryos in white pine {Pinus strobus L.) // Plant Cell Rep. 2005. Vol. 24. P. 1-9.

228. Tataki H., Matuo H., Yasukouchi A., Saeki Y. Aukxin-induced root formation and zink // Plant and Cell Physiol. 1999. Vol.40. P. 45-54.

229. Tautorus T. E., Wang H., Fowke L. C., Dustan D. Embryogenic cultures of black spruce (Picea mariana) and jack pine (Pinus banksiana) I I Plant. Cell. Rep. 1992. Vol. 11, № 8. P.419-423.

230. Teasdale R. D., Dawson P. A., Woolhouse H. W. Mineral nutrient requirements of a loblolly pine {Pinus taeda) cell suspension culture // Plant physiol. 1986. Vol. 82. P. 942-945.

231. Thorpe T. A., Patel K. R. Clonal propagation: adventitious buds / In Cell Culture and Somatic Cell Genetics in Plant. Vasul I. K. (Ed.). Academic Press: New-York, 1984. Vol. 1. P. 49-60.

232. Tompson R., Anderkas von P. Somatic embryogenesis and plant regeneration form immature embryos of western larch // Plant. Cell. Rep. 1992. Vol. 11, №8. P. 379-385.

233. Toribio M., Pardos J. Scots pine (.Pinus sylvestris) II Biotechnology in agriculture and Forestry. 1986. Vol. 5. P. 479-506.

234. Vieitez A., Ballester A., SanJose M. C., Vieitez E. Anatomical and chemical studies of vitrified shoots of chestnut regenerated in vitro II Physiol. Plant. 1985. Vol. 65. P. 177-184.

235. Villalobos V. M., Oliver M. J., Yeung E. C., Thorpe T. A. Cytokinin-induced switch in development in excised cotyledons of radiata pine cultured in vitro I I Can. J. Bot. 1984. Vol. 61. P. 483^189.

236. Villalobos V. M., Oliver M. J., Thorpe T. A. Origin of adventitious shoots in excised radiata pine cotyledons cultured in vitro II Can. J. Bot. 1985. Vol. 63. P. 2172-2176.

237. Vogelmann T. C., Bornmann C., Nissen P. Uptake of benzyladenin in explants of Picea abies and Pinus sylvestris II Physiol. Plant. 1984. Vol. 61. P. 513-517.

238. Wilms E. H. A., Sassen M. M. A. Origin and development of floral buds in tobacco explants // New Phytol. 1987. Vol. 105. P. 57-65.

239. Winder T. L., Nishio J.N. Early iron deficiency stresses response in leaves of sugar beet // Plan Physiol. 1995. Vol. 108, № 4. P. 1487-1494.

240. Woffenden B. J., Freeman T. B., Beers E. P. Proteasome inhibitors prevent tracheary element differentiation in zinnia mesophyll cell cultures // Plant Physiol. 1998. Vol. 118. P. 419^430.

241. Wyman J., Temblay M., Laliberte S. Cell cycle activation during imbibition and visible germination in embryos and megagametophytes of jack pine {Pinus banksiana) II Annals of botany. 1996. Vol. 78. P. 245-253.

242. Yakovleva L.A., Cheredova E.P., Karavaiko N.N. Cytokinins and cytokinin binding sites in transgenic potato plants // Plant Growth Regul. 1997. Vol. 21. P. 71-73.

243. Yen H. E., Yen S. Effect of high salinity on tracheary element differentiation in light-grown callus of Mesembryanthemum crystallinum II Plant Cell, Tissue, Organ Culture. 1999. Vol. 58. P. 59-65.